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Artigo de método

Estudando o RNA interactianos de proteína quinase RNA-ativado durante o ciclo celular dos mamíferos

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DOI:

10.3791/59215

⸱

5 de março de 2019

 ,  , 
1Department of Chemical and Biomolecular Engineering and KI for Health Science and Technology (KIHST), Korea Advanced Institute of Science and Technology (KAIST)

Neste artigo

Resumo

Nós apresentamos abordagens experimentais para estudar RNA-interactianos de double-stranded RNA ligação proteína quinase RNA-ativado (PKR) durante o ciclo de pilha mamífero usando células HeLa. Este método utiliza o formaldeído para complexos de crosslink RNA-PKR e imunoprecipitação para enriquecer RNAs ligados a PKR. Estes RNAs podem ser analisados ainda mais através de sequenciamento de alto rendimento ou qRT-PCR.

Resumo

Proteína quinase RNA-ativado (PKR) é um membro das proteínas de resposta imune inata e reconhece a estrutura secundária de double-stranded do RNA viral. Quando vinculado a viral double-stranded RNA (dsRNAs), o PKR sofre de dimerização e autofosforilação subsequente. PKR fosforilada (pPKR) torna-se ativo e induz a fosforilação de subunidade alfa do fator de iniciação eucariótico 2 (eIF2α) para suprimir a tradução global. Aumentando a evidência sugere que a PKR pode ser ativada em condições fisiológicas, tais como durante o ciclo celular ou sob diferentes condições de estresse, sem infecção. No entanto, nosso entendimento sobre os ativadores de RNA de PKR é limitado devido à falta de um método experimental padronizado para capturar e analisar dsRNAs PKR-interagindo. Aqui, apresentamos um experimental protocolo especificamente enriquecer e analisar PKR limite RNAs durante o ciclo celular utilizando células HeLa. Nós utilizamos a atividade de reticulação eficiente de formaldeído para corrigir complexos PKR-RNA e isolá-los através da imunoprecipitação. Então, PKR co-immunoprecipitated RNAs podem ser processados para gerar uma biblioteca de sequenciamento de alto rendimento ainda mais. Uma classe importante de PKR-interagindo celular dsRNAs é RNAs mitocondriais (mtRNAs), que podem existir como intermoleculares dsRNAs através da interacção complementar entre os RNAs de luz-fio e pesados-strand. Para estudar o strandedness destes mtRNAs frente e verso, apresentamos também um protocolo para a vertente específica qRT-PCR. Nosso protocolo é otimizado para a análise de RNAs PKR-limite, mas ele pode ser facilmente modificado para estudar dsRNAs celular ou RNA-interactianos de outras proteínas com ligação dsRNA.

Introdução

Proteína quinase RNA-ativado (PKR), também conhecido como eucarióticas iniciação fator alfa-2 da quinase 2 (EIF2AK2), é uma bem caracterizadas proteína quinase que transmite informações fornecidas por RNAs. Pertence a alfa de subunidade de iniciação 2 Tradução eucariota (eIF2α) família quinase e fosforila eIF2α em serina 51 em resposta à infecção para suprimir a tradução global1. Neste contexto, o PKR é ativado por RNAs virais double-stranded (dsRNAs), que fornecem uma plataforma para PKR dimerização e autofosforilação2. Além de eIF2α, PKR pode também phosphorylate p53, substrato do receptor de insulina 1, inibidor κB e c-Jun N-terminal kinase (JNK) para regular a atividade de numerosos sinal transdução vias3,4,5, 6.

PKR foi originalmente identificada como uma quinase que fosforilado eIF2α durante a infecção de poliovírus através do reconhecimento dsRNAs7,8 dos poliovírus. PKR é encontrado cada vez mais a desempenhar papéis multifacetadas além da resposta imune, e sua ativação aberrante ou avaria está implícito em várias doenças humanas. Ativado/Phosphorylated PKR (pPKR) é frequentemente observada durante a apoptose e é uma característica comum dos pacientes do doenças degenerativas, particularmente doenças neurodegenerativas, como a doença de Huntington, Parkinson e a doença de Alzheimer9 ,10,11,12,13. Além disso, o PKR é ativado sob várias condições de estresse, tais como estresse metabólico e calor choque14,15,16,17. Por outro lado, a inibição da PKR resulta na proliferação celular aumentada e transformação maligna mesmo18,19. PKR função também é importante na função cerebral normal e durante o ciclo celular, como o nível de pPKR é elevada durante a fase de M20,21,22. Neste contexto, pPKR suprime tradução global e fornece dicas para sistemas de sinalização mitóticas chaves que são necessárias para a adequada divisão celular20. Além disso, a ativação prolongada de PKR resultou na fase G2/M detenção do ciclo celular em ovário de hamster chinês células23. Consequentemente, a fosforilação de PKR é regulada pelo ciclo de feedback negativo para garantir rápida desativação durante a transição de M/G121.

