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Artigo de método

Multiplex de monitoramento de drogas terapêuticas por diluição isotópica HPLC-MS/MS de antibióticos em doenças críticas

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DOI:

10.3791/58148

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30 de agosto de 2018

 ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Laboratory Medicine, University Hospital, LMU Munich

Neste artigo

Resumo

Aqui nós apresentamos um protocolo de massa baseado em espectrometria em tandem para a quantificação dos antibióticos usados com frequência em unidades de cuidados intensivos, nomeadamente cefepime, meropenem, ciprofloxacina, moxifloxacina, linezolida e piperacillin.

Resumo

Há uma crescente demanda para a monitorização de drogas terapêuticas de antibióticos em muitas instalações clínicas, particularmente no que se refere a implementação de programas de manejo de antibióticos de hospital.

No trabalho atual, apresentamos um protocolo multiplex alta performance líquida cromatografia-tandem espectrometria de massa (HPLC-MS/MS) para a quantificação de cefepime, meropenem, ciprofloxacina, moxifloxacina, linezolida e piperacillin, comumente usado antibióticos em unidades de terapia intensiva. O método foi validado anteriormente exaustivamente de acordo com a orientação da Agência Europeia de medicamentos.

Depois de uma limpeza rápida da amostra, os analitos são separados em uma coluna HPLC de fase reversa C8 dentro de 4 minutos e quantificados com estáveis isótopo-rotulados internas normas correspondentes em espectrometria de massa electrospray ionização (ESI +) na reação de vários tempo de monitoramento (MRM). O método apresentado utiliza uma instrumentação simples configuração com condições cromatográficas uniformes, permitindo o acompanhamento diária e robusta droga terapêutica antibiótica em laboratórios clínicos. A curva de calibração estende o intervalo de concentração farmacocinética, assim, incluindo antibióticos quantidades perto da concentração inibitória mínima (MIC) de bactérias sensíveis e concentrações de pico (Cmáx) que são obtidas com bólus regimes de administração. Sem a necessidade da diluição do soro antes da limpeza da amostra, a área sob a curva para um antibiótico administrado pode ser obtida por meio de várias medições.

Introdução

Embora os antibióticos revolucionaram a prática da medicina, infecções bacterianas graves permanecem das principais causas de morbidade e mortalidade em doenças críticas1. A este respeito, a administração imediata de um anti-infeccioso apropriado em uma dosagem adequada é da mais alta importância para doença controle2.

Um corpo crescente de evidências demonstra que o tratamento empírico com antibióticos de amplo espectro está se tornando cada vez mais problemático com a complexidade de populações de pacientes. Isto é especialmente verdadeiro para unidades de terapia intensiva (UTI), onde uma enorme variabilidade inter individual dos principais parâmetros de farmacocinética (PK) é frequentemente observada3,4. Assim, pacientes de UTI são em risco iminente de níveis sub-terapêuticos com o perigo de um sucesso terapêutico insuficiente5,6. Então, novamente, os pacientes desnecessariamente estão expostos a excessivamente altas concentrações de antibióticas que podem resultar em efeitos adversos graves com nenhum benefícios clínicos7. Tanto o abuso de antibióticos e a dosagem insuficiente também têm impulsionado a disseminação da resistência aos antibióticos, o que está se tornando uma ameaça crescente para a saúde pública8.

Para melhorar o uso de antibióticos e para preservar a sua effectivenessas o máximo possível, a Organização Mundial de saúde lançou um plano de ação global sobre a resistência antimicrobiana em 20159. Programas de manejo de antibióticos constituam um pilar essencial da utilização prudente de antimicrobianos em saúde pública estratégias10, ajudando os médicos a melhorar a qualidade do atendimento ao paciente11 e, ao mesmo tempo, significativamente reduzir a resistência aos antibióticos de12. Antimicrobiana de dosagem em pacientes individuais através da aplicação de drogas terapêuticas (TDM) de monitoramento é um instrumento-chave nesta contexto13.

