Estabelecimento de modelos de xenoenxertos derivados de câncer gástrico e linhas celulares primárias

Resumo

O protocolo atual descreve métodos para estabelecer modelos paciente-derivados do xenograft (PDX) e linhas de célula cancerosas preliminares das amostras cirúrgicas do cancro gastric. Os métodos fornecem uma ferramenta útil para o desenvolvimento de drogas e pesquisa de biologia do câncer.

Resumo

O uso de modelos pré-clínicos para avançar nosso entendimento da biologia tumoral e investigar a eficácia dos agentes terapêuticos é fundamental para a pesquisa do câncer. Embora existam muitas linhas celulares de câncer gástrico estabelecidas e muitos modelos de camundongo transgênicos convencionais para pesquisas pré-clínicas, as desvantagens desses modelos in vitro e in vivo limitam suas aplicações. Porque as características destes modelos mudaram na cultura, não mais modelo a heterogeneidade do tumor, e suas respostas não puderam prever respostas nos seres humanos. Assim, modelos alternativos que melhor representem a heterogeneidade tumoral estão sendo desenvolvidos. Os modelos paciente-derivados do xenograft (PDX) preservam a aparência histologic de pilhas de cancro, mantêm a heterogeneidade intratumoral, e refletem melhor os componentes humanos relevantes do microambiente do tumor. Entretanto, toma geralmente 4-8 meses para desenvolver um modelo de PDX, que seja mais longo do que a sobrevivência esperada de muitos pacientes gastric. Por esta razão, estabelecer linhas de células cancerosas primárias pode ser um método complementar eficaz para estudos de resposta a medicamentos. O protocolo atual descreve métodos para estabelecer modelos de PDX e linhas de célula cancerosas preliminares das amostras cirúrgicas do cancro gastric. Esses métodos fornecem uma ferramenta útil para o desenvolvimento de drogas e pesquisa de biologia do câncer.

Introdução

O câncer gástrico é o quinto câncer mais comum em todo o mundo e a terceira causa principal de morte por câncer. Em 2018, mais de 1 milhão casos novos de câncer gástrico foram diagnosticados globalmente, e cerca de 783.000 pessoas foram mortas por esta doença¹. A incidência e a mortalidade do câncer gástrico permanecem muito elevadas nos países asiáticos do nordeste^2,3. Apesar de avanços significativos no campo da terapêutica oncológica, o prognóstico de pacientes com câncer gástrico avançado permanece pobre, com uma taxa de sobrevida de cinco anos de aproximadamente 25%^{4,5,6, 7,}. Assim, há uma necessidade urgente de desenvolvimento de novas estratégias terapêuticas para o câncer gástrico

O tratamento do câncer gástrico é desafiador por causa de sua alta heterogeneidade^8,9. Assim, a questão de como abordar os desafios da heterogeneidade tumoral para realizar a medicina de precisão é fundamental para a pesquisa do câncer. Os modelos in vitro e in vivo desempenham papéis cruciais na elucidação dos mecanismos heterogêneos e da biologia do câncer gástrico. Entretanto, embora existam inúmeras linhagens celulares de câncer gástrico e muitos modelos convencionais de camundongo transgênico para pesquisas pré-clínicas, as desvantagens desses modelos limitam suas aplicações¹⁰. Porque as características destes modelos mudaram na cultura, não mais modelo a heterogeneidade do tumor, e suas respostas não puderam prever respostas nos seres humanos¹¹. Essas questões limitam severamente a possibilidade de identificar subgrupos de pacientes oncológicos que responderão a medicamentos direcionados. A cultura de curto prazo de tumores primários fornece uma maneira relativamente rápida e personalizada para investigar propriedades farmacológicas anticâncer, que provavelmente será a marca registrada do tratamento de câncer personalizado.