Apesar da função de ampla gama de PKR, nossa compreensão da ativação PKR é limitado devido à falta de uma abordagem experimental padronizada de alta produtividade para capturar e identificar dsRNAs que pode ativar PKR. Estudos anteriores mostraram que a PKR pode interagir com dsRNAs formado por dois invertido Alu repetições (IRAlus)20,24, mas a possibilidade da existência de dsRNAs celular adicional que pode ativar PKR durante o ciclo celular ou sob condições de estresse em células humanas era inexplorado. A abordagem convencional na identificação de RNA-interactianos de uma proteína de ligação de RNA (RBP) usa a luz UV para crosslink RNA-RBP complexos25,26,27. Um estudo recente aplicado esta abordagem de reticulação UV em um sistema de rato e identificou que pequenos RNAs nucleolares podem regular a ativação PKR durante o estresse metabólico16. Utilizando a reticulação de alta eficiência de formaldeído, apresentamos um método alternativo para identificar RNAs PKR-interagindo durante o ciclo celular em células de HeLa28. Uma abordagem similar foi aplicada para estudar outros dsRBPs como Staufen e Drosha29,30,31. Nós achamos que a PKR pode interagir com vários tipos de RNA não-codificante tais como curto interspersed nuclear elemento (SINE), longo intercaladas elemento nuclear (linha), elemento de retrovírus endógenos (ERV) e alfa-satélite nem RNAs. Além disso, mostramos que a PKR pode interagir com RNAs mitocondriais (mtRNAs), que forma intermoleculares dsRNAs através da interacção complementar entre a luz e pesados-strand strand RNAs28. Uma recente publicação mais suporte para nossos dados que algumas mtRNAs existe em um formulário frente e verso e pode ativar sensores dsRNA como melanoma diferenciação-proteína associada 5 para induzir os interferões32. Mais importante, a expressão e Localização subcellular das mtRNAs são modulados durante o ciclo celular e por vários factores de stress, que pode ser importante na sua capacidade de regular a ativação de PKR28.

Neste artigo, apresentamos um protocolo detalhado para uma reticulação de formaldeído recentemente desenvolvidos e imunoprecipitação (fCLIP) método para capturar e analisar RNAs PKR-interagindo durante o ciclo celular. Demonstramos o método para preparar amostras de detenção do ciclo celular utilizando timidina e nocodazole. Em seguida apresentamos o processo de fCLIP para isolar RNAs ligados a PKR e um método para preparar a biblioteca de sequenciamento de alto rendimento para identificar estes RNAs. Além disso, podemos delinear procedimentos detalhados para analisar ligados a PKR RNAs usando qRT-PCR. Especificamente, apresentamos um procedimento de transcrição reversa vertente específica para analisar o strandedness de mtRNAs. O protocolo descrito é otimizado para as células HeLa e PKR, mas etapas-chave tais como a preparação da amostra de ciclo celular, fCLIP e análise da vertente específica qRT-PCR podem ser facilmente modificadas para estudar celular dsRNAs ou identificar interactianos de RNA de outros dsRBPs.

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Protocolo

1. solução e célula preparação

  1. Preparação da solução
    1. Para o meio de cultura celular, prepare-se meio para cultura de células HeLa, adicionando 50 mL de soro fetal bovino (FBS) para 500 mL de meio modificado águia de Dulbecco (DMEM).
      Nota: Os antibióticos podem ser adicionados ao meio de cultura celular, mas não usamos antibióticos.
    2. Para o 0,1% paraformaldeído, dissolver paraformaldeído 4% (p/v) em 1 x Phosphate-Buffered salino (PBS) com aquecimento em uma chapa quente e diluir para fazer 30 mL de 0,1% (v/v) paraformaldeído adicionando 1X PBS.
      Atenção: Executar todas as etapas em uma coifa e tenha cuidado para não ferver a solução de paraformaldeído. Proteger a solução 0,1% de luz e armazenar a 4 ° C. Utilize a solução dentro de um mês.
      Nota: O pH da solução de paraformaldeído final de 0,1% (v/v) deve ser em torno de 7.
    3. Preparar o tampão de Lise fCLIP: 20 mM Tris-HCl (pH 7,5), 15 mM NaCl, 10 mM de EDTA, 0,5% (v/v) nonidet-p40 (NP-40), 0,1% (v/v) Triton X-100, 0,1% (v/v) sulfato dodecyl de sódio (SDS) e Deoxycholate do sódio de 0,1% (p/v). Adicione água destilada tripla (TDW) para 40 mL. Loja a 4 ° C.
    4. Preparar fCLIP tampão de lavagem: 20 mM Tris-HCl (pH 7,5), 150 mM NaCl, 10 mM de EDTA, 0,1% (v/v) NP-40, 0,1% (v/v) Triton X-100, 0,1% (v/v) SDS e 0,1% (p/v) Deoxycholate do sódio. Adicione 40 mL TDW. Loja a 4 ° C.
    5. Preparar 4 x buffer de PK: 400 mM Tris-HCl (pH 7,5), 200 mM NaCl, 40 mM de EDTA e SDS de 4% (v/v). Adicione 40 mL TDW. Armazenar em temperatura ambiente.
    6. Preparar o tampão de eluição de fCLIP: 20 mL de 4 x 8,5 mL de TDW, 21 g de ureia e buffer de PK. Prepare-se fresco.
    7. Preparar o tampão de eluição do RNA: 0,3 M de NaOAc e SDS 2% (p/v). Armazenar em temperatura ambiente.
    8. Prepare 2 x tintura de carregamento do RNA: 0.025% (p/v) de azul de bromofenol, xileno cianol de 0.025% (p/v), 5 mM EDTA, SDS de 0,05% (p/v) e formamida 95% (v/v). Loja a-20 ° C.
    9. Preparar 1 buffer de x TBE: 0.089 M Tris-borato e 0,002 M EDTA. Prepare 500 mL de tampão TBE.
  2. Preparação de células de fase-preso S ou M
    1. Semente de 750.000 ~ ou ~ 1.000.000 HeLa células para amostras preso a fase S ou M, respectivamente. Desenvolvem-se células em 37 ° C e 5% CO2 por 24 h.
    2. Tratar as células com timidina 2mm e incubar por 18 h a 37 ° C.
    3. Lave as células duas vezes com PBS. Adicionar mídia fresca e incubar durante 9 h a 37 ° C.
    4. Para S células fase-preso, tratar as células com timidina 2mm. Para células de fase-preso M, trate as células com 100 ng/mL nocodazole. Incube por 15 h a 37 ° C e a colheita de células.
      Nota: A homogeneidade das amostras de ciclo celular pode ser verificada usando FACS.