Até à data, TDM disponível comercialmente ensaios estão disponíveis somente para o glicopeptídeo antibióticos e aminoglicosídeos. A quantificação de substâncias provenientes de outras classes comumente requer um desenvolvimento in-house método ou a validação que pode ser trabalhoso. Nós, portanto, apresentamos detalhadamente o protocolo para um ensaio de espectrometria de massa base robusto que pode ser usado para a quantificação dos antibióticos mais relevantes na UTI dentro de suas clínicas relevantes concentração varia14. O método foi recentemente estabelecido em nossas instalações de espectrometria de massa e tem sido aplicado para a rotina de TDM na UTI desde então. O procedimento usa uma configuração analítica simples e simples com uma limpeza da amostra uniforme, permitindo a rápida implementação de antibiótico TDM em muitas instalações com capacidades de espectrometria de massa.

O protocolo descrito aqui foi otimizado para a quantificação de cefepime, meropenem, ciprofloxacina, moxifloxacina, linezolida e piperacillin no soro humano, usando cromatografia líquida de diluição de isótopos (LC) em combinação com um tandem mass espectrometria (MS/MS). Para a diluição do isótopo metodologia de LC-MS/MS, compostos rotulados de isótopos estáveis são adicionados a uma amostra de interesse com uma matriz específica (por exemplo, o soro). Isótopo-rotulado padrões podem ser distinguidos de suas contrapartes sem rótulo, ou seja o analito de interesse, devido a diferentes pesos moleculares da molécula natural e seus produtos de fragmentação, denominados uma transição de pai-íon-para-filha-ion. Como isótopo-rotulado compostos têm um comportamento geral, físico-químico quase idêntico em comparação com suas contrapartes sem rótulo, que são padrões internos ideais para o MS/MS, permitindo uma quantificação do analito quase independente de matriz com um elevado grau de precisão de15. Hoje em dia, muitos estáveis isótopo-rotulado padrões internos que podem ser usados para quantificação da pequeno-molécula, incluindo a TDM de antimicrobianos, estão disponíveis comercialmente.

A separação cromatográfica de analitos antibióticos no protocolo descrito é executada com uma C8 alquil-comprimento cadeia reversa-fase coluna analítica (100 mm x 2,1 mm, 3 µm-tamanho de partícula). Durante o desenvolvimento do método, os fatores internos padrão normalizado matriz para todos os analitos foi entre 94,6% e 105,4%, com um coeficiente de variação de ≤8.3%14.

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Protocolo

Nota: É recomendável trabalhar em uma coifa quando manusear os solventes orgânicos, tais como metanol. Prepare todos os buffers e fases móveis em balões volumétricos. Especificação em contrário, as soluções podem ser armazenadas à temperatura ambiente por até 1 mês após a preparação.

1. preparação dos calibradores e amostras de controlo de qualidade

Nota: Uma folha de análise de dados correspondente para a preparação de soluções estoque e spike é dado no Arquivo suplementar. Por razões de rastreabilidade, inserir o fabricante, número de catálogo e muito número de cada antibiótico nas colunas correspondentes. Dissolver todos os antibióticos em um armazenamento de frio em 4 ° C e manter o tempo de trabalho mais curto possível.