Os xenoenxertos derivados do paciente (PDXs) são preferidos como um modelo pré-clínico alternativo para o perfil de resposta à droga¹². Além disso, os modelos PDX oferecem uma ferramenta poderosa para o estudo da iniciação e progressão do câncer^13,14. Os modelos de PDX preservam a aparência histologic de pilhas de cancro, mantêm a heterogeneidade intratumoral, e refletem melhor os componentes humanos relevantes do microambiente do tumor^15,16. No entanto, a limitação dos modelos PDX amplamente utilizados é a baixa taxa de sucesso para estabelecer e propagar serialmente tumores sólidos humanos. Neste estudo, são descritos métodos decentemente bem-sucedidos para o estabelecimento de modelos PDX e linhas celulares primárias.

Protocolo

Este estudo humano foi aprovado pelo Conselho de ética institucional da Sun Yat-Sen University Cancer Center (SYSUCC, Guangzhou, China). O estudo animal foi aprovado pelo Comitê institucional de cuidados e uso de animais da Universidade Sun Yat-Sen. Nota: todos os experimentos foram realizados em conformidade com as leis pertinentes e diretrizes institucionais, incluindo a diretriz para proteção de exposição ocupacional contra patógenos transmitidos pelo sangue.

1. preparação da amostra

1. Obter tecidos de câncer gástrico (P0 = passagem 0) diretamente da operação. O espécime do tumor deve ser maior do que 0,5 cm³.
2. Prepare 3-4 mL de solução de ações: por exemplo, RPMI-1640 médio (1x) suplementado com 10% de soro bovino fetal (FBS), 100 U/mL de penicilina e 0,1 mg/mL de estreptomicina.
3. Põr o espécime fresco do tumor na estoque-solução em 4 ° c por não mais de 4 horas.

2. estabelecimento do modelo PDX (Figura 1)

1. Para assegurar uma área cirúrgica estéril, desinfete todos os materiais com luz ultravioleta por mais de 30 minutos antes da transferência no laboratório animal.
   Nota: a sala de operação precisa ser desinfetada com luz ultravioleta para 30 min, antes de limpar a mesa com dicloro trimesamida ácido de sódio supositoria desinfetante. Em seguida, povidona-iodo é usado para desinfectar a pele.
2. Usando fórceps e tesouras, dissecar com cuidado os tecidos do tumor e apará-los em diversas partes pequenas (aproximadamente 1 milímetro³ cubos) circunstâncias estéreis.
3. Anestesiar fêmeas 5-a 7-week-old NOD-SCID-IL2rg (NSG) camundongos por exposição a 1-1.5% isoflurano com uma máquina de anestesia.
   1. Anestesie o mouse até que ele pára de lutar, mas mantém mesmo a respiração.
      Nota: o tubo de 50 mL é um equipamento simples que funcione similar a uma máquina da anestesia. O uso da pomada veterinária do olho para impedir o secura é desnecessário devido ao tempo curto da operação.
4. Faça uma incisão de 1 cm em ambos os flancos dorsais usando tesouras estéreis e implante uma peça tumoral em cada flanco do mouse.
   1. Para assegurar-se de que a parte do tumor não deslize para fora, use o fórceps estéril para interromper o tecido subcutaneous. Em seguida, clip um pedaço do tecido tumoral, e colocá-lo no local profundo.
5. Feche a área de implante por sutura subcutânea com agulhas de sutura cirúrgica e marque as orelhas do mouse com tags de orelha rotuladas
6. Esterilizar a ferida com iodo.
7. Coloc delicadamente os ratos em uma gaiola vazia após a cirurgia ao manter o recumbency esternal. Preste muita atenção à condição dos camundongos; Eles acordam e começam a andar aproximadamente 3-4 min mais tarde. Coloc os ratos que se submeteram à cirurgia em uma outra gaiola nova separada daquelas não sujeitaram à cirurgia.
8. Avaliar o tamanho do tumor por palpação do local de implantação. Meça os tumores com um paquímetro Vernier duas vezes por semana.
9. Uma vez que o tumor atinge 10 mm de diâmetro, a condição animal piora, ou o tumor ulcerates, eutanizar o mouse com um método aprovado pelo IRB. Reimplante colheu fragmentos frescos do tumor em 2 ratos novos para o passaging, ou armazene temporariamente os espécimes em PBS no gelo para a isolação de linhas de pilha preliminares.

