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Research Article
Fabian L. Kriegel1,2, Ralf Köhler2, Jannike Bayat-Sarmadi2, Simon Bayerl3, Anja E. Hauser2,3, Raluca Niesner2, Andreas Luch*1, Zoltan Cseresnyes*4
1Department of Chemical and Product Safety,German Federal Institute for Risk Assessment (BfR), 2Deutsches Rheuma-Forschungszentrum (DRFZ) Berlin, a Leibniz Institute, 3Charité Universitätsmedizin Berlin, 4Applied Systems Biology,Leibniz Institute for Natural Product Research and Infection Biology Hans Knöll Institute
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Aqui, nós fornecemos um fluxo de trabalho que permite a identificação de células saudáveis e patológicas, com base em sua forma 3-dimensional. Descrevemos o processo de usar contornos 2D projeção com base nas superfícies 3D para treinar um mapa auto-organizável que fornecerá a clusterização objetiva das populações investigadas célula.
A aparência e os movimentos de células do sistema imunológico são conduzidos por seu ambiente. Como uma reação a uma invasão do patógeno, as células do sistema imunológico são recrutadas para o local de inflamação e são ativadas para impedir a propagação da invasão. Isso também se reflete por alterações do comportamento e a aparência morfológica das células imunes. No tecido canceroso, alterações morphokinetic similares foram observadas no comportamento das pilhas microglial: intra-tumoral microglia têm formas 3-dimensional menos complexas, tendo menos ramificados processos celulares e mover-se mais rapidamente do que aqueles em saudável tecido. A análise de tais propriedades morphokinetic exige técnicas de microscopia 3D complexo, que podem ser extremamente desafiadoras quando executada no sentido longitudinal. Portanto, a gravação de uma forma estática de 3D de uma célula é muito mais simples, porque isso não requer medições intravital e pode ser executado em tecido excisado também. No entanto, é essencial possuir ferramentas de análise que permitem a rápida e precisa descrição das formas 3D e permite a classificação de diagnóstica de amostras de tecido saudável e patogénicos com base unicamente nas informações estáticas, relacionadas a forma. Aqui, apresentamos um conjunto de ferramentas que analisa os componentes de Fourier discretos do contorno de um conjunto de projeções de 2D do 3D celular superfícies através de mapas auto-organizável. A aplicação de métodos de inteligência artificial permite nossa estrutura para aprender sobre várias formas de célula, como é aplicado a amostras de tecido de mais e mais, enquanto o fluxo de trabalho permanece simples.
Oportuna, simples e precisa de determinação do estado patológico do tecido biológico é do maior interesse na investigação biomédica. Modelos de mouse fornecem os meios para estudar uma variedade de condições patológicas, tais como reações imunes ou desenvolvimento de câncer, em combinação com 3D complexas e técnicas de microscopia de 4D (3 dimensões espaciais e tempo). Estudos de microscopia podem ser realizada através de intravital ou tecido extirpado 2-fotão microscopia, microscopia de luz-folha e - a uma profundidade limitada de tecido de aproximadamente 100 µm-pela microscopia confocal. Para obter informações relacionadas ao tempo, sobre o comportamento das células sob condições fisiológicas ou patológicas, é necessário monitorar o tecido por um período prolongado de tempo, o que geralmente requer intravital imagem1,2 . Naturalmente, a aplicabilidade desta técnica é limitada a modelos animais devido a sua capacidade de invasão. Técnicas não-invasivas também estão disponíveis para aplicações em seres humanos, incluindo uma variedade de métodos de tomografia computadorizada (CT, listas, etc.), mas todos esses métodos têm o necessário espacial - e frequentemente-resolução temporal para estudar o comportamento a nível celular.
Informação estática sobre a aparência das células pode ser mais facilmente acessível através de 3D várias técnicas de imagem executado na extirpado amostras de tecido. Aqui, o comportamento cinético das células não é medido, assim, é necessário adotar técnicas de análise de romance que são capazes de determinar o status de patogenicidade das células examinadas com base unicamente em sua morfologia3. Esta abordagem foi usada para vincular a célula formas e texturas de tecido para comportamento patológico4,5,6.
Na nova técnica descrita aqui, as células são reconstruídas como superfícies 3D e suas formas são caracterizados através de projeções 3D-para-2D e periferia-forma baseada em Fourier sucessivas análises7,8. Reduzindo as dimensões de 3 para 2, o problema é simplificado. Também é possível caracterizar as superfícies de células em 3D através da aplicação de análise de harmônicos esféricos, como tem sido feito para imagens médicas9. No entanto, harmônicos esféricos não manipular formas nítidas e robustos, exigindo uma grade de multi-escala para estabelecer-se na esfera da unidade. Além disso, o número de componentes necessários harmônicos esféricos pode ser grandes (50-70), com os cálculos subjacentes muito exigente e os resultados difíceis de interpretar10,11,12.
