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Artigo de método

Ensaio de coincubação para quantificar interações competitivas entre isolados de Vibrio fischeri

8.1K vistas

DOI:

10.3791/59759

22 de julho de 2019

Neste artigo

Resumo

As bactérias codificam mecanismos diversos para acoplar na competição interbacteriana. Aqui, apresentamos um protocolo baseado na cultura para caracterizar interações competitivas entre isolados bacterianos e como eles impactam a estrutura espacial de uma população mista.

Resumo

Este manuscrito descreve um ensaio de coincubação à base de cultura para detectar e caracterizar interações competitivas entre duas populações bacterianas. Este método emprega plasmíos estáveis que permitem que cada população seja diferencialmente marcada com capacidades de resistência a antibióticos distintas e proteínas fluorescentes para seleção e discriminação visual de cada população, respectivamente. Aqui, nós descrevemos a preparação e a coincubação de tensões competindo do fischeri do Vibrio , a imagem latente da microscopia de fluorescência, e a análise quantitativa dos dados. Essa abordagem é simples, produz resultados rápidos e pode ser usada para determinar se uma população mata ou inibe o crescimento de outra população, e se a competição é mediada por uma molécula diffusible ou requer contato direto com células celulares. Como cada população bacteriana expressa uma proteína fluorescente diferente, o ensaio permite a discriminação espacial de populações concorrentes dentro de uma colônia mista. Embora os métodos descritos sejam realizados com a bactéria simbiótica V. fischeri utilizando condições otimizadas para esta espécie, o protocolo pode ser adaptado para a maioria dos isolados bacterianos culturáveis.

Introdução

Este manuscrito descreve um método baseado em cultura para determinar se dois isolados bacterianos são capazes de interações competitivas. Ao estudar populações mistas, é importante avaliar em que medida os isolados bacterianos interagem, particularmente se os isolados estão competindo diretamente através de mecanismos de interferência. A competição de interferência refere-se a interações em que uma população inibe diretamente o crescimento ou mata uma população concorrente1. Essas interações são importantes para se identificar, pois podem ter efeitos profundos sobre a estrutura e a função de uma comunidade microbiana2,3....

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Protocolo

1. Prepare cepas para coincubação

  1. Escolha uma cepa de referência apropriada que servirá como alvo para a competição bacteriana durante o ensaio de coincubação. Consulte a discussão sobre as melhores práticas ao selecionar uma deformação de referência e como a deformação de referência impactará os resultados. Neste protocolo, V. fischeri Strain ES114 servirá como a cepa de referência.
  2. Determinar quais métodos de seleção e triagem serão usados para distinguir entre os isolados em coincubação
    1. Tipicamente, as cepas de transformação com plasmídos estáveis contendo diferentes genes de resistência a an....

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Resultados

A fim de avaliar as interações competitivas entre populações bacterianas, foi desenvolvido um protocolo de ensaio de coincubação e otimizado para V. fischeri. Este método utiliza plasmíos estáveis que codificam genes de resistência a antibióticos e proteínas fluorescentes, permitindo a seleção diferencial e a discriminação visual de cada cepa. Analisando os dados coletados a partir do ensaio de coincubação, pode-se identificar o desfecho competitivo de uma interação e o mecanismo.......

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Discussão

O ensaio de coincubação descrito acima fornece um método poderoso para descobrir a competição interbacteriana. Essa abordagem permitiu a identificação da competição intraespecífica entre os isolados de V. fischeri e a caracterização do mecanismo competitivo19. Embora o método descrito foi otimizado para a bactéria Marinha V. fischeri, pode ser facilmente modificada para acomodar outras espécies bacterianas, incluindo isolados clínicos e ambientais. É importante notar que os mecan.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Gostaríamos de agradecer aos revisores por seu feedback útil. A.N.S. foi apoiado pela Fundação Gordon e Betty Moore através de Grant GBMF 255, 3 para a Fundação de pesquisa de ciências biológicas.

....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Tubos de Microcentrífuga de 1,5 mLFisher05-408-129
10 μ L pipeta
100 μ L pipeta
300 μ L pipeta
10 μ L pipeta
20 μ L pipeta
200 μ L pipeta
1.000 μ L pipeta
Placas de 24 poçosFisher07-200-84estéril com tampa
Placas de 96 poçosVWR10062-900estéril com tampa
Calculadora
CloranfenicolSigmaC0378stock (20 mg/mL em etanol); concentração final em meio (2 μ g/mL LBS)
Microscópio de dissecação de fluorescência com câmera e software
FórcepsFisher08-880
Sulfato de canamicinaFisherBP906-5estoque (100 mg/mL em água, esterilizar por filtro); concentração final em meio (1 μ g/mL LBS)
Membrana de nitrocelulose (FS MCE, 25MM, NS)FisherSA1J788H50,22 μ m membrana de nitrocelulose (pk de 100)
Placas de PetriFisherFB0875713estéril com tampa
Espectrofotômetro
Cubetas semi-microVWR97000-586
TipOne 0.1-10 μ L sistema de partidaUSA Scientific1111-350010 racks
TipOne 200 μ L sistema de partidaUSA Scientific1111-50010 racks
TipOne 1000 μ L sistema de partidaUSA Scientific1111-252010 racks
Vortex
NomeEmpresaNúmero de CatálogoComentários
LBS media
1 M Tris Buffer (pH ~7.5)50 mL 1 M tampão de estoque (62 mL HCl, 938 mL DI água, 121 g Trizma Base)
Agar TechnicalFisherDF0812-17-915 g (Adicionar apenas para placas)
Água950 mL
Cloreto de SódioFisherS640-320 g
TriptonaFisherBP9726510 g
Extrato de LeveduraFisherBP9727-25 g
multicanalmulticanalmulticanalmonocanalmonocanalmonocanalmonocanalde imagem DI

Referências

  1. Hibbing, M. E., Fuqua, C., Parsek, M. R., Peterson, S. B. Bacterial competition: surviving and thriving in the microbial jungle. Nature Reviews Microbiology. 8 (1), 15-25 (2010).
  2. Nyholm, S. V., McFall-Ngai, M. The winnowing: establishing the squid-Vibrio symbi....

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