2. formaldeído cross-linking e imunoprecipitação

  1. Colheita da pilha
    1. Para uma amostra da fase S, colete as células com um raspador de célula e transferência em um tubo cônico de 15 mL. Para uma amostra da fase M, bata com o lado do prato cultura celular para destacar células fase-preso M e transferi-los para um tubo cônico de 15 mL.
      Nota: Para aumentar a homogeneidade das células M fase-preso, não use um raspador de célula.
    2. Centrifugar as células a 380 x g em temperatura ambiente por 3 min. Retire o sobrenadante e ressuspender com 1 mL de frio PBS e transferir para um tubo de microcentrifugadora de 1,5 mL.
    3. Centrifugar as células a 10.000 x g a 4 ° C durante 30 s. remover o sobrenadante completamente.
  2. Reticulação de formaldeído
    1. Adicione 750 μL de paraformaldeído 0,1% por 10 min à temperatura ambiente para consertar as células.
    2. Adicionar 250 μL de glicina 1 M e incubar um adicional 10 min à temperatura ambiente para saciar a reação. Centrifugar as células a 10.000 x g a 4 ° C durante 30 s. remover o sobrenadante completamente.
    3. Re-suspenda com 1 mL de PBS. Centrifugar as células em 10.000 x g a 4 ° C por 30 s e remover o sobrenadante.
    4. Re-suspenda com 400 μL de tampão de Lise fCLIP suplementado com inibidor de protease de 0,2% (v/v) e 2% (v/v) inibidor de RNase. Incubar no gelo por 10 min e proceda à sonicação usando um ultrasonicator.
    5. Adicione 11 μL de 5 M NaCl, ajustar a concentração de NaCl ~ 150 mm. Vórtice brevemente e centrifugar 21.130 x g a 4 ° C por 15 min. Transfira o sobrenadante para um tubo de microcentrifugadora pre-refrigerados 1,5 mL.
      Nota: Manter 40 μL do sobrenadante em um novo tubo de centrifugação, como o exemplo de entrada. Armazenar o exemplo de entrada a 4 ° C.
  3. Imunoprecipitação
    1. Adicione 20 μL de grânulos de proteína A um tubo de microcentrifuga de 1,5 mL.
    2. Lave os grânulos com 400 μL de tampão de Lise fCLIP. Centrifugue os grânulos a 1.000 x g a 4 ° C, durante 1 min. Retire o sobrenadante e adicionar 400 μL de tampão de Lise fCLIP cuidadosamente. Delicadamente, re-suspender os grânulos invertendo-se 3 ~ 4 vezes.
    3. Repeti a etapa de lavagem três vezes. Após a lavagem final, remova o sobrenadante completamente.
    4. Re-suspenda as contas em 300 μL de tampão de Lise fCLIP. Adicione 8.3 μL de 5 M NaCl, ajustar a concentração de NaCl ~ 150 mm. Adicionar 10 μL do anticorpo PKR e incubar durante 3 h em rotacao a 4 ° C.
    5. Centrifugue os grânulos a 1.000 x g a 4 ° C, durante 1 min. Retire o sobrenadante e adicionar 400 μL de tampão de lavagem fCLIP. Delicadamente, re-suspender os grânulos invertendo-se 3 ~ 4 vezes.
    6. Repita a etapa de lavagem duas vezes. Após a lavagem final, remova o sobrenadante completamente.
      Nota: Nunca use um misturador do vortex. Inverta o tubo delicadamente com as mãos.
    7. Adicionar 300 μL de lisado e incubar durante 3 h a 4 ° C em rotacao.
      Nota: O tempo de incubação pode resultar em vinculação do aumento do fundo.
    8. Centrifugue os grânulos a 1.000 x g a 4 ° C, durante 1 min. Retire o sobrenadante e adicionar 400 μL de tampão de lavagem fCLIP. Delicadamente, re-suspender os grânulos invertendo-se 3 ~ 4 vezes.
    9. Repeti a etapa de lavagem três vezes. Após a lavagem final, remova o sobrenadante completamente.
    10. Adicione 300 μL de tampão de eluição de fCLIP. Incube em uma thermomixer por 3 h a 25 ° C para eluir PKR de grânulos.
      Nota: Prepare o fresco de tampão de eluição fCLIP.
    11. Centrifugar a 1.000 x g , à temperatura ambiente e transferir o sobrenadante para um tubo siliconizado limpo.
      Nota: Um tubo de microcentrifugadora também é okey, mas tubo siliconizado é a preferida para evitar a evaporação durante a etapa de reticulação (etapa 2.3.12).
    12. Adicionar 300 μL de proteinase K (20 mg/mL) e incubar durante uma noite a 65 ° C.
      Nota: Utilize um thermomixer com tampa aquecida para evitar a evaporação.
  4. Extração de RNA
    1. Adicione 580 μL de ácido fenol clorofórmio e vórtice por 30 s. Incubar a 37 ° C por 1h.
    2. Vórtex durante 30 segundos e centrifugar a 12.000 x g em temperatura ambiente por 10 min.
    3. Transferi a camada superior para um tubo de microcentrifugadora limpa 1,5 mL. Adicione o volume de 1/10 de 3M NaOAc, 0,5 µ l de coprecipitant (por exemplo, Glycoblue) e um volume igual de isopropanol. Incubar durante uma noite a-20 ° C.
    4. Precipitar pelotas por centrifugação a velocidade máxima a 4 ° C, durante 1 h.
      Nota: Se não foram observados aglomerados de RNA/DNA, adicione um adicional 0,5 μL de coprecipitant e centrífuga para um adicional 1 h. continuar esta etapa até pelotas de RNA/DNA são observadas.
    5. Remover o sobrenadante e adicionar 1 mL de álcool etílico de 75%. Centrifugar a 12.000 x g a 4 ° C por 5 min. repetir a etapa de lavagem mais uma vez. Remover o sobrenadante completamente e seque a pelota à temperatura ambiente.
    6. Adicione 42 μL de TDW, 5 μL de DNase eu de buffer, 1 μL de inibidor de RNase e 2 μL de DNase I. Incubar a 37 ° C por 1h.
    7. Adicione 150 μL de TDW e 200 µ l de ácido fenol clorofórmio. Vórtice de 30 s. centrifugar a 12.000 x g em temperatura ambiente por 10 min.
    8. Transferi a camada superior para um tubo de microcentrifugadora limpa 1,5 mL. Adicione 20 μL de 3 M NaOAc, 0,5 µ l de coprecipitant e 1 mL de álcool etílico de 100%. Incubar durante uma noite a-80 ° C.
    9. Precipitar pelotas e lavar com álcool etílico de 75%, conforme descrito nas etapas 2.4.4 para 2.4.5.
    10. Ressuspender em quantidade adequada de TDW.

