Apresentado é um protocolo para a expansão do produto de células T Gama-Delta (γδ). Os linfócitos são isolados por elutriação e enriquecidos com ácido zoledrônico e interleucina-2. As células T alfa-beta estão esgotadas usando um dispositivo de separação magnética de grau clínico. As células γδ são co-cultivadas com células derivadas de antígenos artificiais e expandidas.
Artigo de método
Expansão e enriquecimento de células T Gama-Delta (γδ) do produto humano aferido
Neste artigo
Resumo
Resumo
Embora as células T Vγ9Vδ2 sejam um pequeno subconjunto de linfócitos T, essa população é procurada por sua capacidade de reconhecer antígenos de uma forma importante e de histocompatibilidade (MHC) independente e desenvolver uma forte função de efeito citóltico que o torna um candidato ideal para a imunoterapia contra o câncer. Devido à baixa frequência das células T Gama-Delta (γδ) no sangue periférico, desenvolvemos um protocolo eficaz para expandir um produto de células γδ t altamente puro para o uso in primeiro em humano de células γδ alusicais em pacientes com leucemia mielóide aguda (LMA). Usando aferese saudável do doador como fonte celular alergênica, os linfócitos são isolados usando um dispositivo validado para um método de centrifugação de contrafluxo de separar células por tamanho e densidade.
A fração rica em linfócitos é utilizada, e as células γδ T são preferencialmente ativadas com ácido zoledrônico (aprovado pela FDA) e interleucina (IL)-2 por 7 dias. Após a expansão preferencial das células T γδ, um dispositivo de separação celular magnética de grau clínico e contas TCRαβ são usadas para esgotar as células T contaminantes (TCR)αβ T. As células γδ T altamente enriquecidas passam então por uma segunda expansão usando células artificiais de presente de antígeno (aAPCs) projetadas de células K562 geneticamente modificadas para expressar fragmento variável de cadeia única (scFv) para CD3 e CD28, 41BBL (CD137L) e IL15-RA-juntamente com ácido zoledr e IL-2. A semeadura de todas as células γδ T enriquecidas no dia 7 em co-cultura com os aAPCs facilita a fabricação de células γδ T altamente puras com uma expansão média de dobra de >229.000 vezes de sangue saudável do doador.
Introdução
A recaída da leucemia é a principal causa de mortalidade após o transplante hematopoiético de células (HCT) em pacientes com LMA1,2,3. Uma melhor sobrevida livre de leucemia foi relatada com o aumento da recuperação das células γδ T sanguíneas após o HCT sem o aumento do risco de Doença do Enxerto versus Hospedeiro (GVHD)4. A capacidade das células γδ T de reconhecer antígenos de forma independente do MHC e desenvolver fortes funções de efeitos citolíticos e th1 tornam esta pequena subpopulação de células T ideal para o tratamento de pacientes com LMA submetidos a transplante alogênico em risco de recaída5. Dado que as células T Vγ9Vδ2 são um pequeno subconjunto de linfócitos T que variam de 0,5% a 5% das células T na periferia6, propusemos estabelecer um sistema robusto para expandir essa rara população de células sanguíneas para alcançar doses potencialmente terapêuticas para ensaios clínicos.
Embora outros tenham expandido com sucesso células γδ T usando ácido zoledrônico e até mesmo aAPCs, desenvolvemos um processo que pode potencialmente expandir as células γδ T em 229.749 vezes. A expansão é fofásica: primeiro, os linfócitos são obtidos por elutriação utilizando o instrumento de separação. O equipamento fornece um sistema fechado que permite a separação de células com base em seu tamanho, forma e densidade por centrifugação de contrafluxo. Após enriquecer para linfócitos, a expansão seletiva das células T Vγ9Vδ2 é alcançada pelo tratamento com ácido zoledrônico e IL-2 por 7 dias. Imediatamente após este tratamento, as células TCR-αβ T são esgotadas usando a tecnologia de microesferas, permitindo a posterior expansão das células T γδ com aAPCs derivados de K562.
