Artigo de método

Síntese de Nanopartículas Magnéticas Funcionalizadas, Sua Conjugação com a Feroxamina Siderophore e sua Avaliação para Detecção de Bactérias

DOI:

10.3791/60842

16 de junho de 2020

Neste artigo

Resumo

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Este trabalho descreve protocolos para a preparação de nanopartículas magnéticas, seu revestimento com SiO2,seguido por sua funcionalização de amina com (3-aminopropil)triethoxysilane (APTES) e sua conjugação com deferoxamina usando uma moiety de succinil como linker. Uma descrição profunda da caracterização estrutural e um ensaio de bactérias de captura usando Y. enterocolitica para todas as nanopartículas intermediárias e o conjugado final também são descritos em detalhes.

Resumo

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No presente trabalho, a síntese de nanopartículas magnéticas, seu revestimento com SiO2,seguido de sua funcionalização amina com (3-aminopropyl)triethoxysilane (APTES) e sua conjugação com deferoxamina, um siderophore reconhecido por Yersinia enterocolitica,usando um moiety de succinyl como linker são descritos.

As nanopartículas magnéticas (MNP) de magnetita (Fe3O4) foram preparadas pelo método solvothermal e revestidas com SiO2 (MNP@SiO2) utilizando o processo stöber seguido de funcionalização com APTES (MNP@SiO2@NH2). Em seguida, a feroxamina foi conjugada com o MNP@SiO2@NH2 por acoplamento de carbodiimídeo para dar MNP@SiO2@NH2@Fa. A morfologia e as propriedades dos conjugados e intermediários foram examinadas por oito métodos diferentes, incluindo difração de raios-X em pó (XRD), espectroscopia infravermelha de transformação fourier (FT-IR), espectroscopia de Raman, espectroscopia fotoeletrântrica de raios-X (XPS), microscopia eletrônica de transmissão (TEM) e mapeamento de raios-X dispersivos de energia (EDX). Essa caracterização exaustiva confirmou a formação do conjugado. Finalmente, para avaliar a capacidade e especificidade das nanopartículas, elas foram testadas em um ensaio de bactérias de captura utilizando Yersinia enterocolitica.

Introdução

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Os métodos de detecção de bactérias que utilizam MNP baseiam-se no reconhecimento molecular de anticorpos, aptamers, bioproteínas, carboidratos conjugados ao MNP pela bactéria patogênica1. Levando-se em conta que os siderophores são reconhecidos por receptores específicos na membrana externa das bactérias, eles também podem estar ligados ao MNP para aumentar sua especificidade2. Siderophores são pequenas moléculas orgânicas envolvidas na absorção do Fe3+ por bactérias3,4. A preparação de conjugados entre siderophores e MNP, juntamente com sua avaliação para a captura e isolamento de bactérias ainda não foi relatada.

Um dos passos cruciais na síntese de conjugados de nanopartículas magnéticas com pequenas moléculas é a seleção do tipo de ligação ou interação entre eles para garantir que a pequena molécula seja anexada à superfície do MNP. Por essa razão, o procedimento para preparar o conjugado entre nanopartículas magnéticas e feroxamina — o siderophore reconhecido pela Yersinia enterocolitica— foi focado na geração de uma superfície modificável do MNP para permitir ligá-lo covalentemente ao siderophore pela química de carbodiimídeo. A fim de obter uma nanopartículas magnetita uniforme (MNP) e melhorar a nucleação e controle de tamanho, uma reação de solvolise com álcool benzílico foi transportada em um bloco térmico sem tremer5. Em seguida, um revestimento de sílica foi gerado pelo método Stöber para conferir proteção e melhorar a estabilidade da suspensão das nanopartículas na mídia aquosa6. Levando-se em conta a estrutura da feroxamina, a introdução de grupos de amina é necessária para produzir nanopartículas adequadas (MNP@SiO2@NH2) a serem conjugadas com o siderophore. Isso foi conseguido por condensação de (3-aminopropil)triethoxysilano (APTES) com os grupos de álcool presentes na superfície das nanopartículas modificadas de sílica (MNP@SiO2) utilizando um método sol-gel7.

Paralelamente, o complexo de ferro feroxamina (III) foi preparado pela complexidade da deferoxamina comercialmente disponível com acetonato de acetil de ferro em solução aquosa. N-succinylferoxamina, com grupos de succinil que atuarão como eloers, foi obtido pela reação de feroxamina com anidrido succinico.