3. sequenciamento biblioteca preparação

  1. remoção de rRNA
    1. Re-suspenda as pelotas de RNA da etapa 2.4.10 com 28 μL de TDW.
      Nota: A quantidade máxima de RNA total deve ser inferior a 5 μg.
    2. Siga os procedimentos fornecidos pelo guia de referência do kit rRNA remoção para remover o rRNA.
    3. Limpar o rRNA empobrecido RNAs adicionando 160 μL de grânulos magnéticos.
      1. Misture pipetando ~ 15 vezes e incubar a temperatura ambiente por 15 min.
      2. Prenda o tubo em uma barra magnética e remover o sobrenadante.
      3. Adicionar 300 μL de álcool etílico a 80%, enquanto as contas ainda estão anexadas na Barra magnética e incubam por 30 s.
      4. Substitua o álcool etílico com uma solução de 300 μL a fresco. Ar seco os grânulos na Barra magnética para 12 min à temperatura ambiente.
      5. Re-suspenda as contas em 12 μL de TDW e misture pipetando 15 vezes.
      6. Anexar os grânulos na Barra magnética e mover o sobrenadante para um tubo limpo do PCR.
    4. Empobrecem as fragmentada RNAs ribossomal (rRNAs) seguindo os procedimentos fornecidos pelo rRNA Kit de depleção.
    5. Limpe os RNAs adicionando 110 μL de grânulos magnéticos e repetindo as etapas 3.1.3.1 para 3.1.3.6.
  2. Ligadura de rotulagem e adaptador de RNA
    1. Em RNAs empobrecido rRNA, adicione 2 μL de tampão, x CIAP 10, 1 μL de inibidor de RNase e 2 μL de fosfatase alcalina da Antártica. Incube a 37 ° C por 1h e depois a 65 ° C por 5 min inactivar a fosfatase.
    2. Adicione 3 μL de tampão, x PNK 10, 1,5 μL de inibidor de RNase, 1,5 μL de T4 PNK enzima 0,8 μL de r-ATP e 1,7 μL de TDW. Incube a 37 ° C, durante 50 min.
    3. Adicionar 1,5 μL de 10mm ATP e incubar a 37 ° C por mais 40 min.
    4. Pare a reação adicionando 170 μL de tampão de eluição do RNA.
    5. Adicione 200 μL de clorofórmio fenol-ácido e vórtice por 30 s. centrifugar a 12.000 x g em temperatura ambiente por 10 min.
    6. Transferi a camada superior para um tubo de microcentrifugadora limpa 1,5 mL. Adicione 20 μL de 3 M NaOAc, 0,5 µ l de coprecipitant e 1 mL de álcool etílico de 100%. Incubar durante uma noite a-80 ° C.
    7. Precipitar o RNA pelotas e lavar com álcool etílico de 75%, conforme descrito nas etapas 2.4.4 para 2.4.5. Ressuspender em 4,5 μL de TDW e adicionar 9 μL de 2 x tintura do carregamento de RNA.
    8. Aquece a amostra a 95 ° C por 5 min e carga em um gel de ureia-página 10%.
    9. Funcione o gel a 370 V por 40 min.
      Nota: Pré-funcione o gel a 370 V para 90 min antes de carregar a amostra.
    10. Corte o gel na região de nucleotídeo ~ 100-500 e quebrar o gel.
    11. Adicione 700 μL de 0,3 M NaCl e incubar durante uma noite a 4 ° C em rotacao.
    12. Transferi a solução para uma coluna e centrifugar a velocidade máxima à temperatura ambiente por 5 min.
    13. Transferi o eluato num tubo microcentrifuga limpa 1,5 mL. Adicione o volume de 1/10 de 3M NaOAc 0,5 μL de coprecipitant e um volume igual de isopropanol. Incubar durante uma noite a-20 ° C.
  3. Ligadura de adaptador 3'
    1. Precipitar o RNA pelotas e lavar com álcool etílico de 75%, conforme descrito nas etapas 2.4.4 para 2.4.5.
