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Artigo de método

Análise de blot de RNA para detecção e quantificação de MicroRNAs vegetais

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DOI:

10.3791/61394

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11 de julho de 2020

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Neste artigo

Resumo

Este método demonstra o uso da técnica de hibridização do norte para detectar miRNAs a partir do extrato total de RNA.

Resumo

MicroRNAs (miRNAs) são uma classe de não codificação expressa endógenamente expressa, ~21 nt pequenos RNAs envolvidos na regulação da expressão genética em plantas e animais. A maioria dos miRNAs atuam como interruptores negativos de expressão genética visando genes-chave. Nas plantas, as transcrições miRNAs primárias (pri-miRNAs) são geradas pela polimerase RNA II, e formam diferentes comprimentos de estruturas estáveis de laço-tronco chamadas pré-miRNAs. Uma endonuclease, semelhante a Dicer1, processa os pré-miRNAs em duplexes miRNA-miRNA*. Um dos fios do duplex miRNA-miRNA* é selecionado e carregado na proteína Argonaute 1 ou seus homólogos para mediar o decote dos mRNAs alvo. Embora os miRNAs sejam moléculas-chave de sinalização, sua detecção é frequentemente realizada por métodos baseados em PCR menos que ideais em vez de uma análise sensível da mancha do norte. Descrevemos um método norte simples, confiável e extremamente sensível que é ideal para a quantificação dos níveis de miRNA com sensibilidade muito alta, literalmente de qualquer tecido vegetal. Além disso, este método pode ser usado para confirmar o tamanho, estabilidade e a abundância de miRNAs e seus precursores.

Introdução

A recente descoberta de pequenas RNAs regulatórias, microRNAs, tem liderado pesquisas para entendê-las e seu papel em plantas e animais1. Precursores longos de miRNAs são processados em miRNAs maduros de 21 a 24 nt por HYL1 e proteínas específicas semelhantes a dicer2,,3. Um miRNA de 22 nt pode iniciar o silenciamento em cascata gerando siRNAssecundárias 4. Estudos têm mostrado o papel das miRNAs e siRNAs secundárias no desenvolvimento, destino celular e respostas ao estresse5,6.

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Protocolo

1. Preparação de um gel de poliacrilamida de 15% de desnaturação

  1. Pesar e adicionar 4,8 g de ureia, adicionar 3,75 mL de 40% de acrilamida: solução bisacrilamida (19:1) e 1 mL de 10x TBE pH 8.2 em um tubo estéril de 50 mL.
  2. Dissolva a ureia usando um banho de água a 60 °C em uma solução clara.
  3. Recarrege o volume para 10 mL usando água estéril recém-autoclavada e esfrie a mistura de gel à temperatura ambiente.
  4. Prepare a solução fresca de persulfito de amônio de 10% (p/v).

2. Montagem das placas de vidro e unidade de eletroforese

  1. Lave todos os aparelhos necessários para a eletroforese do g....

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Resultados

Nesta demonstração, detectamos e quantificamos a expressão do miR397 em diferentes tecidos de arroz indica var whiteponni(Figura 1). miR397 é um miRNA de 22 nt e miRNA conservado. A expressão do miR397 pode ser detectada em todas as amostras testadas. De acordo com os dados de sequenciamento de próxima geração, a amostra 1 (tecido de mudas) tem miR397 a 5 leituras por milhão (rpm). Detectamos seu sinal confortavelmente, indicando que o método é muito sensível e pode ser usa.......

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Discussão

Este método pode ser amplamente utilizado para detecção e quantificação de pequenos RNAs, incluindo miRNAs menos abundantes. O protocolo descreve principalmente os passos para desnaturar o RNA total em um buffer de carregamento, separação de tamanho por eletroforese de gel, transferência de RNA para uma membrana, cruzar o RNA para a membrana e hibridizar usando sondas oligo chamadas radiolabeled desejadas.

O passo crítico para qualquer experimento de manchas é o uso de RNA de boa qualidade par.......

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Divulgações

Nenhum conflito de interesses declarado.

Agradecimentos

Os autores reconhecem o acesso ao laboratório de radiação fornecido pelo instituto anfitrião e pelo BRIT para radioisótopos. O laboratório PVS é apoiado pelo Centro Nacional de Ciências Biológicas do Instituto Tata de Pesquisa Fundamental e bolsas (BT/PR12394/AGIII/103/891/2014; BT/IN/Swiss/47/JGK/2018-19; BT/PR25767/GET/119/151/2017) do Departamento de Biotecnologia, Governo da Índia. MP reconhece DBT-Research Associateship, DBT, Governo da Índia.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Solução de acrilamida-bisacrilamida a 40%SigmaA9926
Persulfato de amônio (APS)BioRad1610700
Papel mata-borrãowhatmann papel mata-borrão I1001-125
Azul de bromofenolSigmaB5525-5G
Pontas de carregamento capilarBioRad2239915
Deionizado formamidaAmbionAM9342
Bloco de aquecimentoEppendorff5350
Hybond N + membrana de nylonGERPN203B
Frasco de hibridizaçãoSigmaZ374792-1EA
Forno de hibridizaçãoThermo Scientific1211V79
N, N, N ', N'-Tetrametiletilenodiamina (TEMED)SigmaT7024-25ml
PhosphorImagerGE- Scanner de tufão29187194
tela e PhosphorImagerGE healthcareGE28-9564-75
PipetasGilson, modelos: P20 e P10FA10002M, FA10003M
Pipeta de plásticoFalcon357550
Aparelho de gel de poliacrilamidaBioRad1658003EDU
Sephadex G-25 colunaGE27532501
Speed Speed Vac ConcentratorThermo Scientific20-548-130
SpinwinTarsons1010
T4 Polynucleotide Kinase (PNK)NEBM0201S
Transblot aparelhoBioRad1703946
ULTRAHyb tampão de hibridizaçãoAmbionAM8670
UreiaFischer Scientific15985
Reticulador UV UVPCL-1000L
VortexTarsons3020
Banho-mariaNEOLABD-8810
Xileno cianolSigmaX4126-10G

Referências

  1. Baulcombe, D. RNA silencing in plants. Nature. 431, 356-363 (2004).
  2. Anushree, N., Shivaprasad, P. V. Regulation of Plant miRNA Biogenesis. Proceedings of the Indian National Science Academy. 95, (2017).
  3. Narjala, A., Nair, A., Tirumalai, V., Hari Sundar, G. V., Shivaprasad, P. V.

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Reimpressões e permissões

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