A conjugação entre MNP@SiO2@NH2 e N-succinylferoxamine para dar MNP@SiO2@NH@Fa foi realizada através da química de carbodiícida usando como reagentes de acoplamento benzotriazol-1-yl-oxy-tris-(dimethylamino)-fosfônio hexafluorophosphate (BOP) e 1-hidroxibenzotriazole (HOBt) em uma mídia básica suave para ativar o grupo ácido terminal em N-succinylferoxamina8.

Uma vez caracterizados os MNPs, avaliamos as capacidades de nanopartículas magnéticas nuas e funcionalizadas para capturar o tipo selvagem (WC-A) e um mutante de Y. enterocolitica sem receptor de feroxamina FoxA (FoxA WC-A 12-8). MNPs simples, MNPs funcionalizados e os MNP@SiOconjugados 2@NH@Fa foram autorizados a interagir com cada cepa Y. enterocolitica. Os agregados de bactérias conjugadas foram separados da suspensão das bactérias pela aplicação de um campo magnético. Os agregados separados foram enxaguados duas vezes com soro fisiológico tamponado de fosfato (PBS), re-suspenso na PBS para preparar diluições seriais e, em seguida, foram banhados para contagem de colônias. Este protocolo demonstra cada passo da síntese de MNP@SiO2@NH@Fa, a caracterização estrutural de todos os intermediários e do conjugado, e um ensaio de captura de bactérias como uma forma fácil de avaliar a especificidade do conjugado em relação aos intermediários. 9

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Protocolo

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NOTA: Para as reações realizadas em condições de atmosfera inerte, todos os vidros foram previamente secos em um forno a 65 °C, selados com um septo de borracha e purgados com argônio três vezes.