    2. Re-suspender as pelotas de RNA em 6,5 μL de TDW e adicionar 1 μL de 10 μM 3' adaptador.
    3. Transferir a solução para um tubo PCR e incubar a 70 ° C por 2 min.
    4. Adicione 1 μL de tampão, ligadura 10 x 0,5 μL de inibidor de RNase e 1 μL de RNA T4 ligase do 2. Incube a 28 ° C, durante 1 h, 6 h 25 ° C e 22 ° C, durante 6 h.
    5. Adicione 12 μL de 2 x tintura do carregamento de RNA e calor a 95 ° C por 5 min.
    6. Gel de purificar a 3' adaptador ligado RNAs, conforme descrito em 3.2.9 para 3.2.13.
  4. Ligadura de adaptador 5'
    1. Precipitar o RNA pelotas e lavar com álcool etílico de 75%, conforme descrito nas etapas 2.4.4 para 2.4.5.
    2. Re-suspender as pelotas de RNA em 4.2 μL de TDW e adicionar 1 μL de 5 μM 5' adaptador.
    3. Transferir a solução para um tubo PCR e incubar a 70 ° C por 2 min.
    4. Adicione 0,8 μL de tampão, ligase 10 x, 0,4 μL de inibidor de RNase, 0,8 μL de 10mm ATP, 0,8 μL de RNA T4 ligase do 1. Incube a 28 ° C, durante 1 h, 6 h 25 ° C e 22 ° C, durante 6 h.
  5. A transcrição reversa e amplificação por PCR
    1. No 5' adaptador RNAs ligados, adicionar 1 μL de primer de transcrição reversa 4 μM. Incubar a 70 ° C por 2 min e arrefecer imediatamente a 4 ° C.
    2. Adicione 4 μL de tampão, FS x 5, 4 μL de 2.5 mM dNTP, 1 μL de 0,1 M DTT 1 μL de inibidor de RNase e 1 μL de transcriptase reversa. Incube a 50 ° C por 1 h e 70 ° C durante 15 min.
    3. Preparar a amplificação por PCR
      1. Misturar 1 μL do produto da RT, 1 μL de primer RPI 25 μM, 1 μL de primer de RP1 25 μM, 10 μL de 5x buffer de HF, 4 μL de 2.5 mM dNTP, 32,5 μL de TDW e 0,5 μL de polymerase de alta-fidelidade.
      2. Executar programa PCR para 11 ~ 13 ciclos.
        Nota: O programa para o PCR é: 98 ° C por 30 s para um começo quente, 98 ° C, durante 10 s, 60 ° C por 30 s e 72 ° C por 45 s para amplificação e 72 ° C por 5 min. A etapa de amplificação é repetida em ciclos de 11-13.
    4. Limpe os produtos PCR usando 40 μL dos grânulos magnéticos e passos seguintes 3.1.3.1 para 3.1.3.6 mas usando 10 μL de TDW para Eluir o DNA.
    5. Adicione 2 μL de tintura de carregamento 10 x DNA. Carregar a amostra em um gel do acrilamido 6% e executar a 200 V por 30 min.
    6. Mancha com Sybr gold (0,01% (v/v) em 1 x TBE buffer) durante 5 min à temperatura ambiente.
    7. A mancha em 1 x TBE buffer durante 5 min à temperatura ambiente.
    8. Corte o gel na região de nucleotídeo ~ 200 – 700 e quebrar o gel.
    9. Adicione 700 μL de 0,3 M NaCl e incubar durante uma noite em temperatura ambiente para Eluir o DNA.
    10. Coloque tudo em uma coluna e centrifugar a velocidade máxima à temperatura ambiente por 5 min.
    11. Transferi o eluato num tubo microcentrifuga limpa 1,5 mL. Adicione o volume de 1/10 de 3M NaOAc 0,5 μL de coprecipitant e um volume igual de isopropanol. Incubar durante uma noite a-20 ° C.
    12. Precipitar o DNA pelotas e lavar com álcool etílico de 75%, conforme descrito nas etapas 2.4.4 para 2.4.5. Ressuspender em 20 μL de TDW.
    13. Analise a amostra com um sequenciador.