Com nosso método recentemente proposto, a tarefa é reduzida a uma série de descrições de forma 2D, onde o número das projeções 2D é até o analista e pode ser ajustado de acordo com a complexidade da forma 3D. As projeções são geradas automaticamente através de um script Python que é executado dentro de uma ferramenta de animação 3D. As projecções 2D são descritas pelos discretos componentes Fourier transform (DFT) de sua periferia, calculado por um plugin de13 Fiji fornecida aqui como parte de nosso pacote de software. A DFT é aplicada aqui para decompor a complexa estrutura de tópicos da célula em uma série de funções sin e cos. Desta forma, podemos descrever o contorno com um número relativamente pequeno de componentes DFT, reduzindo assim a complexidade do problema (para mais detalhes consulte a secção de equações). Os componentes DFT são colocados no mapa auto-organizável treinados (SOM14), onde a existência de forma aglomerados podem ser objetivamente testado8. SOMs fornecem uma ferramenta de aprendizagem competitiva e sem supervisão da área de inteligência artificial. Eles consistem de uma matriz vinculado de neurônios artificiais, que comunicam entre si através de uma função de distância do bairro ponderada. O sistema neuronal responde para o primeiro elemento do conjunto de dados de entrada e os neurônios, cuja resposta é o mais forte são "agrupados" mais perto um do outro. Como o sistema neural recebe mais de entrada, neurônios de dados que repetidamente respondem fortemente começam a formar o cluster bem definido dentro do sistema. Após treinamento apropriado em um grande conjunto de dados que contém informações de forma 2D em forma de um conjunto de componentes DFT, componentes do qualquer célula individual DFT podem ser colocados no SOM treinado e revelam-se provável a célula pertence a saudável ou o grupo de células patogênicas. Esperamos que tal ferramenta para se tornar uma grande adição para os métodos de diagnósticos clínicos e científicos.
1. requisitos do protocolo
2. Reconstrua a imagem 3D.
Nota: Para fins de teste, um conjunto de dados de exemplo é fornecido no github repositório (veja acima).
3. transformar o 3D reconstruída superfícies em 2D projecções
4. encontre a periferia e calcular os componentes de Fourier usando Fiji.
5. auto-organização mapas
Nota: As redes SOM só são capazes de classificar os dados quando eles são treinados em um grande conjunto de dados que contém a entrada de todos os tipos de células esperado e condições. Para fins de demonstração, um conjunto de dados é fornecido e pode ser encontrado em nosso repositório ("AllCells_summary_normalised.csv" de https://github.com/zcseresn/ShapeAnalysis
Aplicamos uma DFT para calcular os componentes principais da forma correspondente para as projeções de célula. Os descritores de Fourier foram obtidos aplicando o algoritmo DFT para os pares de coordenadas xy da periferia equipada de projeções da célula, obtido como a saída da parte AbSnake do nosso fluxo de trabalho. Esses pares de xycoordinate podem ser tratados como um vetor 2D valores complexos "g":
Do vetor "g", usamos DFT para calcular o valores complexos espectro de Fourier:
Com base em fórmulas conhecidas do espectro de Fourier discreto e usando o número complexo rotulagem de "g" como:
Nós temos:
(1)
Podemos calcular a real ("A") e o imaginários componentes ("B") de
:
(2)
(3)
Aqui, o primeiro DFT componente G0 corresponde a m = 0, o que dá:
(4)
(5)
Consequentemente, este componente descreve o centro geométrico do objeto original.
O segundo elemento do espectro DFT para a frente, G1, corresponde a m = 1:
(6)
De Eq.6, podemos concluir que estes pontos formam um círculo com um raio de
e ângulo inicial
, onde o círculo descreve uma volta completa, enquanto a forma é traçada uma vez. O centro do círculo está localizado na origem (0, 0), o raio é | G1| e o ponto de partida é:

(7)
Em geral, para um único coeficiente de Fourier
, as coordenadas são descritas como:

(8)
Da mesma forma para Eq.6, Eq.8 também descreve um círculo, mas com um raio de Rm= | Gm|, um ângulo inicial
e um ponto de partida no
, onde o contorno é traçado uma vez enquanto o círculo é executado através de "m" órbitas completo16,17.