  1. Preparar 100 mL de metanol a 25% em água: prefill num balão volumétrico de 100 mL com 25 mL de metanol absoluto e preenchê-lo até 100 mL com água destilada.
  2. Prepare-se 10 mL de ácido acético a 200 mM em água: prefill um balão volumétrico de 10 mL com 9 mL de água de grau HPLC, adicione 115 µ l de ácido acético (99,5% de pureza, 17,4 M) e adicionar água destilada de 10 mL.
  3. Prepare-se 25 mL de metanol a 25% em água com ácido acético de 20 mM: prefill num balão volumétrico de 25 mL com 2,5 mL da solução de ácido acético aquoso 200mm, adicionar 6,25 mL de metanol absoluto e encher o balão de 25 mL com água destilada.
  4. Use uma balança de precisão para pesar as quantidades adequadas de antibióticos em tubos cônicos de 15 mL, conforme descrito no Arquivo suplementar na coluna peso inicial.
  5. Prepare Soluções conservadas em estoque do fluoroquinolonas, ciprofloxacina e moxifloxacina em 25% metanol-água incluindo 20 mM de ácido acético. Para fazer isso, adicione o volume correspondente às quantidades ponderadas conforme descrito no Arquivo suplementar na coluna "volume final". Dissolva rapidamente os antibióticos fluoroquinolona em banho de ultra-som por 2 min e pela intensa utilização do vortex.
  6. Prepare soluções estoque de cefepime, meropenem, linezolida e piperacillin na 25% metanol-água. Para fazer isso, adicione o volume correspondente às quantidades ponderadas conforme descrito no Arquivo suplementar na coluna volume final e dissolver rapidamente os antibióticos pela intensa utilização do vortex. Dissolva o meropenem como última substância.
  7. Combine as soluções estoque de todos os antibióticos, conforme descrito no quadro correspondente volume de solução-mãe no Arquivo suplementar para produzir pico-soluções concentradas de dez vezes.
  8. Spike nove volumes de soro livre de drogas, com um volume das soluções dez vezes para obter os calibradores de soro 0 – 7 pico concentrada e controles de qualidade (QC) A – i. Por exemplo, adicionar 0,5 mL de solução de pico de 4,5 mL de soro em um tubo de polipropileno de 10 mL e ele incube por 15 min no armazenamento frio a 4 ° C, em um misturador de rolo a 50 rpm.
  9. Use uma pipeta repetitiva para gerar 100 alíquotas µ l dos calibradores e QCs em tubos de polipropileno de 1,5 mL.
  10. Armazene os calibradores, controles de qualidade e soluções antibióticas de estoque a-80 ° C por até seis meses.
  11. Para cada antibiótico, também prepare uma solução pura contendo 1.000 mg/L de um único antibiótico. Dilua a solução estoque correspondente com um diluente apropriado (por exemplo, para a ciprofloxacina, 25% de uso metanol-água, incluindo 20 mM de ácido acético).
    Nota: As soluções antibióticas pura são necessárias para o ajuste de instrumento apenas.

2. preparação da mistura padrões internos

Nota: As normas internas são homólogos isótopo-rotulado de analitos de interesse que são adicionadas a uma amostra durante a limpeza da amostra. Como as normas internas têm propriedades em geral, físico-químicas quase idênticas a suas contrapartes sem rótulo, compensar os efeitos de matriz de uma determinada amostra.

  1. Prepare-se 10 mL de metanol a 50% em água, adicionando 5 mL de metanol absoluto para um balão de 10 mL batido e preenchê-lo até 10 mL com água destilada.
  2. Prepare-se 10 mL de metanol a 50% na água, incluindo o ácido acético de 20 mM. Para fazer isso, adicione 1 mL de ácido acético de 200 mM para um balão de 10 mL, adicionar 5 mL de metanol absoluto e preenchê-lo até 10 mL com água destilada.
  3. Gere soluções estoque de normas internas (IS) com 1.000 mg/L diretamente em frascos fornecidos pelo fabricante. Dissolva a cefepime -13C12D3 sulfato de sódio em água destilada, meropenem-D6, linezolid-D3e piperacillin-D5 em uma solução de metanol-água de 50%. Dissolva a ciprofloxacina-D8 em 50% de metanol-água com 20mm de acetato e moxifloxacina cloridrato -13C1D3 em água destilada com acetato de 20 mM.
  4. Combine as soluções estoque IS em um tubo de polipropileno de 1,5 mL para produzir uma mistura de padrão interna concentrada quintuplicou. Adicionar 10 µ l de cefepime -13C12D3, 10 µ l de meropenem-D6, 1 µ l de ciprofloxacina-D8, 2 µ l de moxifloxacin hydrochloride -13C1D3, 2 µ l de linezolid-D 3e 10 µ l de piperacillin-D5 a 965 µ l de 25% de metanol-água.
  5. Armazenar as soluções estoque padrão internas e quintuplicou mistura concentrada IS a-80 ° C.

3. se o paciente amostra armazenamento

Nota: Certifique-se que o soro é obtido o mais rápido possível e que a cadeia de frio de amostras congeladas é mantida.