3. criopreservação tecidual

Nota: esta parte referencia principalmente os métodos para o kit de Cryo do Live tissue Kit. Os principais kits e equipamentos estão listados na tabela de materiais.

1. Eutanizar os camundongos com um método aprovado pelo IRB quando o tumor for maior que 10 mm de diâmetro.
2. Usando fórceps e tesouras estéreis, isole lentamente o tumor dos ratos.
3. Lave os tecidos tumorais com DPBS em um prato de 10 cm. Dissecar e remover áreas necróticas, tecido adiposo, coágulos sanguíneos e tecido conjuntivo com fórceps e tesouras.
4. Corte os tecidos tumorais a um máximo de 1 mm de espessura com um molde.
5. Lave as fatias com DPBS em um prato de 10 cm.
   Nota: o processo de vitrificação envolve o uso de tubos rotulados V1/V2/V3 nas etapas 3.6-3.8. Os principais ingredientes são DMSO e sacarose.
6. Transfira as fatias para o tubo v1 com fórceps e incubar o tubo a 4 ° c durante 4 min. Enrole e inverta brevemente o tubo, e coloque-o a 4 ° c por mais 4 min.
7. Despeje a solução v1 e fatias em um prato de 10 cm. Transfira as fatias para o tubo V2 com fórceps e incube o tubo v2 a 4 ° c durante 4 min. Role e inverta o tubo brevemente e coloque-o a 4 ° c por mais 4 min.
8. Despeje a solução V2 e fatias em um prato de 10 cm. Transfira as fatias para o tubo v3 com fórceps e incubar o tubo a 4 ° c durante 5 min. Enrole e inverta brevemente o tubo e coloque-o a 4 ° c durante, pelo menos, 5 min. Certifique-se de que todas as fatias se afundam na parte inferior do tubo.
   1. Se várias fatias permanecem flutuando, enrole e inverta o tubo brevemente, e coloque o tubo a 4 ° c novamente até que todas as fatias afundar completamente; se necessário, descarte as fatias flutuantes.
9. Despeje a solução v3 e fatias em um prato de 10 cm.
10. Corte os suportes do tecido ao comprimento apropriado, e coloc os na gaze estéril. Transfira as fatias para os suportes. Enrole os suportes com a gaze, e coloque-os em nitrogênio líquido usando fórceps, seguido de incubação por 5 min.
11. Rotule os frascos criogênicos com a informação do tecido.
12. Transfira os suportes com fatias de tecido em frascos criogênicos, que são armazenados em nitrogênio líquido.

4. isolamento das células primárias (Figura 2)