Parâmetros de forma como entrada SOM
O fluxo de trabalho, conforme descrito na Figura 1, foi aplicado a um deconvolved (usando uma função de espalhar do ponto medido) microscopia intravital fóton multi dataset de pilhas microglial para caracterizar suas alterações morfológicas em saudável ou cancerosas corticais tecido de18. Vinte componentes DFT foram calculados para cada projeção 2D das superfícies 3D reconstruídas e os resultados foram usados como entrada para a formação do SOM. Sob condições fisiológicas, a microglia apresentado de uma forma bastante complexa com múltiplas, altamente ramificada processos (Figura 2a). Quando colocado em um ambiente canceroso (modelo de tumor cortical), a microglia mudado para uma forma mais simples, mais parecido com eixo (Figura 2b).
O SOM treinado foi testado para avaliar sua capacidade de distinguir entre células cancerosas e saudáveis. A população de células saudáveis foi projetada em uma única área de SOM (Figura 2C). O SOM respondeu ao dataset microglia cancerosos com uma região ativa em forma de haltere (Figura 2d). Um conjunto de dados de entrada cegamente misto constituído por componentes de forma DFT tanto o saudável e o grupo canceroso foi projetado pelo SOM em dois grupos distintos, mantendo a forma dos seus contornos individuais semelhantes dos grupos separados ( Figura 2e; Compare com 2C e 2d). Pode-se concluir que o dataset misto com êxito foi agrupado por SOM.
Testamos o desempenho de SOM, comparando suas projeções com a análise manual dos mesmos dados por um médico especialista, que classificou o conjunto de dados com base no seu comportamento espaço-temporal. O perito identificou quatro grupos distintos de células (células de descanso, fagocitose de células, células interagindo e células móveis18), que foram reconstruídos e usados para treinar um 12x12 SOM. A rede treinada (Figura 3a) mostra os grupos de alto sucesso-valor de neurônios artificiais, especialmente no canto inferior esquerdo e as médios áreas de SOM. A resposta da rede treinada também foi testada com quatro subconjuntos aleatoriamente selecionados (que não eram parte do treinamento conjunto de dados) de imagens de quatro diferentes grupos identificados pelo especialista em18. Estes subconjuntos imagem resultaram em quatro respostas bem definidas pelo SOM, como mostrado na Figura 3b. As células de descanso exibem a forma mais complexa e mostrou o mais alto nível de separação dentro da rede neural (Figura 3b "descansar" do painel). Os outros três tipos de célula identificada compartilhado um espaço comum do SOM no canto inferior esquerdo, mas caso contrário foram separados por SOM. O canto inferior esquerdo área SOM, portanto, corresponde aos valores DFT de baixo-índice.
A robustez da abordagem SOM foi testada usando o SOM treinado com três subconjuntos aleatórios do mesmo - descansando - célula tipo (não faz parte do conjunto de dados de treinamento). A resposta de SOM para esta entrada exibe uma resposta muito semelhante (Figura 3C, subconjuntos 1-3), demonstrando a robustez de nossa abordagem.
Mudanças de forma de célula dependente do tempo caracterizam-se precisamente por DFT
A fim de examinar o efeito de mudanças de tempo-dependente da forma celular sobre os componentes DFT, uma a três células por subgrupo (ver Figura 3b) foram rastreadas para 13 a 28 pontos do tempo. A Figura 4 mostra a primeira DFT dez componentes de uma célula móvel (figura 4a) e uma interação célula (figura 4b), que foram plotados em função do tempo. A célula móvel apresenta uma forma permanentemente alterando (ver vídeo complementar 4 em 8), que é refletida por uma superfície mais áspera de DFT. As explosões da amplitude DFT no primeiro terço do curso para a interação célula tempo coincidam com as mudanças de forma rápida e vasta célula conforme mostrado no Video complementar 5 em 8.
O curso de tempo de todos os componentes DFT 19 caracterizou-se também para estas duas células em três pontos de tempo separados durante o acompanhamento de uma célula móvel (Figura 5a) e de uma interação célula (Figura 5b). Os eixos perpendiculares representam, por este meio, os ângulos de seis rotação e indicam que todas as projeções são igualmente importantes para a caracterização da forma para ambos os tipos de célula.