  1. Colete o sangue em tubos de coleta de soro.
  2. Deixe o coágulo de sangue para 20-30 min à temperatura ambiente.
  3. Separe o soro do sangue por centrifugação a 2.000 x g durante 10 minutos.
  4. Transferi o sobrenadante para um tubo limpo de polipropileno.
  5. Armazene o soro até seis meses a-80 ° C até que é analisada. Alternativamente, armazenar as amostras até 3 dias a-20 ° C.

4. buffer preparação para cromatografia

  1. Para preparar 1 M formiato de amônio em água, dissolva 6,306 g de formiato de amônio em 100 mL de água de grau HPLC utilizando um balão de 100 mL batido. Armazenar a solução até 1 mês a 4 ° C.
  2. Preparar o mobile fase um [formiato de amônio 10 mM em ácido fórmico a água (99.9:0.1 v/v)]. Prefill num balão volumétrico de 1.000 mL com cerca de 500 mL de água de grau HPLC, adicionar 1 mL de ácido fórmico e 10 mL da solução 1 M-formiato de amônio e preenchê-lo para 1.000 mL com água de grau HPLC. Transferir a fase móvel A uma garrafa de vidro limpa e conectá-lo ao sistema de HPLC. Fase móvel de armazenamento por até 2 semanas em temperatura ambiente.
  3. Preparar a fase móvel absoluto metanol grau CLAE B. transferência dentro de uma garrafa de vidro limpa e conectá-lo ao sistema de HPLC.
  4. Use metanol absoluto como a agulha lavar com solvente e ligar o tubo correspondente para o frasco de vidro contendo a fase móvel B.
  5. Gere o selo e um solvente de limpeza de ácido fórmico metanol-água (7:92.9:0.1, v/v/v). Prefill num balão volumétrico de 1.000 mL com cerca de 500 mL de água destilada, adicionar 70 mL de metanol absoluto, 1 mL de ácido fórmico e adicionar água destilada até 1.000 mL. Transferir o solvente para um frasco de vidro limpo e conectá-lo com o sistema HPLC.
    Nota: Vários sistemas de mostruário usam um forte e um solvente de lavagem agulha fraco. Nesse caso, prepare as soluções de lavagem de acordo com as recomendações do fabricante. Por exemplo, fazer a lavagem forte com álcool metanol-água-isopropylic (70:20:10, v/v/v) e o fraco com metanol-água (95:5, v/v).

5. o instrumento de otimização

Nota: Esta etapa é executada para a afinação do método em um espectrômetro de massa específico.

  1. Dilua o analito puro 1.000 mg/L e a soluções padrão interno 01:10 ou 1: 100 em uma mistura de fase móvel A e B (50: 50, v/v), dependendo da intensidade de sinal do detector. Sintonizar o espectrômetro de massa com a função de autotune ou fazer uma sintonia manual para os seguintes íons de pai para filha transições14: cefepime (481.0 > 167.0/395.7), cefepime -13C12D3 (485.1 > 167,1 / 400,0), meropenem (384.1 > 114.0/141.0), meropenem-D6 (390.1 > 114.0/147.2), ciprofloxacina (332.0 > 231.0/245.0), ciprofloxacina-D8 (340.1 > 235.1/249.3), moxifloxacina (402.0 > 261.0/383.9), moxifloxacina-13 C1D3 (406,1 > 265.1/388.0), linezolida (338.0 > 235.0/296.0), linezolid-D3 (341.1 > 235.1/297.1), piperacillin (518.0 > 143.0/358.9) e piperacillin-D5 (523.1 > 142.8/364.1).
  2. Para instrumentos com ajuste automático, use a função autotune para ajustar automaticamente a voltagem e as configurações de entrada do MS através dos detectores.
  3. Para instrumentos com sintonia manual, ajustar as configurações (por exemplo, tensão de colisão e energia de colisão) até o ideal (geralmente o máximo) intensidade de sinal é obtida no detector para cada íon de pai e filha. Por exemplo, conecte uma mistura tee, entregar a fase móvel A e B (50: 50, v/v) em 0,5 mL/min e infundir continuamente o padrão puro de antibiótico ou interno com um caudal de 0,1 mL/min.

