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Interações proteína-proteína dinâmicas controlam o comportamento celular, da motilidade à replicação do DNA para a transdução do sinal. No entanto, o monitoramento de interações dinâmicas entre múltiplas proteínas em uma rede de interação protéica é tecnicamente difícil. Aqui, apresentamos um protocolo para imunoprecipitação multiplex quantitativa (QMI), que permite a avaliação quantitativa de alterações de dobra em interações protéicas com base em medições de fluorescência relativa de proteínas em complexos compartilhados detectados por expostos Epítopos de superfície (PiSCES). Em QMI, os complexos proteicos de lysates da pilha são Immunoprecipitated em microspheres, e então sondado com um anticorpo etiquetado para uma proteína diferente a fim quantificar a abundância de PiSCES. Os anticorpos da imunoprecipitação são conjugados às regiões espectrais diferentes de magbead, que permite que um citômetro do fluxo diferencie ligações paralelos múltiplos e quantifique simultaneamente a quantidade de anticorpo da ponta de prova associado com cada um. O QMI não necessita de marcação genética e pode ser realizado utilizando um biomaterial mínimo em comparação com outros métodos de imunoprecipitação. O QMI pode ser adaptado para qualquer grupo definido de proteínas interagindo, e até agora tem sido usado para caracterizar redes de sinalização em células T e sinapses neuronais de glutamato. Os resultados conduziram à geração nova da hipótese com aplicações diagnósticas e terapêuticas potenciais. Este protocolo inclui instruções para executar o QMI, desde a seleção inicial do painel de anticorpos até a execução de ensaios e análise de dados. A montagem inicial de um ensaio QMI envolve a triagem de anticorpos para gerar um painel, e empiricamente determinando um tampão de Lise apropriado. A preparação subsequente do reagente inclui anticorpos covalentemente do immunoprecipitação do acoplamento aos magbeads, e anticorpos biotinylating da ponta de prova assim que podem ser etiquetados por um fluorophore streptavidin-conjugado. Para executar o ensaio, o lisado é misturado com magbeads durante a noite, e então os grânulos são divididos e incubados com anticorpos diferentes da ponta de prova, e então uma etiqueta do fluoróforo, e lidos pelo fluxo cytometry. Dois testes estatísticos são realizados para identificar peixes que diferem significativamente entre as condições experimentais, e os resultados são visualizados usando Heatmaps ou diagramas de borda de nó.