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Artigo de método

Mapeamento de circuito assistido pela canaldopsina de longo alcance de neurônios de coláculo inferior com canaldopsinas de mudança azul e vermelha

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DOI:

10.3791/60760

7 de fevereiro de 2020

Neste artigo

Resumo

O mapeamento de circuitoassistido pela canaldopsina (CRACM) é uma técnica de precisão para o mapeamento funcional de projeções neuronais de longo alcance entre grupos anatomicamente e/ou geneticamente identificados de neurônios. Aqui, descrevemos como utilizar o CRACM para mapear conexões cérebros auditivas, incluindo o uso de uma opsina de mudança vermelha, ChrimsonR.

Resumo

Ao investigar circuitos neurais, uma limitação padrão da abordagem do grampo de patch in vitro é que axônons de múltiplas fontes são frequentemente intermisturadas, dificultando a isoposição de entradas de fontes individuais com estimulação elétrica. No entanto, usando o mapeamento de circuito assistido pela canaldopsina (CRACM), essa limitação agora pode ser superada. Aqui, relatamos um método para usar o CRACM para mapear entradas ascendentes de núcleos cerebrais auditivos inferiores e entradas commissivas para uma classe identificada de neurônios no colliculus inferior (IC), o núcleo do cérebro médio do sistema auditivo. No IC, axônons locais, comissários, ascendentes e descendentes estão fortemente entrelaçados e, portanto, indistinguíveis com estimulação elétrica. Injetando uma construção viral para conduzir a expressão de uma canaldopsina em um núcleo presinaptico, seguido de gravação de grampo de patch para caracterizar a presença e a fisiologia de entradas sinápticas expressando canaldopsina, projeções de uma fonte específica para uma população específica de neurônios IC pode ser mapeado com precisão específica do tipo celular. Mostramos que essa abordagem funciona com chronos, uma canaldopsina azul ativada pela luz, e ChrimsonR, uma canaldopsina de mudança vermelha. Em contraste com relatórios anteriores do cérebro anterior, descobrimos que ChrimsonR é robustamente traficado para baixo os axôngos de neurônios principais do núcleo coclear dorsal, indicando que chrimsonR pode ser uma ferramenta útil para experimentos CRACM no tronco cerebral. O protocolo aqui apresentado inclui descrições detalhadas da cirurgia intracraniana de injeção de vírus, incluindo coordenadas estereotaxicas para injeções direcionadas ao núcleo coclear dorsal e IC de camundongos, e como combinar gravação completa do grampo de patch celular com a ativação da canaldopsina para investigar projeções de longo alcance para neurônios IC. Embora este protocolo seja adaptado para caracterizar insumos auditivos para o IC, ele pode ser facilmente adaptado para investigar outras projeções de longo alcance no cérebro auditivo e além.

Introdução

As conexões sinápticas são críticas à função do circuito neural, mas a topologia precisa e a fisiologia das sinapses dentro de circuitos neurais são muitas vezes difíceis de sondar experimentalmente. Isso porque a estimulação elétrica, a ferramenta tradicional de eletrofisiologia celular, ativa indiscriminadamente axônhons perto do local de estimulação, e na maioria das regiões cerebrais, axônons de diferentes fontes (local, ascendente e/ou descendente) entrelaçam-se. No entanto, usando o mapeamento de circuito assistido pela canaldopsina (CRACM)1,2, essa limitação agora pode ser superada3

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Protocolo

Obtenha aprovação do Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC) local e adere às diretrizes do NIH para o cuidado e uso de animais de laboratório. Todos os procedimentos neste protocolo foram aprovados pela Universidade de Michigan IACUC e estavam de acordo com as diretrizes do NIH para o cuidado e uso de animais de laboratório.

1. Preparações de cirurgia

  1. Realizar cirurgias em condições assépticas. Autoclave/esterilizar todas as ferramentas e materiais de cirurgia antes da cirurgia. Use vestido de cirurgia e máscara para a cirurgia.
  2. Higienize a área de cirurgia (pulverizar e limpar com 70% de etanol) e col....