6. set-up HPLC-MS/MS

Nota: Apresenta o espectrômetro de massa, sistema HPLC (incluindo o mostruário), e o software correspondente dependem do fabricante. Adapte os parâmetros do espectrômetro de massa e o procedimento de lavagem de acordo com as recomendações do fabricante.

  1. Armazenar os parâmetros de espectrômetro de massa em um correspondente 'MS sintonizar o arquivo '. Use electrospray ionização em modo positivo (ESI +) para todos os analitos. Adaptar-se as configurações de fonte do íon para o instrumento utilizado (por exemplo, uma tensão capilar de 1,5 kV, temperatura fonte de 120 ° C, uma temperatura de desolvation de 400 ° C, uma taxa de fluxo de gás de desolvation de 600 L/h, uma tensão de lente de RF de 0,1 V e um tempo de interrupção de 80 ms).
  2. Especificar o analito e padrões internos ajustar parâmetros (por exemplo, tensão capilar, energia de colisão) em um 'MS arquivo '.
  3. Definir as condições de mostruário da seguinte forma na 'arquivo de entrada ': temperatura da amostra entre 10 ° C, com um limite de ± 5 ° C; a sequência de lavagem em 1 x limpeza lavagem-limpeza com uma 600 µ l purgar a reposição volêmica.
  4. No referido 'arquivo de entrada ', defina o fluxo taxa de 0,4 ou 0,5 mL/min, o tempo de execução para 4 min, o limite de alta pressão de 345 bar e a temperatura da coluna a 30 ° C, com um limite de ± 5 ° C. Adicione o nome de solvente de fases móveis A e B e defini-las para A B/93% de 7%, respectivamente.
  5. Programa cromatográfico gradiente no 'arquivo de entrada ' da seguinte forma: 0,00 – 0,10 min com fase móvel de 7% A B/93%, 0,11 – 0,60 min com 65% de fase móvel A B/35%, 0.61 – 2.10 min com fase móvel 95% A B/5%, 2.11 – 4.00 min com 7% de fase móvel B/93% A.
    Nota: Calcule o volume extracoluna, o volume Mantenha-se para a plataforma instrumental e os fatores de retenção do analito conforme descrito na orientação USP < 621 > cromatografia16.

7. amostra medida mestre arquivo

Nota: Com o 'arquivo mestre de medição de amostra ', das amostras são especificadas, a análise de HPLC-MS/MS é iniciada e a avaliação de dados é realizada. Dois arquivos de modelo separado, incluindo um par de controle de baixa e alta-qualidade são gerados; um modelo inclui par QC A e C, o outro um QC par B e D.

  1. Criar um novo 'arquivo mestre de medição de amostra '. Selecione o referido 'MS sintonizar o arquivo ', 'MS arquivo 'e 'arquivo de entrada' (secção 6), inseri-los em cada linha da amostra e especificar o volume de injeção com 15 µ l.
  2. Em ordem crescente, adicione o texto"amostra" para calibradores 0 – 7 e controle de qualidade (QC) par a/c ou QC par b/d.
  3. Especifica o tipo de amostra. Selecione o tipo de amostra "padrão" para os calibradores e "QC" para os pares de controle de qualidade.
  4. Especifica a concentração de cada substância antibiótica para o correspondentes calibradores e controles de qualidade (consulte a planilha, concentração [µ g/mL] Cal 0 7 – Cal, QC a/c ou b/d,).
  5. Programa o 'método de avaliação de dados '. Use as transições otimizadas durante o instrumento de otimização (secção 5). Corresponde cada antibiótico com o padrão de isótopo-rotulado correspondente (por exemplo, meropenem - meropenem-D6).

8. limpeza e HPLC-MS/MS-análise da amostra

Nota: Para cada lote de amostra, um controle de qualidade emparelhado com uma concentração baixa e alta antibiótico (QC/c ou b/d QC) é processado e analisado. Entre diferentes lotes, as amostras emparelhadas de QC são usadas em uma sequência alternativa (por exemplo, no dia 1, selecione o 'arquivo mestre de medição de amostra ' incluindo QC emparelhar a/c; no dia 2, selecione o par QC incluindo um b/d. O processamento das amostras de soro é ilustrado na Figura 1.