Figura 1. Passo a passo, fluxo de trabalho do processamento de dados para identificar a célula de clustering baseado na forma de células. Reconstruído em 3D de superfícies foram usadas como entrada para o liquidificador para automatizado projeções 3D-para-2D. Localizava-se na periferia de cada projeção e componentes a DFT foram calculados. Os componentes serviram como uma entrada para um SOM treinado em Matlab, ou para treinar um novo SOM. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 2. A aparência típica de células da microglia cortical do mouse sob condições de controle (a) e no tecido canceroso (b) Screenshots de superfícies microglia reconstruído. Projeções de SOM foram criadas a partir dos três grupos de amostras microglia do córtex do mouse: controlar uma população mista de células (e), (d) de células tumorais e células (não-tumoral) (c). Esta figura foi modificada com a permissão de8. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 3. (, à esquerda) Mapa de auto-organização de um dataset de micróglia rato consistindo de 768 vetores de entrada de recurso. O conjunto de dados foi usado para treinar uma rede de neural artificial 12x12, usando geometria hexagonal bairro, inicialização aleatória e épocas de 2000. (um, direito) O SOM correspondente entrada aviões dos primeiros 10 componentes DFT (b) as respostas de SOM descrito na alínea a, para um VRML arquivo subconjunto aleatório cada dos tipos de quatro célula "móvel", "interação", "descanso" e "fagocíticas" como descrito na primeira Figura 5 do Et al . Bayerl 18. resposta (c) a do mesmo SOM como (, à esquerda) para três subconjuntos aleatórios do dataset inteiro (o que, portanto, não faziam parte da formação dataset) das células de"descanso"-digite superfícies 3D. A semelhança entre as três respostas é notável. Esta figura foi modificada com a permissão de8. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 4. (uma) dependência de hora dos primeiros 10 componentes DFT durante um experimento intravital imagem de rato microglia. Este painel mostra dados para uma célula do tipo "Mobile células". O eixo x corresponde a pontos de tempo do experimento em 60 s tempo de resolução, o eixo y mostra a amplitude dos componentes DFT em unidades arbitrárias (u.a.), Considerando que o eixo z corresponde ao componente de DFT de 1 a 10. (b) como em (um), mas para uma célula de "Células interagindo" digite. Esta figura foi modificada com a permissão de8. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 5. (a) o comportamento de todos os componentes DFT 19 de uma célula do tipo "Mobile células" no início, no meio e no final do experimento. Os números no eixo x correspondem à identificação do componente de DFT de 1 a 19. O eixo y mostra a amplitude da componente DFT em unidades arbitrárias (u.a.), enquanto o z-eixo marca os seis ângulos de rotação aleatória. (b) mesmo que em (um), mas para uma célula de "Células interagindo" digite. Esta figura foi modificada com a permissão de8. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Os autores declaram que eles têm não tem interesses financeiro concorrente.
Aqui, nós fornecemos um fluxo de trabalho que permite a identificação de células saudáveis e patológicas, com base em sua forma 3-dimensional. Descrevemos o processo de usar contornos 2D projeção com base nas superfícies 3D para treinar um mapa auto-organizável que fornecerá a clusterização objetiva das populações investigadas célula.
Os autores agradecer Benjamin Krause o debate profícuo e seu apoio. Os autores ainda mais graças a Robert Günther pela ajuda com a microscopia de células vivas.
O trabalho foi apoiado pelo suporte financeiro DFG NI1167/3-1 (JIMI) para R.N. e Z.C., DFG financeira apoio CRC 1278 PolyTarget projeto Z01 para Z.C., C01 em TRR130 RN e SFB633, TRR130, Exc257 de A.E.H e J.B.S. O BfR fornecido apoio intramural SFP1322-642 F.L.K e A.L.
| Imaris 9.1.2, software | Bitplane, Zü rich, Suíça | v.9.1.2 | reconstrução de imagens 3D e geração de superfície; isso foi usado por nós! |
| Blender 2.75a, software | https://www.blender.org/ | v.2.75a | 3D e 4D software de animação de código aberto; 2.75a é a versão necessária para este |
| Python Fiji /ImageJ, software | https://fiji.sc/ | ImageJ v.1.52b | Kit de ferramentas de análise de imagem multi-D de código aberto |
| MATLAB | MathWorks, www.mathworks.com | R2017b | Software de matemática computacional geral |
| MATLAB Machine Kit de aprendizagem | MathWorks, www.mathworks.com | R2017b | Só pode ser usado em conjunto com plugins MATLAB |
| Fiji: SHADE | https://github.com/zcseresn/ShapeAnalysis | v.1.0 | |
| Plugins Fiji: ActiveContour | http://imagejdocu.tudor.lu/doku.php? id=plugin:segmentation:active_contour:start | absnake2 | |
| Computador | Qualquer | NA | Consulte as instruções do Imaris para obter os requisitos mínimos do computador |