4. análise da PKR-interagindo RNAs usando qRT-PCR

  1. Método 1: A transcrição reversa do hexâmero aleatória
    1. Re-suspender pelotas RNA da etapa 2.4.10 com 8,5 μL de TDW e transferir a solução para um tubo PCR.
    2. Adicione 0,5 μL de hexâmeros aleatória de 100 μM e 4 μL de mistura de 2.5 mM dNTP.
    3. Calor a solução a 65 ° C por 5 min e imediatamente incubar no gelo pelo menos 1 min.
    4. Fazer com que a reação mix: 4 μL de tampão de x SSIV 5, 1 μL de 100 mM DTT, 1 μL de inibidor de RNase e 1 μL de transcriptase reversa (200 U/μL). Adicione a mistura de reação para a solução de RNA.
    5. Incubar a mistura a 23 ° C por 10 min, 50 ° C por 10 min e 80 ° C por 10 min.
    6. Analise o cDNA usando um sistema PCR em tempo real.
      Nota: O programa para o PCR em tempo real é: 95 ° C por 3 min para arranque a quente, 95 ° C por 5 s e 60 ° C durante 10 s para amplificação e 95 ° C por 30 s, 65 ° C por 30 s e 95 ° C por 30 s para derreter. A etapa de amplificação é repetida para 40 ciclos.
  2. Método 2: Transcrição reversa Strand-específicos
    1. Preparar uma mistura de mestre de primers inversa: mistura de quantidades iguais de primers específicos de transcrição reversa de gene que contém a sequência de promotor CMV seguidas de ~ 20 nucleotídeos de sequências de genes específicos.
      Nota: A concentração combinada de todos os genes específicos RT primeiras demão é de 4 μM.
    2. Re-suspender pelotas RNA da etapa 2.4.10 com 8,5 μL de TDW e transferir a solução para um tubo PCR.
    3. Adicione 0,5 μL da mistura mestre da 4 μM de primers de transcrição reversa e 4 μL de mistura de 2.5 mM dNTP.
    4. Calor a solução a 65 ° C por 5 min e imediatamente incubar no gelo pelo menos 1 min.
    5. Prepare a solução de reação misturando 4 μL de tampão de x SSIV 5, 1 μL de 100 mM DTT, 1 μL de inibidor de RNase e 1 μL de transcriptase reversa (200 U/μL). Adicione a solução de reação à mistura do RNA-primer.
    6. Incube a solução a 50 ° C por 10 min e 80 ° C por 10 min.
    7. Analise o cDNA usando o sistema PCR em tempo real.
      Nota: O programa para o PCR em tempo real é o mesmo que aquele descrito no método 1.

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Resultados

Um esquema para o processo de prender HeLa células em fase S ou M do ciclo celular é mostrado na Figura 1. Para uma amostra da fase-preso M, podemos Visualizar claramente redondo em forma de células sob o microscópio (Figura 2A). Para examinar a eficácia da detenção do ciclo celular, o conteúdo nuclear da célula pode ser analisado usando FACS (Figura 2B). A Figura 3 mostra dados representativos para teste de eficiência de...