1. Síntese de nanopartículas magnéticas conjugadas com feroxamina

  1. Síntese de Nanopartículas magnéticas Fe3O4 (MNPs)
    1. Adicione 0,5 g de Fe(acac)3 em um frasco de vidro de 20 mL e depois misture com 10 mL de álcool benzílico.
    2. Sonicar esta mistura por 2 minutos, depois transfira para um bloco de aquecimento e aqueça a 180 °C por 72 h.
    3. Depois que a reação for concluída, deixe os frascos esfriarem, enxágue as nanopartículas com 96% de etanol e centrífuga a 4000 x g por 30 minutos. Repita a centrifugação pelo menos duas vezes.
    4. Separe as nanopartículas do supernante por atração magnética usando um ímã de neodímio (NdFeB) e descarte o solvente residual.
    5. Enxágüe com 96% de etanol repetindo passo 1.1.4. e descarte o supernatante alternando com sônica em um banho por 1 min a 40 kHz até que o solvente pareça claro.
  2. Revestimento de nanopartículas magnéticas SiO2 (MNP@SiO2)
    1. Prepare uma suspensão de 2 g de MNP em 80 mL de isopropanol e, em seguida, adicione 4 mL de amônia de 21%, 7,5 mL de água destilada e 0,56 mL de ortossilicato de tetraetila (TEOS) (nesta ordem) em um frasco de fundo redondo com uma barra de agitação magnética.
    2. Aqueça a mistura a 40 °C por 2h com agitação contínua e depois sonicar por 1h.
    3. Separe o MNP com um ímã, descarte o supernasce e disperse-o em 30 mL de isopropanol.
    4. Repita as etapas 1.2.1. e 1.2.2.
    5. Retire e lave a barra de agitação magnética com 96% de etanol para recuperar todo o material.
    6. Separe as nanopartículas do supernante por atração magnética usando um ímã.
    7. Descarte o supernaspeuta e enxágue as nanopartículas com 96% de etanol três vezes alternadamente com sônica.
    8. Seque as nanopartículas sob vácuo à temperatura ambiente por 12 h.
  3. Funcionalização de MNP@SiO2 com (3-aminopropil)triethoxysilane (APTES)
    1. Enxágüe 500 mgs do MNP@SiO2 obtidos da etapa anterior com N-dimetilformamida (DMF) em atmosfera inerte e depois sonicate por 1 min a 40 kHz. Em seguida, descarte o supernaspe e repita esse processo três vezes.
    2. Suspenda as partículas em um frasco fundo redondo, em mexer com uma barra de agitação magnética e adicione 9 mL de APTES.
    3. Mexa a mistura a 60 °C por 12 h.
    4. Descarte o supernaspeuta e enxágue as nanopartículas com 96% de etanol três vezes alternadamente com sônica.
  4. Síntese de feroxamina
    1. Dissolver 100 mgs (0,15 mmol) de sal mesilto deferoxamina e 53,0 mgs (0,15 mmol) de Fe(acac)3 em 5 mL de água destilada e agitar a mistura durante a noite à temperatura ambiente.
    2. Lave o produto resultante três vezes com 20 mL de EtOAc em um funil de separação e, em seguida, remova o solvente orgânico sob vácuo usando um evaporador rotativo.
    3. Congele a fase aquosa para permitir a feroxamina como um sólido vermelho.
  5. Síntese de NN-succinylferoxamina
    1. Adicione 350 mg (3,50 mmol) de anidrido succininico a uma solução de 100 mgs (0,17 mmol) de feroxamina em 5 mL de piridina em um frasco redondo de fundo redondo de 50 mL sob atmosfera inerte.
    2. Mexa a mistura resultante à temperatura ambiente por 16 h. Após esse tempo, remova o excesso de piridina sob pressão reduzida em um evaporador rotativo para dar um sólido vermelho escuro.
    3. Dissolva a reação bruta em 3 mL de metanol.
    4. Transfira a solução metodólica em uma coluna Sephadex (20 cm de Sephadex em uma coluna de 20 mm de diâmetro) e elute a 0,5 mL/min.
    5. Colete a fração vermelha e remova o metanol sob vácuo usando um evaporador rotativo.
  6. Síntese do conjugado MNP@SiO2@NH@Fa
    1. Enxágüe 30 mg de MNP@SiOseco 2@NH 2 duasvezes com DMF e sonicar as nanopartículas em um frasco de 100 mL Erlenmeyer por 30 minutos sob atmosfera inerte.
    2. Prepare uma solução de N-succinylferoxamine (200 mgs, 0,30 mmol), benzotriazol-1-yl-oxy-tris-(dimethylamino)-fosfônio hexafluorofosfato (BOP, 173 mgs, 0,45 mmol), 1-hidroxibenzotriazol (HOBt, 46 mgs, 0,39 mmol) e N,N-diisopropylethylamina (DIPEA, 128,8 mgs, 1,21 mmol) em 10 mL de DMF (Mix A) em um flaskert de fundo redondo de 50 mL sob atmosfera inserção.
    3. Suspenda o MNP@SiO anteriormente enxaguado2@NH2 em 3 mL de DMF sob sônica em condições secas sob condições livres de oxigênio usando uma atmosfera de gás argônio (Mix B).
    4. Adicione a mistura A para misturar B dropwise.
    5. Agite a mistura final usando um agitador orbital à temperatura ambiente durante a noite.
    6. Separe o conjugado resultante (MNP@SiO2@NH@Fa) da suspensão usando um ímã.
    7. Enxágüe o sólido resultante e, em seguida, sonicate-lo cinco vezes com 10 mL de etanol.
    8. Seque o sólido sob vácuo por 24 h.

2. Ensaio bacteriano com cepas enterocoliticas de Y. para quantificar a captura de bactérias patogênicas com nanopartículas

  1. Prepare a suspensão de todas as nanopartículas intermediárias e o conjugado final em PBS a 1 mg/mL em tubos estéreis de 2 mL.
  2. Prepare uma cultura de Y. enterocolitica em 5 mL de caldo de Luria Bertani (LB) durante a noite incubando a 37 °C.
  3. Prepare um caldo de soja tripptic deficiente de ferro (TSB) adicionando 50 μL de 10 mM 2,2′-bipyridyl.
  4. Inocular os 5 mL de TSB deficiente de ferro com 50 μL da cultura pernoite de Y. enterocolitica e, em seguida, incubar a 37 °C com agitação até que um OD600 = 0,5\u20120.8 seja atingido.
  5. Tome 100 μL da cultura obtida na etapa 2.4 e dilua em um tubo de 2,0 mL contendo 900 μL de PBS para obter uma primeira diluição de 1/10. Em seguida, prepare uma diluição de 1/100 da primeira diluição usando o mesmo procedimento para obter uma concentração de células bacterianas em 1 x 106 Unidades de Formação de Colônias (UFC)/mL aproximadamente.
  6. Adicione 100 μL de suspensão de nanopartículas a 1 mg/mL a 1 mL da diluição de 1/100 da suspensão bacteriana em um tubo de 2,0 mL e homogeneize com vórtice.
  7. Incubar a cultura a 20 °C por 1 h.
  8. Separe os agregados MNP/bactéria usando um ímã e descarte cuidadosamente o supernasce.
  9. Enxágüe as nanopartículas separadas duas vezes com 1 mL PBS usando um vórtice.
  10. Suspenda as nanopartículas em 1 mL de PBS para contar a quantidade de captura bacteriana em UFC/mL.
  11. Prepare quatro diluições consecutivas de 1/10 da suspensão anterior até que uma diluição de 1 x10 -4 seja alcançada.
  12. Placa 10 μL de cada diluição em placas de ágar TS e incuba-as a 37 °C durante a noite.
  13. Fotografe a placa com um digitalizador de gel no modo epi branco. Processe a imagem com um software apropriado para amplificar um local para contar o número de colônias individuais.
    NOTA: Cada intermediário MNP foi caracterizado para acompanhar o andamento da síntese. Em primeiro lugar, os MNPs nus foram estudados pela XRD para verificar a estrutura cristalina. Em seguida, o espectro FT-IR de cada intermediário foi executado para verificar as alterações ocorridas na reação correspondente. A análise da espectroscopia de Raman de cada intermediário também foi realizada para confirmar as conclusões deduzidas dos espectros FT-IR. A análise da TGA nos permitiu estimar o peso de perda dos intermediários portadores de material orgânico em sua estrutura. A morfologia e o tamanho de cada intermediário foram estudados pelo TEM. Finalmente, a análise da XPS foi fundamental para determinar os estados de oxidação do átomo em cada superfície intermediária de MNP e confirmar a formação de vínculo covalente no conjugado MNP@SiO2@NH@Fa.