1. Esterilizar fórceps e tesouras com vapor de alta pressão a 121 ° c durante 30 min.
2. Resect amostras do cancro gastric dos espécimes resected ou dos tecidos colhidos de PDX. Coloque os tecidos no gelo e, em seguida, transfira os tecidos para um prato de cultura estéril de 10 cm.
3. Dissecar e remover áreas necróticas, tecido adiposo, coágulos sanguíneos e tecido conjuntivo com fórceps e tesouras.
4. Lave os tecidos tumorais uma vez com DPBS contendo 100 U/mL de penicilina e 0,1 mg/mL de estreptomicina em um prato de 10 cm.
5. Corte o tecido tumoral em 1 mm³ peças na tampa do prato; a espessura máxima de cada peça deve ser de 1 mm.
6. Transfira os tecidos para um tubo de centrifugação de 50 ml com aproximadamente 7 ml de solução de colagenase tipo 1 e tripsina (1:14). Vortex a mistura brevemente.
7. Incubar o tubo num banho de água a 37 ° c durante 30-40 min. Vortex a mistura a cada 5 min.
8. Adicionar um volume igual de RPMI-1640 médio (1x) suplementado com 10% FBS para o tubo. Vórtice a mistura completamente.
9. Transfira a mistura para um novo tubo de centrífuga de 50 mL por filtração lenta através de um filtro de 40 μm.
   Nota: Use 40 μm filtros para garantir uma maior proporção de células cancerosas. Se necessário, os filtros de 100 μm podem ser usados para preservar mais tipos de pilhas, tais como pilhas imunológicas.
10. Centrifugue os filtrados a 113-163 x g por 5-7 min em RT. Retire cuidadosamente o sobrenadante.
11. Lave o pellet com 5 mL de PBS, e Retire cuidadosamente o sobrenadante.
12. Se o pellet é vermelho, ele contém muitos eritrócitos. Ressuspender suavemente a pelota com 500 μL de tampão de lise de glóbulos vermelhos. Após uma incubação de 5 min, adicione 5 mL de PBS e Retire cuidadosamente o sobrenadante.
13. Ressuscitem a pelota com meio de cultura e transferem a mistura para um prato estéril de 10 cm.
14. Substitua o meio com meio contendo soro a cada 2-3 dias.
15. Passagem das células primárias usando Trypsin/EDTA quando chegar a 50% confluência.

Resultados

Aqui, os tecidos tumorais de uma operação foram preservados em solução de estoque até o próximo passo. Dentro de 4 horas, os tecidos tumorais foram cortados em pedaços pequenos e implantados nos flancos dorsais de camundongos NSG que haviam sido anestesiados com algodão embebido em isoflurano. Tumores maiores que 1 cm³ poderiam ser ressecados para implantação em camundongos novos (Figura 1) ou cortados com cuidado e preservados em nitrogênio líquido seguindo o protocolo. Neste est...

Discussão

O câncer gástrico é uma doença agressiva com opções terapêuticas limitadas; assim, os modelos de câncer gástrico tornaram-se um recurso crítico para viabilizar estudos funcionais de pesquisa com tradução direta para a clínica^4,8,17. Aqui, nós descrevemos os métodos e o protocolo de estabelecer modelos do cancro gastric PDX e linhas de pilha preliminares. É importante ressaltar que as características morfológicas e biológicas dos...

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo

Nome	Empresa	Número de catálogo	Comentários
40 μ m Cell Strainer	Biologix, Shandong, China	15-1040
Microscópio Biológico	OLYMPUS, Tóquio, Japão	OLYMPUS CKX41
Centrifuge	Eppendorf, Mittelsachsen, Alemanha.	5427R
CO2 Incubadora	Thermo Fisher Scientific, Carlsbad, Califórnia, EUA	HERACELL 150i
DPBS	Basalmedia Technology, Xangai, China	L40601
Armário de água eletrotermostático	Yiheng, Xangai, China	DK-8AXX
Soro bovino fetal	Wisent Biotechnology, Vancouver, Canadá	86150040
Isoflurano	Baxter, China	CN2L9100
Kit de tecido vivo Kit Cryo Celliver	Biotechnology, Xangai, China	LT2601
Kit de descongelamento de tecido vivo	Celliver Biotechnology, Xangai, China	LT2602
NSG	Biocytogen, Pequim, China	B-CM-002-4-5W
Penicilin& estreptomicina	Thermo Fisher Scientific, Carlsbad, Califórnia, EUA	15140122
Tampão de lise de glóbulos vermelhos	Solarbio, Pequim, China	R1010
RPMI-1640 médio	Thermo Fisher Scientific, Carlsbad, Califórnia, EUA	8118367
Agulhas de sutura cirúrgica com fio	LingQiao, Ningbo, China	3/8 arco 4&vezes; 10
moldes e lâminas auxiliares processadas por tecidos	Celliver Biotechnology, Xangai, China	LT2603
Tripsina-EDTA	Thermo Fisher Scientific, Carlsbad, Califórnia, EUA	2003779
colagenase tipo 1	Thermo Fisher Scientific, Carlsbad, Califórnia, EUA	17100017