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Discussão

O processo para preparar amostras de fase-preso S ou M é ilustrado na Figura 1. Para prender as células na fase S, usamos um método de bloqueio duplo de timidina onde tratamos as células com timidina duas vezes com um lançamento de 9h entre elas para assegurar a prisão de alta eficiência (figura 1A). Para a detenção de fase M, tratamos as células uma vez com timidina seguido por um lançamento de 9 h e então aplicado nocodazole ao bloco de células em prometafase ...

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Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Este trabalho foi financiado pelo programa de pesquisa de ciência básica através da nacional Research Foundation de Coreia (NRF) financiado pelo governo coreano, Ministério da ciência e TIC (NRF-2016R1C1B2009886).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
0,5 M EDTA, pH 8,0Thermo Fisher ScientificAM9260G
1 M Tris, pH 7,0Thermo Fisher ScientificAM9855G
1 M Tris, pH 8,0Thermo Fisher ScientificAM9855G
tubo de microcentrífuga de 1,7 mLAxygenMCT-175-C
10% Nonidet-p40 (NP-40)BiosolutionBN015
Tampão de carregamento de DNA 10XTaKaRa9157
15 mL tubo cônicoSPL50015
3' adaptador5'-rApp NN NNT GGA ATT CTC GGG TGC CAA GG/3ddC/-3'3
M Acetato de Sódio pH 5.5Thermo Fisher ScientificAM9740
5' adaptador5'-GUU CAG AGU UCU ACA GUC CGA CGA UCN NNN-3'
5 M NaClThermo Fisher ScientificAM9760G
Tubo cônico de 50 mLSPL50050
Ácido-fenol clorofórmio, pH 4.5Thermo Fisher ScientificAM9722
Agencourt AMPure XPBeckman CoulterA63881Grânulos magnéticos DNA/RNA limpam
fosfatase alcalina antárticaNew England BiolabsM0289S
Anti-DGCR8Fabricado em casa
Anti-PKR (D7F7)Tecnologia de sinalização celular12297S
Anti-PKR (Milli)Millipore EMD07-151
ATP (100 mM)GE HealthcareGE27-2056-01
Sal de sódio azul de bromofenolSigma-aldrichB5525
Fosfatasealcalina intestinal de bezerroTaKaRa2250A
Raspador de células 25 cm 2 posiçõesSarstedt83.183
promotora CMV5'-CGCAAATGGGCGGTAGGGTG-3'Dulbecco's
modificado meio de águia WelgeneLM001-05
mistura dNTP (2,5 mM)TaKaRa4030
Etanol, Absoluto, Grau ACSAlfa-AesarA9951
Soro fetal bovinoMerckM-TMS-013-BKR
FormamidaMerck104008
GlicinaBio-basicGB0235
Coprecipitante GlycoBlue (15 mg / mL)Thermo Fisher ScientificAM9516
IsopropanolMerck8.18766.1000
NEB Kit de depleção de rRNAKit de Depleção de rRNANew England BiolabsE6318
NocodazoleSigma-AldrichM1404
de sinalização de célulasIgG de coelho normal2729S
ParaformaldeídoSigma-Aldrich6148
PCR forward primer (RP1)5'-AAT GAT ACG GCG ACC ACC GCG ATC TAC ACG TTC AGA GTT CTA CAG TCC GA-3'
Índice de PCR primer reverso (RPI)5'-CAA GCA GAA GAC GGC ATA CGA GAT NNN NNN GTG ACT GGA GTT CCT TGG CAC CCG AGA ATT CCA-3'Tubos
PCR com tampa plana, 0,2 mLAxygenPCR-02-C
Comprimido de solução salina bufered fosfato (PBS)TaKaRaT9181
Phusion DNA polimerase de alta fidelidadeNew England BiolabsM0530Polimerase
de alta fidelidadeMicrocentrífuga PlateFuge com rotor basculanteBenchmarkc2000
Polinucleotídeo quinase (PNK)TaKaRa2021A
Proteinase K, recombinante, PCR GrauSigma-Aldrich3115879001
qPCR sequência de primer: CO1 PesadoFrente/Reverso: 5′-GCCATAACCCAATACCAAACG-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: CO1 LightForward/Reverse: 5′-TTGAGGTTGCGGTCTGTTAG-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: CO2 PesadoFrente/Reverso: 5′-CTAGTCCTGTATGCCCTTTTCC-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: CO2 LightForward/Reverse: 5′-GTAAAGGATGCGTAGGGATGG-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: CO3 PesadoFrente/Reverso: 5′-CCTTTTACCACTCCAGCCTAG-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: CO3 LightForward/Reverse: 5′-CTCCTGATGCGAGTAATACGG-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: CYTB Pesadopara frente / para trás: 5′-CAATTATACCCTAGCCAACCCC-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: CYTB LightForward/Reverse: 5′-GGATAGTAATAGGGCAAGGACG -3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: GAPDHDireto/Reverso: 5′-CAACGACCACTTTGTCAAGC-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: ND1 PesadoForward/Reverse: 5′-TCAAACTCAAACTACGCCCTG-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: ND1 LightForward/Reverse: 5′-GTTGTGATAAGGGTGGAGAGG-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGGGTG-3′