  1. Preparar o agente de precipitação 10% metil -tert-butílico em metanol (10:90, v/v) (por exemplo, balão volumétrico prefill um 25 mL com 2,5 mL de metil -tert-butílico e preenchê-lo para 25 mL com metanol absoluto).
  2. Coloque a fase reversa C8 na câmara de coluna. Conectá-lo ao HPLC e espectrômetro de massa, na direção do fluxo.
  3. Gere a lista de amostra. Abra o correspondente 'arquivo mestre de medição de amostra ' modelo e adicionar destinadas a ser processado para a lista das amostras. Geram grupos de até 20 amostras de pacientes e flanqueá-los com o par correspondente do controle de qualidade.
  4. Molhado-prime o sistema HPLC utilizando o 'arquivo de entrada ' controlar software: definir a função de "prime molhado" para a fase móvel 50% B A/50% e molhado-prime por 2 min com uma taxa de fluxo de 1 mL/min.
  5. Atualize a seringa. Para fazer isso, execute 6 traços de 600 µ l do software de controle.
  6. Equilibrar a coluna de fase reversa C8. Usando o software, ligue o fluxo na 'arquivo de entrada ' e nivelá-lo com 7% móvel fase B/93% A durante um período mínimo de 5 min, usando uma taxa de fluxo de 0,5 mL/min. verificar a temperatura da coluna de 30 ° C.
  7. Descongelar as amostras de pacientes, uma alíquota de calibradores 0 – 7 e um par de controle de qualidade (A / B ou C/D).
  8. Com uma pipeta repetitiva, adicione 25 µ l da mistura padrão interna para o calibrador de 100 µ l, amostra QC ou soro em um tubo de polipropileno de 1,5 mL e o tubo de vórtice por alguns segundos.
  9. Incube a mistura durante 5 min à temperatura ambiente em um shaker de bancada (por exemplo, a 1.200 rpm).
  10. Com uma pipeta repetitiva, adicione 150 µ l de um reagente de precipitação à mistura amostra-interno padrão.
  11. Novamente, vórtice o tubo por alguns segundos e ele incube durante 5 min à temperatura ambiente em um shaker de bancada (por exemplo, a 1.200 rpm).
  12. Centrifugar a suspensão de 20.000 x g em uma centrífuga de mesa para 10 min a 4 ° C.
  13. Diluir o sobrenadante 1:3 com água de grau HPLC usando um frasco de vidro com uma microinserção e carregá-lo como processadas amostras para o mostruário.
  14. Iniciar manualmente a análise HPLC-MS/MS 'arquivo de controle de medição de amostra '.
    Nota: Para um armazenamento prolongado, lave minuciosamente a coluna analítica de acordo com a recomendação do fabricante [por exemplo, 0,5 mL/min. o metanol-água (50: 50, v/v)] para evitar o colapso de fase.

figure-protocol-1
Figura 1: representação esquemática da limpeza amostra. Precipitação de proteínas em alta força centrífuga dá uma pelota densa e sobrenadante claro, indicando a precipitação de proteínas foi completa. Todo o tempo de processamento é de aproximadamente 30 min, incluindo a limpeza da amostra, a separação cromatográfica e a análise de MS/MS. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

9. quantificação e avaliação da qualidade

  1. Para processar as amostras, abrir o correspondente 'arquivo de controle de medição de amostra ', selecione os calibradores, controles de qualidade e as amostras dos pacientes e avaliá-las com o 'método de quantificação de antibióticos '.
  2. Verifique se os picos de um analito específico são devidamente integrados. Inspecione os picos para cada calibrador, QC e amostra do paciente e manualmente reintegrá-los na linha de base, se necessário.
  3. Estudo da curva de calibração e examinar se satisfaz os seguintes critérios de qualidade: a) linearidade sobre toda calibração, b) e um coeficiente de calibração r2 > 0.995, c) o desvio-padrão ± 15% de cada calibração a valor nominal, exceto para o limite inferior de quantificação (LLOQ), onde a ± 20% é necessária.
  4. Rejeitar um padrão de calibração não conformes com os critérios acima mencionados e re-avaliar a curva de calibração, incluindo a análise de regressão.
  5. Estudar os controles de qualidade e examinar se os desvios forem ± 15% do valor nominal.
  6. Se a concentração de uma amostra do paciente excede a concentração do calibrador maior, dilua a amostra com água destilada, até a 1:5 (por exemplo, 100 µ l de soro mais 400 µ l de água destilada) antes da limpeza da amostra. Reperform passos 8,8 – 8.14 para esse exemplo específico e reprocessá-lo.