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Resultados

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Uma caracterização estrutural exaustiva é realizada a fim de determinar a morfologia e as propriedades de cada intermediário e o conjugado final. Para isso, as técnicas XRD, FT-IR, Raman spectroscopia, TGA, TEM, mapeamento EDX e XPS são utilizadas para demonstrar a formação do conjugado. Os estados de oxidação dos átomos na superfície das nanopartículas adquiridas pela espectroscopia de fotoeletrões de raios-X (XPS) são os dados mais relevantes para confirmar a formação de ligações covalentes entre a nanopartícula e o si...

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Discussão

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Este protocolo descreve a síntese de um conjugado entre nanopartículas magnéticas e feroxamina siderophore por ligação covalente. A síntese de magnetita foi realizada utilizando-se o protocolo relatado por Pinna et al.5 seguido de revestimento de sílica para proteger o núcleo magnético da corrosão em sistemas aquosos, minimizar a agregação e fornecer uma superfície adequada para a funcionalização6. O processo de revestimento de sílica foi modificado. Em vez de realizar três...

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Divulgações

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Não temos nada para revelar.

Agradecimentos

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Os autores reconhecem com gratidão o professor Klaus Hantke (Universidade de Tübingen, Alemanha) por fornecer gentilmente as cepas enterocoliticas de Yersinia usadas neste trabalho. Este trabalho foi apoiado pelas bolsas AGL2015-63740-C2-1/2-R e RTI2018-093634-B-C21/C22 (AEI/FEDER, UE) da Agência Estatal de Pesquisa (AEI) da Espanha, co-financiada pelo Programa FEDER da União Europeia. O trabalho na Universidade de Santiago de Compostela e na Universidade de A Coruña também foi apoiado pelas bolsas GRC2018/018, GRC2018/039 e ED431E 2018/03 (grupo estratégico CICA-INIBIC) da Xunta de Galícia. Finalmente, queremos agradecer a Nuria Calvo por sua grande colaboração fazendo o protocolo de dublador deste vídeo.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
1-Hidroxibenzotriazol hidrato
HOBT
Acros300561000
2,2′-BipiridilSigma AldrichD216305
3-Aminopropiltrietoxissilano 99%Acros151081000
Solução de hidróxido de amônio 28% NH3Sigma Aldrich338818
Benzotriazol-1-iloxitris(dimetilamino)-fosfônio hexafluorofosfato BOP ReagenteAcros209800050
Álcool benzílicoSigma Aldrich822259
Sal de mesilato de desferroxamina >92,5% (TLC)Sigma AldrichD9533
Etanol anidro, 96%Panreac131085
Acetato de etila, Extra Puro, SLR, Fisher Chemical
Acetilacetonato de ferro (III) 97%Sigma AldrichF300
LB Caldo (Lennox)Sigma AldrichL3022
N, N-Diisopropiletilamina, 99,5 +%, AcroSealAcros459591000
N, N-Dimetilformamida, 99,8%, Extra Seco, AcroSealAcros326871000
Piridina, 99,5%, Extra Seco, AcroSealAcros
Sephadex LH-20Sigma AldrichLH20100
Anidrido succínico >99%Sigma Aldrich239690
Tetraetila ortossólica >99,0%Sigma Aldrich86578
339421000