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Resultados

Cruzamos os ratos VIP-IRES-Cre (Viptm1(cre)Zjh/J) e Ai14 Cre-reporter mice (B6. Cg-Gt(ROSA)26Sortm14 (CAG-tdTomato)Hze/J) para gerar filhotes de F1 em que os neurônios VIP expressam a proteína fluorescente tdTomato. Foram utilizadas proles de F1 de ambos os sexos, idade pós-natal (P) 21 a P70. Foram utilizados 22 animais neste estudo.

Injeção estereotaxista de AAV1. Syn.Chronos-GFP.WPRE.bG.......

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Discussão

Descobrimos que o CRACM é uma técnica poderosa para identificar e caracterizar entradas sinápticas de longo alcance aos neurônios no IC do camundongo. Seguindo o protocolo detalhado aqui, alcançamos uma transição robusta de neurônios no DCN e no IC, bem como o tráfico axonal confiável de Chronos e ChrimsonR para terminais sinápticos no IC. Além disso, demonstramos que essa técnica permite a medição e análise de eventos postinapticos, incluindo amplitude PSP, meia largura, tempo de decomposição e farmacologia receptora. N.......

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Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado por uma Deutsche Forschungsgemeinschaft Research Fellowship (GO 3060/1-1, projeto número 401540516, para DG) e Bolsa Nacional de Saúde R56 DC016880 (MTR).

....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
AAV1. Syn.ChrimsonR-tdTomato.WPRE.bGHAddgene59171-AAV1
AAV1. Syn.Chronos-GFP.WPRE.bGHAddgene59170-AAV1
Ai14 camundongos repórteres (B6. Cg-Gt(ROSA)26Sortm14(CAG-tdTomato)Hze/J)Jackson Laboratorystock #007914
Âmbar (590nm) LUXEON Rebel LEDLuxeon Star LEDsSP-01-A8
Azul (470nm) LUXEON Rebel LEDLuxeon Star LEDsSP-01-B4
Carproject (carprofeno)Henry Schein Animal Health59149
Drummond capilares de vidrosDrummond Scientific Company3-000-203-G/X
Drummond Nanoject 3Drummond Scientific Company3-300-207
Eletrodo chanfradorSutter InstrumentFG-BV10-D
Ethilon 6-0 (0,8 métrico) suturas de nylonFarmáciaEthicon
Microscópio de estágio fixoqualquern/a
Suporte da cabeça de anestesia a gásDavid Kopf Instrumentos933-B
Ferramentas de cirurgia geralFerramentas de ciências finasN / A
Golden A5 pet clipperOster078005-010-003
Almofada de aquecimentoConstrução personalizadaN / A
Câmara de indução com capuz com sistema de vácuoPatterson Scientific78917760
Esterilizador de esferas quentes Steri 250InotechIS-250
Solução de iodo 10%MedChoicefarmácia
Vaporizador de isofluranoPatterson Scientific07-8703592
Geléia tópica de lidocaína 2%Akornfarmácia
Micro broca motorizada 1050Henry Schein Animal Health7094351
Micro motor brocas 0,5 mmFine Science Tools19007-05
Micromanipulador motorizadoSutter InstrumentMP-285 / R
Pomada oftálmica Lágrimas artificiaisAkornfarmácia
P-1000 extrator de eletrodoSutter InstrumentP-1000
Patch clamp amplificador incl software de aquisição de dadosqualquern / a
Máquina de anestesia portátilPatterson Scientific07-8914724
Quadro estereotáxico para pequenos animaisDavid Kopf Instruments930-B
Produtos químicos padrãolocaisN/A
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Cortinas de toalha estéreisDynarex4410
Marcador cirúrgicoFerramentas de ciência fina18000-30
Controlador de temperaturaConstrução personalizadaN/A
Vibratomequalquern/a
Ratos VIP-IRES-Cre (Viptm1(cre)Zjh/J)JacksonLaboratory stock #010908
Banho-mariaqualquern/a
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Referências

  1. Petreanu, L., Huber, D., Sobczyk, A., Svoboda, K. Channelrhodopsin-2-assisted circuit mapping of long-range callosal projections. Nature Neuroscience. 10, 663-668 (2007).
  2. Atasoy, D., Aponte, Y., Su, H. H., Sternson, S. M.

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

Coordenadas EstereotáxicasPatch Clamp de Célula InteiraChronos ChrimsonRNúcleo Coclear DorsalProjeções de Longo AlcanceTronco Encefálico AuditivoCirurgia de Injeção ViralAtivação Óptica