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Resultados

Usando o protocolo descrito, um cromatograma típico é retratado na Figura 2. De acordo com o United States Pharmacopeia (USP) cromatografia diretrizes16, determinou-se o volume morto de coluna no actual sistema com ~0.22 mL e o volume extracoluna (incluindo o injector, tubos e conectores) com ~0.08 mL, dando um volume Mantenha-se de ~0.30 mL. Os fatores de retenção calculado para todos os analitos foram 2.8 (para cefepime) - 4.2 (para ...

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Discussão

Neste manuscrito, relatamos o protocolo para um método de massa baseado em espectrometria de tandem simples e robusta para a quantificação dos antibióticos usados com frequência em ICU19, cefepime, meropenem, ciprofloxacina, moxifloxacina, linezolida, e piperacillin14. Uma planilha acompanha o manuscrito para a preparação de soluções estoque antibióticas, calibradores e controles de qualidade, tendo em conta a pureza dos antibióticos e o peso molecular do seus counterions. ...

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Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Os autores agradecer Dr. Schütze por sua ajuda com o que estabelece o método apresentado e Dr. Zoller pela valiosa contribuição a respeito do intervalo de calibração adequada. Os autores também reconhecem a equipe técnica do centro de espectrometria de massa.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
cloridrato de cefepimaSigma-Aldrich1097636Padrão de referência USP
trihidrato de meropenemSigma-AldrichY0001252EP Padrão
de referência ciprofloxacinaSigma-Aldrich17850
cloridrato de moxifloxacinaSigma-AldrichSML1581
linezolidaToronto Research Chemicals
sal de piperacilina sódicaSigma-Aldrich93129
cefepima-13C12D3 sulfatoAlsachimC1297Padrão interno marcado com isótopo para cefepima
meropenem-D6Toronto Research ChemicalsM225617Padrão interno marcado com isótopo para meropenem
ciprofloxacina-D8Toronto Research ChemicalsC482501Padrão interno marcado com isótopos para
cloridrato de moxifloxacina-13C1D3Toronto Research ChemicalsM745003Padrão interno marcado com isótopos para moxifloxacina
linezolida-D3Toronto Research ChemicalsL466502Padrão interno marcado com isótopos para piperacilina linezolida-D5
Toronto Research ChemicalsP479952Isótopo marcado interno padrão para piperacilina
metanolJT Baker8402
água de grau HPLCJT Baker4218
ácido fórmicoBiosolve6914132
ácido acéticoBiosolve1070501
formiato de amônioSigma-Aldrich70221-25G-F
éter metílico terc-butílicoMerck101845
Fortis 3 μ m C8 100 * 2,1 mmFortisF08-020503
Ti-PEEK-envoled Prifilter (2 μ m)Chromsystems15011
2795 Alliance HPLC systemWaters176000491
Quattro micro API Tandem Quadrupole System Waters720000338
QuanLynx 4.1 softwareWaters/Data fornecido pelo fabricante do espectrômetro de massa
Supplemental FileStock Solutions
L466500 de avaliação

Referências

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  2. Dellinger, R. P., et al. Surviving Sepsis Campaign: international guidelines for management of severe sepsis and septic shock, 2012. Intensive Care Medicine. 39 (2), 165-228 (2013).
  3. Lodise, T. P., Drusano, G. L. Pharmacokinetics and pharmacodynamics: optimal antimicrobial therapy in the intensive care unit. Critical Care Clinics. 27 (1), 1-18 (2011).
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