Este estudo descreve um método para expandir a quitina em uma espuma por técnicas químicas que não requerem equipamentos especializados.
Artigo de método
Este estudo descreve um método para expandir a quitina em uma espuma por técnicas químicas que não requerem equipamentos especializados.
A quitina é um biopolímero pouco explorado, naturalmente abundante, mecanicamente robusto e quimicamente resistente. Essas qualidades são desejáveis em um adsorbent, mas a quitina não possui a área de superfície específica necessária, e sua modificação envolve técnicas e equipamentos especializados. Aqui é descrito um novo procedimento químico para a expansão de flocos de quitina, derivados de resíduos de casca de camarão, em espumas com área de superfície mais alta. O processo conta com a evolução do gás H2 a partir da reação da água com NaH preso em um gel de quitina. O método de preparação não requer nenhum equipamento especializado. Difração de raios-X em pó e N2-fissionação indicam que o tamanho da cristallite diminui de 6,6 nm para 4,4 nm e a área de superfície específica aumenta de 12,6 ± 2,1 m2/g para 73,9 ± 0,2 m2/g. No entanto, espectroscopia infravermelha e análise termogravitamétrica indicam que o processo não altera a identidade química da quitina. A capacidade específica de adsorção de da quitina expandida aumenta em proporção a área de superfície específica de 13,8 ± 2,9 mg/g para 73,1 ± 2,0 mg/g. No entanto, a capacidade de adsorção de como densidade superficial permanece relativamente constante a uma média de 10,1 ± 0,8 átomo/nm2,o que novamente sugere nenhuma mudança na identidade química da quitina. Este método oferece os meios para transformar a quitina em um material de área de superfície superior sem sacrificar suas propriedades desejáveis. Embora a espuma de quitin seja descrita aqui como um adsorbente, ela pode ser imaginada como um suporte catalisador, isolador térmico e material estrutural.
A quittina é um biopolímero mecanicamente robusto e quimicamente inerte, perdendo apenas para a celulose em abundância natural1. É o principal componente no exoesqueleto de artrópodes e nas paredes celulares de fungos eleveduras 2. A quitina é semelhante à celulose, mas com um grupo hidroxílico de cada monômero substituído por um grupo de amina acetil(Figura 1A, B). Essa diferença aumenta a força da ligação de hidrogênio entre as cadeias de polímeros adjacentes e dá à chitina sua resiliência estrutural característica e inerte química2,3. Devido às suas propriedades e abundância, a quitina tem atraído interesse industrial e acadêmico significativo. Tem sido estudado como um andaime para o crescimento tecidual4,5,6, como componente em materiais compostos7,8,9,10,11, e como suporte para adsorbents e catalisadores11,12,13,14. Sua estabilidade química, em particular, torna a quittina atraente para aplicações de adsorção que envolvem condições inóspitas aos adsorventes comuns14. Além disso, a abundância de grupos de amina tornam a quitina um adsorbent eficaz para íons metálicos15. No entanto, a protonação dos grupos de amina em condições ácidas reduz a capacidade de adsorção metálica da quittina16. Uma estratégia bem sucedida é introduzir sites de adsorção mais resistentes à prótonação17,18. Em vez disso, aqui é descrito um método simples para aumentar a área de superfície específica e, portanto, o número de sites de adsorção em quitina.

Figura 1. Estrutura química. (A) celulose, (B) chitina, (C) chitosan. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Apesar de seus muitos usos potenciais, a quitina é subutilizada. O processamento de quitina é desafiador devido à sua baixa solubilidade na maioria dos solventes. Uma limitação fundamental ao seu uso em catálise e adsorção é sua área de superfície específica baixa. Enquanto os suportes típicos de carbono e óxido metálico têm áreas de superfície específicas na ordem 102-103 m2/g, os flocos comerciais de quitina têm áreas superficiais na ordem de 10 m2/g19,20,21. Existem métodos para expandir a quitina em espumas, mas invariavelmente dependem de alta temperatura e pressão, ácidos e bases fortes, ou equipamentos especializados que representam uma barreira de entrada significativa5,21,22,23,24,25. Além disso, esses métodos tendem a desacetilar a quitina para formar o quitosan (Figura 1C)-um biopolímero mais solúvel e reativo5,25,26.