Sequência de primer qPCR: ND4 PesadoForward/Reverse: 5′-CTCACACTCATTCTCAACCCC-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: ND4 LightForward/Reverse: 5′-TGTTTGTCGTAGGCAGATGG-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: ND5 PesadoForward/Reverse: 5′-CTAGGCCTTCTTACGAGCC-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: ND5 LightForward/Reverse: 5′-TAGGGAGAGCTGGGTTGTTT-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: ND6 PesadoFrente/Reverso: 5′-TCATACTCTTTCACCCACAGC-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Sequência de primer qPCR: ND6 LightForward/Reverse: 5′-TGCTGTGGGTGAAAGAGTATG-3′/5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3′
Hexâmero aleatórioThermo Fisher ScientificSO142
Dnase Recombinante I (Rnase-free) (5 U/μ L)TaKaRa2270A
Inibidor de Rnase recombinante (40 U/μ L)TaKaRa2313A
Kit de Remoção de rRNA Ribo-Zero Kit de Remoção de rRNAIlluminaMRZH116
RotadorFINEPCR, ROTATOR AGD1.5-32
RT sequência de primers: CO1 Heavy5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGTGTTGAGGTTGCGGTCTGTTAG-3′
Sequência de primer RT: CO1 Light5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGGCCATAACCCAATACCAAACG-3′
Sequência de primer RT: CO2 Heavy5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGGTAAAGGATGCGTAGGGATGG-3′
Sequência de primer RT: CO2 Light5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGCTAGTCCTGTATGCCCTTTTCC-3′
Sequência de primer RT: CO3 Heavy5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGCTCCTGATGCGAGTAATACGG-3′
Sequência de primer RT: CO3 Light5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGCCTTTTACCACTCCAGCCTAG-3′
Sequência de primer RT: CYTB Heavy5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGGGATAGTAATAGGGCAAGGACG-3′
Sequência de primer RT: CYTB Light5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGCAATTATACCCTAGCCAACCCC-3′
Sequência de primer RT: GAPDH5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGTGAGCGATGTGGCTCGGCT-3′
Sequência de primer RT: ND1 Heavy5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGGTTGTGATAAAGGGTGGAGAGG-3′
Sequência de primer RT: ND1 Light5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGTCAAACTCAAACTACGCCCTG-3′
Sequência de primer RT: ND4 Heavy5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGTGTGTTTGTCGTAGGCAGATGG-3′
Sequência de primer RT: ND4 Light5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGCCTCACACTCATTCTCAACCC-3′
Sequência de primer RT: ND5 Heavy5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGTTTGGGTTGAGGTGATGATG-3′
Sequência de primer RT: ND5 Light5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGCATTGTCGCATCCACCTTTA-3′
Sequência de primer RT: ND6 Heavy5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGGGTTGAGGTCTTGGTGAGTG-3′
Sequência de primer RT: ND6 Light5′-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTGCCCATAATCATACAAAGCCCC-3′
Polipropileno siliconizado 1,5 mL G-tuboBio Plas4167SLS50
Dedecil sulfato de sódioBiosesangS1010
Desoxicolato de sódioSigma-AldrichD6750
SUPERase In Rnase inibidorThermo Fisher ScientificAM2694
SuperScript III transcriptase reversaThermo Fisher Scientific18080093Transcriptase reversa para preparação de biblioteca
SuperScript IV transcriptase reversaThermo Fisher Scientific18090010Transcriptase reversa para qRT-PCR
SYBR ouro ácido nucleico gl stainThermo Fisher ScientificS11494
T4 polinucleotídeo quinaseNew England BiolabsM0201S
T4 RNA ligase 1 (ssRNA Ligase)New England BiolabsM0204
T4 RNA ligase 2, truncado KQNew England BiolabsM0373
ThermomixerEppendorf ThermoMixer C com ThermoTop
TimidinaSigma-AldrichT9250
Tris-borato-EDTA tampão (TBE)TaKaraT9122
Triton X-100PromegaH5142
Ultralink Grânulos de sepharose de proteína AThermo Fisher Scientific22810Grânulos de proteína A
UltrasonicatorBioruptor
UreiaBio-basicUB0148
Misturador de vórticeDAIHAN ScientificVM-10
Xileno cianolSigma-AldrichX4126
γ-32P-ATP (10 μ Ci/μ L, 3,3 μ M)PerkinElmerBLU502A100UC
Sequência Tecnologia

Referências

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