Referências

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  1. Pan, Y., Du, X., Zhao, F., Xu, B. Magnetic nanoparticles for the manipulation of proteins and cells. Chemical Society Reviews. 41 (7), 2912-2942 (2012).
  2. Zheng, T., Nolan, E. M. Siderophore-based detection of Fe(III) and microbial pathogens. Metallomics. 4, 866-880 (2012).
  3. Hider, R. C., Kong, X. Chemistry and biology of siderophores. Natural Product Reports. 27 (5), 637-657 (2010).
  4. Sandy, M., Butler, A. Microbial Iron Acquisition: Marine and Terrestrial Siderophores. Chemical Reviews. 109 (10), 4580-4595 (2010).
  5. Pinna, N., Grancharov, S., Beato, P., Bonville, P., Antonietti, M., Niederberger, M. Magnetite Nanocrystals : Nonaqueous Synthesis, Characterization. Chemistry of Materials. 17 (15), 3044-3049 (2005).
  6. Li, Y. S., Church, J. S., Woodhead, A. L., Moussa, F. Preparation and characterization of silica coated iron oxide magnetic nano-particles. Spectrochimica Acta - Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy. 76 (5), 484-489 (2010).
  7. Chen, J. P., Yang, P. C., Ma, Y. H., Tu, S. J., Lu, Y. J. Targeted delivery of tissue plasminogen activator by binding to silica-coated magnetic nanoparticle. International Journal of Nanomedicine. 7, 5137-5149 (2012).
  8. El-Boubbou, K., Gruden, C., Huang, X. Magnetic glyco-nanoparticles: a unique tool for rapid pathogen detection, decontamination, and strain differentiation. Journal of the American Chemical Society. 129 (44), 13392-13393 (2007).
  9. Martínez-Matamoros, D., et al. Preparation of functionalized magnetic nanoparticles conjugated with feroxamine and their evaluation for pathogen detection. RSC Advances. 9 (24), 13533-13542 (2019).
  10. Cozar, O., et al. Raman and surface-enhanced Raman study of desferrioxamine B and its Fe(III) complex, ferrioxamine B. Journal of Molecular Structure. 788 (1-3), 1-6 (2006).
  11. Shebanova, O. N., Lazor, P. Characterisation of a-C:H and oxygen-containing Si:C:H films by Raman spectroscopy and XPS. Journal of Solid State Chemistry. 174 (4), 424-430 (2003).
  12. González, P., Serra, J., Liste, S., Chiussi, S., León, B., Pérez-Amor, M. Raman spectroscopic study of bioactive silica based glasses. Journal of Non-Crystalline Solids. 320 (12), 92-99 (2003).
  13. Veres, M., et al. Characterisation of a-C:H and oxygen-containing Si:C:H films by Raman spectroscopy and XPS. Diamond and Related Materials. 14 (3-7), 1051-1056 (2005).
  14. You, Y., et al. Visualization and investigation of Si-C covalent bonding of single carbon nanotube grown on silicon substrate. Applied Physics Letters. 93 (10), 103111-103113 (2008).
  15. Graf, N., et al. XPS and NEXAFS studies of aliphatic and aromatic amine species on functionalized surfaces. Surface Science. 603 (18), 2849-2860 (2009).
  16. Michaeli, W., Blomfield, C. J., Short, R. D., Jones, F. R., Alexander, M. R. A study of HMDSO/O2 plasma deposits using a high-sensitivity and -energy resolution XPS instrument: curve fitting of the Si 2p core level. Applied Surface Science. 137 (1-4), 179-183 (2002).
  17. Liana, A. E., Marquis, C. P., Gunawan, C., Gooding, J. J., Amal, R. T4 bacteriophage conjugated magnetic particles for E. coli capturing: Influence of bacteriophage loading, temperature and tryptone. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 151, 47-57 (2017).
  18. Fang, W., Han, C., Zhang, H., Wei, W., Liu, R., Shen, Y. Preparation of amino-functionalized magnetic nanoparticles for enhancement of bacterial capture efficiency. RSC Advances. 6, 67875-67882 (2016).
  19. Zhan, S., et al. Efficient removal of pathogenic bacteria and viruses by multifunctional amine-modified magnetic nanoparticles. Journal of Hazardous Materials. 274, 115-123 (2014).

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