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Artigo de método

Culturas de fatias flutuantes de curto prazo do cérebro humano adulto

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DOI:

10.3791/59845

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5 de novembro de 2019

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Neste artigo

Resumo

Um protocolo para preparar culturas de fatias flutuantes do cérebro humano adulto é apresentado. O protocolo é uma variação do método de cultura de fatia amplamente utilizado usando inserções de membrana. É simples, rentável, e recomendado para a execução de ensaios de curto prazo destinadas a desvendar mecanismos de neurodegeneração por trás de doenças cerebrais associadas à idade.

Resumo

Organotypic, ou culturas da fatia, foram empregados extensamente para modelar aspectos do sistema nervoso central que funciona in vitro. Apesar do potencial das culturas de fatias na neurociência, estudos usando tecido nervoso adulto para preparar tais culturas ainda são escassos, particularmente os de seres humanos. O uso do tecido humano adulto para preparar culturas da fatia é particular atrativo realçar a compreensão de neuropatologias humanas, porque prendem as propriedades originais típicas do cérebro humano maduro que falta nas fatias produzidas do roedor (geralmente neonatal) tecido nervoso. Este protocolo descreve como usar o tecido cerebral coletado de doadores humanos vivos submetidos a cirurgia cerebral ressectiva para preparar culturas de fatias de curto prazo e flutuantes. Procedimentos para manter e realizar ensaios bioquímicos e de biologia celular usando essas culturas também são apresentados. Os resultados representativos demonstram que a laminação cortical humana típica está preservada nas fatias após 4 dias in vitro (DIV4), com presença prevista dos tipos principais da pilha neural. Além disso, as fatias no DIV4 passam por uma morte celular robusta quando desafiadas com um estímulo tóxico (H2O2),indicando o potencial deste modelo para servir como uma plataforma em ensaios de morte celular. Este método, uma alternativa mais simples e econômica ao protocolo amplamente utilizado usando inserções de membrana, é recomendado principalmente para a execução de ensaios de curto prazo destinados a desvendar mecanismos de neurodegeneração por trás de doenças cerebrais associadas à idade. Finalmente, embora o protocolo seja dedicado ao uso de tecido cortical coletado de pacientes submetidos ao tratamento cirúrgico da epilepsia do lobo temporal farmacoresistente, argumenta-se que o tecido coletado de outras regiões/condições cerebrais também deve ser consideradas como fontes para produzir culturas similares da fatia livre-flutuando.

Introdução

O uso de amostras humanas na pesquisa é inequivocamente uma ótima opção para estudar patologias cerebrais humanas, e técnicas modernas abriram novas maneiras de experimentação robusta e ética usando tecido derivado do paciente. Métodos como culturas organotípicas/fatias preparadas a partir do cérebro humano adulto têm sido cada vez mais utilizados em paradigmas como optogenética1,eletrofisiologia2,3,4,5, plasticidade 6,7,8,

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Protocolo

Tecidos cerebrais adultos vivos foram obtidos de pacientes submetidos a neurocirurgia resectiva para o tratamento da epilepsia do lobo temporal farmacoresistente (Figura 1A). Todos os procedimentos foram aprovados pelo Comitê de Ética do Hospital de Clínicas da Faculdade de Medicina Ribeirão Preto (17578/2015), e os pacientes (ou sua pessoa responsável legal) concordaram e assinaram os termos de consentimento informado. A coleta do tecido foi feita pela equipe de neurocirurgia do Centro de Cirurgia de Epilepsia (CIREP - Hospital de Clínicas da Faculdade de Medicina Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, Brasil).

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Resultados

Um aspecto crítico para avaliar a qualidade e a saúde das fatias cultivadas é a presença e morfologia típica dos tipos esperados de células neurais, neurônios e células gliais. A arquitetura típica da laminação cortical humana foi observada em uma fatia em DIV4, revelada pela imunorotulagem neuronal (Figura 2D). Além disso, também foi observada a presença esperada de microglia e astroglia (Figura 2B,C). Esses resultados demonstr.......