Aqui, um método é descrito para expandir a quitina em espumas sólidas, aumentar sua área de superfície específica e capacidade de adsorção, e manter sua integridade química. O método conta com a rápida evolução do gás de dentro de um gel de quitina e não requer equipamentos especializados. O aumento da capacidade de adsorção da quitina expandida é demonstrado com2+aquoso -um contaminante comum nas águas subterrâneas locais26.
| Unidade | Floco Puro | Espuma Assada | Espuma lyophilizada | |
| Cristalinidade | % | 88 | 74 | 58 |
| Tamanho do cristal | Nm | 6.5 | 4.4 | 4.4 |
| Área de superfície | m2/g | 12.6 ± 2.1 | 43.1 ± 0.2 | 73,9 ± 0,2 |
| Uptake | mg/g | 13,8 ± 2,9 | 48,6 ± 1,9 | 73.1 ± 2.0 |
| Uptake | átomo/nm2 | 10.5 ± 2.8 | 10.7 ± 0.4 | 9.4 ± 0.3 |
Mesa 1. Resumo das propriedades do material. As espumas de quitina têm cristalidade mais baixa e tamanho de cristal em relação aos flocos de quitina puros. No entanto, a área de superfície específica e a absorção de das espumas de quitina são proporcionalmente maiores do que as dos flocos de quitina puros.
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1. Preparação de quitina expandida

Figura 2. Preparação de espuma de cebolinha expandida. (A) A quitina inicial na solução LiCl/DMAc. (B) A adição do chorume NaH/DMAc. (C) A espuma de quitina após a adição de água. (D) A espuma de quitina extraída do frasco de reação. (E) A espuma de cebolinha durante a lavagem com água. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
2. Desenvolvimento dos isotherms de adsorção
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A quitina expandida mostra a mesma morfologia, independentemente do método de secagem. A Figura 3 mostra imagens de flocos de quitina puros(Figura 3A1),quitina expandida seca no forno(Figura 3B1)e quitina expandida liofilizada(Figura 3C3). Enquanto os flocos puros têm o aparecimento de areia grosseira, a espuma de cebolinha expandida tem a aparência de um grão de milho estourado. Micrografias eletr...
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O método proposto para fabricação de espuma de cebolinha permite a produção de tais espumas sem a necessidade de equipamentos ou técnicas especializadas. A produção da espuma de quitina depende da suspensão do hidreto de sódio dentro de um sol-gel de quitina. O contato com a água da atmosfera induz a gelagem da matriz de quitina e a evolução do gás hidrogênio pela decomposição do hidreto de sódio. Portanto, as etapas críticas da preparação são (1) a formação do sol-gel, (2) introdução do hidreto de sódio em condições ani...
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Os autores não têm nada a revelar.
A pesquisa foi patrocinada pelo Laboratório de Pesquisa do Exército de Comando de Desenvolvimento de Recursos de Combate (Número de Acordo Cooperativo W911NF-15-2-0020). Quaisquer opiniões, conclusões e conclusões ou recomendações expressas neste material são dos autores e não refletem necessariamente as opiniões do Laboratório de Pesquisa do Exército.
Agradecemos ao Centro de Processamento de Materiais Avançados (CAMP) da Universidade Tecnológica de Montana pelo uso de alguns dos equipamentos especializados necessários neste estudo. Agradecemos também a Gary Wyss, Nancy Oyer, Rick LaDouceur, John Kirtley e Katherine Zodrow pela assistência técnica e discussões úteis.
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Bicarbonato de amônio | Sigma-Aldrich | 9830 | NH4HCO3, ≥ 99,5 |
| Quitina | Sigma-Aldrich | C7170 | Pandalus borealis, Colorímetro de grau prático |
| Hanna Instruments | HI83399-01 | Fotômetro para análise de águas residuais | |
| Verificador de Cobre de Alta Faixa | Hanna Instruments | HI702 | Bicinchoninato Titulação colorimétrica |
| Hidrato de nitrato de cobre | Sigma-Aldrich | 223395 | (NO3)2 · 2.5 H2O, 98 % |
| Dimetilacetamida (DMAc) | Sigma-Aldrich | 271012 | Anidro, 99.8 % |
| IR Espectrofotômetro | Thermo Nicolet | Nexus 670 | Equipado com uma célula ATR |
| Cloreto de lítio | Sigma-Aldrich | 310468 | LiCl, ≥ 99 % |
| N2 Aparelho | de Fisisorção Micromeritics | Tristar II | |
| Ácido nítrico | BDH | BDH7208-1 | HNO3, 0,1 N |
| Microscópio eletrônico de varredura | Zeiss LEO | 1430 VP | 15 kV, detector de elétrons secundário, distância de trabalho de 29-31 mm |
| Hidreto de sódio | Sigma-Aldrich | 223441 | NaH, embalado em óleo mineral, 90% |
| Termogravimétrico analisador | TA Instruments | Q500 | 100 ml/min N2, 10 > C/min a 800 &graus; |
| C Sistema de Purificação de Água | Millipore Milli-Q | Tipo A água (18 MΩ) | |
| Difratômetro de Raios X | Rigaku | Ultima IV | K-&alfa; radiação, 8,04 keV |
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