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Artigo de método

Um sistema de indução de estomas agrupado por tratamento de imersão de solução de açúcar em plântulas de Arabidopsis thaliana

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DOI:

10.3791/58951

15 de fevereiro de 2019

Neste artigo

Resumo

O objetivo do presente protocolo é demonstrar como induzir estomas clusterizadas em cotilédones de plântulas de Arabidopsis thaliana por tratamento de imersão com uma solução de médio contendo açúcar e como observar estruturas intracelulares como cloroplastos e microtúbulos nas células guarda clusterizados usando confocal laser microscopia.

Resumo

Movimento estomático Medeia troca gasosa planta, que é essencial para a fotossíntese e transpiração. Estomática de abertura e fechamento são realizados por um significativo aumento e diminuição do volume das células de guarda, respectivamente. Porque o transporte de transporte de íons e água ocorre entre as células guarda e células epidérmicas vizinhas maiores durante o movimento estomático, espaçada distribuição dos estômatos da planta é considerada uma distribuição ideal para o movimento estomático. Sistemas experimentais para perturbar o espaçamento padrão dos estomas são úteis para examinar o significado do padrão de espaçamento. Foram identificados vários genes chaves associados à distribuição estomática espaçada, e estômatos em cluster podem ser induzidos experimentalmente, alterando estes genes. Alternativamente, estomas em cluster podem ser também induzidas por tratamentos exógenos sem modificação genética. Neste artigo, descrevemos um sistema simples de indução para estomas clusterizados em plântulas de Arabidopsis thaliana por tratamento de imersão com uma solução de médio contendo sacarose. Nosso método é fácil e diretamente aplicável às linhas transgénicas ou mutantes. Cloroplastos maiores são apresentados como uma célula biológica marca registrada de induzida em sacarose clusterizadas células guarda. Além disso, uma imagem microscópica confocal representativa de microtúbulos corticais é mostrada como um exemplo de observação intracelular de células de guarda em cluster. A orientação radial de microtúbulos corticais é mantida nas células de guarda em cluster como em células de guarda espaçadas em controlar as condições.

Introdução

O estoma de planta é um órgão essencial para a troca de gás para a fotossíntese e a transpiração e movimento estomático é realizado por mudanças significativas nas células de guarda a íon-driven captação e liberação de água. Sob um microscópio, podemos observar um padrão de distribuição espaçada de estômatos nas superfícies das folhas e caules. Esta distribuição espaçada de estomas é considerada para ajudar o movimento estomático, que é regulamentado pela troca de íons e água entre as células guarda e vizinhos células epidérmicas1,2. Sistemas de indução experimental de estomas em cluster são úteis para investi....

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Protocolo

1. preparação da solução médio de 1/2 Murashige-Skoog 3% sacarose, contendo

  1. Adicione 1,1 g de sais médios Murashige-Skoog e 15 g de sacarose para um copo.
  2. Adicione 490 mL de água destilada e misture bem, usando uma barra de agitação.
  3. Ajuste o pH a 5.8 usando KOH.
  4. Diluir para 500 mL com água destilada e transferir a solução para um frasco médio.
  5. Esterilize a solução por autoclave (121 ° C, 20 min). Se não usado imediatamente, esta solução pode ser mantida a 4 ° C após a esterilização.

2. indução de estomas agrupadas por sacarose, contendo solução médio tratamento de imersão

  1. Es....

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Resultados

Aqui, foi apresentado o protocolo para um método simples de induzir estomática clusters com sacarose, contendo solução média em mudas da . thaliana . As células de guarda em cluster cultivadas em solução média contendo sacarose (Figura 1B) possuem cloroplastos maiores que guarda cultivados em condições de controle isento de sacarose (Figura 1A). O alargamento dos cloroplastos foi confirm.......

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Discussão

Nós apresentamos protocolos para indução dos estomas em cluster em mudas da . thaliana por tratamento de imersão com uma solução de médio contendo sacarose. Como mostrado aqui, esse método é muito simples e não requer nenhuma habilidade especializada mas eficiente pode induzir estomas em cluster. Mais de 45% das células guarda estão agrupadas com 3% de sacarose, contendo solução média (valores médios de mais de 20 observações independentes)6. Além disso, este sistema experimental pode dir.......

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Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Nós estamos gratos ao Prof Seiichiro Hasezawa pelo seu apoio gentil do nosso trabalho. Este trabalho foi financiado por doações da sociedade do Japão para a promoção da ciência (JSPS) KAKENHgrant números 17 19380 K e 18 H 05492, da Fundação de Sumitomo para um subsídio para projetos de pesquisa de ciência básica conceder número 160146 e a Fundação da Canon a T.H. Este sistema experimental foi desenvolvido sob um apoio financeiro do número JSPS KAKENHgrant 26891006 para K. A. Agradecemos a Robbie Lewis, MSc, do grupo de Emilia (www.edanzediting.com/ac) para a edição de um projecto do manuscrito.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Placa de 24 poçosSumitomo BaqueliteMS-0824R
laser de 488 nmFurukawa DenkoHPU-50101-PFS2
Laser de 488 nmOlympusSapphire488-20/O
Filtro passa-longo de 510 nmOlympusBA510IF
524 - Filtro passa-banda de 546 nmSemrockFF01-535/22-25
Passa-curta de 530 nm filtroOlympusBA530RIF
laser de 561 nmCVI Melles Griot85-YCA-025-040
604 - 644 nm filtro passa-bandaSemrockFF01-624/40-25
Cabeça de varredura a laser confocalYokogawaCSU10
OlympusFV300
CâmeraCCD refrigeradaCoolSNAP HQ2
Software de aquisição de imagemMolecular DevicesMetaMorph versão 7.8.2.0
Software de aquisição de imagemOlympusFLUOVIEW v5.0
Óleo de imersãoÓleode imersão Olympus Óleo de imersão Type-Fne = 1.518 (23 graus)
Microscópio invertidoOlympusIX-70
Microscópio invertidoOlympusIX-71
Mistura de sal vegetal Murashige e SkoogFUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation392-00591Murashige T e Skoog F (1962) Um meio revisado para crescimento rápido e bioensaios com culturas de tecidos de tabaco. Fisiologia Plantarum 15(3), 473-497.
Lente objetiva OlympusUPlanApo 100x / 1.35 NA Oil Iris 1.35NA = 1.35
Lente objetiva OlympusUPlanAPO 40x / 0,85 NANA = 0,85
SacaroseFUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation196-00015
Câmera CCD refrigerada

Referências

  1. Raschke, K., Fellows, M. P. Stomatal movement in Zea mays: shuttle of potassium and chloride between guard cells and subsidiary cells. Planta. 101 (4), 296-316 (1971).
  2. Higaki, T., Hashimoto-Sugimoto, M., Akita, K., Iba, K., Hasezawa, S.

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

Tratamento com SacaroseVolume das Células-GuardaAmpliação dos CloroplastosMicrotúbulos CorticaisMicroscopia ConfocalMeio Murashige-SkoogAgrupamento EstomáticoIncubação de Plântulas