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Discussão

Este protocolo para a produção de culturas de fatias de curto prazo flutuantes e de curto prazo é um método alternativo para cultivar fatias neocorticas humanas adultas. Tal protocolo para culturas de fatia pode ser passível de estudos sobre (mas não restrito a) optogenética1,44,45, eletrofisiologia2,3,4,5 <.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Este trabalho é apoiado pela FAPESP (Grant 25681-3/2017 para AS), CAPES (Bolsa de Pós-Doutorado PNPD/INCT-HSM para A.F. e bolsa de pré-doutorado para N.D.M.) e FAEPA. A G.M.A. possui uma bolsa de mestrado da FAPESP (MS 2018/06614-4). N.G.C. é dona de uma Bolsa de Pesquisa cnpq. Agradecemos aos pacientes e suas famílias por doarem os tecidos ressecados para este estudo. Gostaríamos de reconhecer o apoio de moradores, enfermeiros, técnicos e da equipe do CIREP, do Hospital Clínico da Faculdade de Medicina Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, que ajudou em diversas etapas do processo.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
2-PropanolMerck1096341000
Acrilamida/Bis-Acrilamida, solução a 30%Sigma AldrichA3449 
AgaroseSigma AldrichA9539
Persulfato de amônioSigmaA3678-25G
Anfotericina B Gibco15290-018
Anticorpo anti-ERK 2 (coelho)Santa Cruz Biotecnologysc-154Diluição 1:1,000 em BSA 2.5%
Anticorpo anti-pERK (camundongo)Santa Cruz Biotecnologysc-7383Diluição 1:1.000 em BSA 2,5%
B27Gibco17504-044
BDNFSigma AldrichSRP3014
Albumina de soro bovinoSigma AldrichA7906
Bradford 1x Corante ReagenteBioRad500-0205
EDTASigmaT3924Usado em tampão RIPA
GlicoseMerck108337
GlutamaxGibco35050-061
Sais Balanceados Hank'sSigma AldrichH1387-10X1L
HepesSigma AldrichH4034
Ácido clorídricoMerck1003171000
Peróxido de hidrogênio (H2O2)Vetec194
Mouse IgG, HRP-ligado ab inteiro (anti-mouse)GENA931-1ML
NaClMerck1064041000Usado em tampão RIPA
Neurobasal AGibco10888-022
Leite seco desnatado (Molico)NestléUsado para bloqueio de membrana
PBS Tampão pH 7,2Laborclin590338
Penicilina/EstreptomicinaSigma AldrichP4333
Cloreto de potássioMerck1049361000
Prime Western Blotting Detection ReagentGERPN2232
Rabbit IgG, HRP-linked whole Ab (anti-rabbit)GENA934-1ML
SDSSigmaL5750Usado no buffer RIPA
TEMEDGE17-1312-01
Brometo de Tetrazólio Azul de Tiazolil (MTT)Sigma AldrichM5655
TrisSigmaT-1378Usado no buffer RIPA
Triton x-100SigmaX100Usado no buffer RIPA
Água UltrapuraMilliporeÁgua estéril, derivada do sistema de purificação de água MiliQ
Equipamento e Materialplacas de
24 poçosCorningCL S3526Fundo Plano com Tampa
Amersham Potran Premium (membrana de nitrocelulose) GE29047575
Mistura de CarbógenosWhite Martins95% O2, 5% CO2
Incubadora de CO2New Brunswick ScientificCO-24Incubação de fatias 5% CO2, 36º C
Leitor de MicroplacasDispositivos Moleculares
MicrotubosGreiner0016081,5mL microtubo
Pilão motorizadoKimble Chase
Colherde plástico Tamanho de uma colher de sobremesa
Lâmina de barbearBicChrome Platinum, usada em fatiar com vibratome
Lâminade bisturiBecton Dickinson (BD)Número 24Usado para fatiar tecido; recomendado mesmo tamanho ou menor
Supercola (Loctite Super Bonder)HenkelComposição: Etilcianoacrilato; ácido 2-propenóico; 6,6'-di-terc-butil-2,2'-metilenodi-p-cresol; homopolímero
Vibratome Leica14047235612 - VT1000S
Nome do Material/ Equipamento para Imuno-histoquímica
Anticorpo anti-NeuN (camundongo)Millipore MAB377Diluição 1:1.000 em tampão fosfato
anticorpo anti-GFAP (camundongo)MerckMAB360Diluição 1:1.000 em tampão fosfato
anticorpo anti-Iba1 (coelho)AbcamEPR16588 - ab178846Diluição 1:2.000 em tampão fosfato
Biotinilado anti-camundongo IgG Anticorpo (H+L)VetorBA-9200
DABSigma AldrichD-9015
EntellanMerck107960
EtanolMerck1.00983.1000
GelatinaSynth 00G1002.02.AEUsado para revestir lâminas
MicrótomoLeicaSM2010REquipado com Estágio de Congelamento (BFS-10MP, Physiotemp), definido para -40º C
Soro de burro normalJackson Immuno Research017-000-121
ParaformaldeídoSigma Aldrich158127
coelho IgG, HRP-ligado Ab inteiro (anti-coelho)GENA934-1ML
Slides (Star Frost)Knittel GlaserCorrediças revestidas de gelatina
SacaroseVetec60REAVET017050
Kit Vectastain ABC HRP (Peroxidase, Padrão)VetorPK-4000, Kit Padrão
XyleneSynth01X1001.01.BJ

Referências

  1. Andersson, M., et al. Optogenetic control of human neurons in organotypic brain cultures. Scientific Reports. 6, April issue 1-5 (2016).
  2. Granholm, A. C., et al. Morphological and electrophy....

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Reimpressões e permissões

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