Para validação do processo, apenas 5 × 106 células γδ T expandidas por ácido zoledrônico foram utilizadas para a expansão da cocultura fase 2 com aAPCs. Nesta segunda fase de expansão, as células γδ T são ativadas usando um banco de células de trabalho (WCB) compatível com boas práticas de fabricação (WCB) de aAPCs derivados geneticamente (K562VL6(scFv-CD3-41BBL;scFv-CD28-IL15-RA)) fabricados na Moffitt. A lógica dessa expansão fáfasica baseia-se na capacidade do ácido zoledrônico de inibir a distease de difosfato farnésico (FDPS) em monócitos, levando ao acúmulo de pirofosfato isopaténico, que estimula diretamente as células Vγ2Vδ2. Na segunda fase de expansão, os aAPCs derivados do K562 (K562VL6(scFv-CD3-41BBL;scFv-CD28-IL15-RA)) fornecem uma estimulação robusta para todas as células T. No entanto, o produto celular já foi enriquecido para as células γδ T, resultando em uma expansão robusta das células γδ T.
Com o uso de equipamentos e frascos específicos, o processo é um sistema funcionalmente fechado, diminuindo assim o risco de contaminação. Além disso, o bioreator de sistema fechado 1 L facilita o crescimento máximo e a expansão das células em um volume total de 1 L de médio com mínima necessidade de alimentação. A vantagem do método Moffitt é que ele fornece um sistema GMP rápido, reprodutível e altamente viável para produzir um produto celular γδ T altamente puro e derivado de doadores para administração aogenética. Este método pode ser aplicado a qualquer ensaio clínico que visa o uso de células γδ T humanas expressando receptores de células T Vγ2Vδ2 como imunoterapia adotiva para mediar a imunidade contra micróbios e tumores em pacientes com câncer com remissão parcial e completa. Além disso, fornece uma plataforma robusta para o desenvolvimento e produção de células T γδ quimérico receptor-positivo (CAR+).
Protocolo
NOTA: A aprovação do IRB foi obtida e o consentimento informado foi obtido dos doadores.
1. Isolamento do linfócito
- Transfira o produto da aferese para uma sala limpa.
NOTA: A validação do processo foi realizada utilizando-se aferese normal do doador de um fornecedor comercial externo compatível com as normas de coleta de matérias-primas. - Coletar amostras para testes de esterilidade, contagem de células e fenotipagem celular.
- Elutriate no dispositivo de centrifugação de contrafluxo usando um meio primário da Solução de Sal Balanceado Hanks com 1% de albumina de soro humano (HSA) e um meio secundário de solução salina (0,9% injeção de cloreto de sódio USP) ou salina fosfato-tampão de dulbecco (DPBS). Defina a velocidade de centrifugação da elutriação em 900 × g e colete frações com base na taxa de fluxo e no tempo.
- Coletar amostras da fração 2 e realizar os seguintes testes: 2 mL para testes de esterilidade; 0,5 mL para contagem de células e viabilidade utilizando iodeto de acridina laranja/propidium (AO/PI); 5 × 106 células para fenotipagem celular por citometria de fluxo.
- Expanda uma fração de linfócito puro (fração 2) de células na cultura a 10 × 106 células/cm2 em um bioreator de sistema fechado de 1 L com 5 μmol/L de ácido zoledrônico e 300 UI/mL de IL-2.
- Incubar por sete dias em uma incubadora fixada a 37 °C com 5% de CO2.
2. Esgotamento de células T Alfa-beta (αβ)
- Células de colheita do frasco bioreator do sistema fechado 1 L. Soldar estéril um pacote de transferência de 1 L para a linha vermelha do bioreator do sistema fechado, e usar a bomba farmacêutica apropriada para transferir as células para o pacote de transferência.
- Pegue as seguintes amostras: 10 mL para esterilidade média gasta; 0,5 mL de células para contagem de células e viabilidade utilizando AO/PI; 5 × 106 células para citometria de fluxo
- Resuspend as células em ~5 × 108 células/mL em soro fisiológico tamponado de fosfato (PBS) ou (PBS/ethylenodiaminetetraactic acid (EDTA)) tampão + 0,5% HSA e anticorpos tcr αβ-específicos biotinilados.
- Coloque o agitador na geladeira e incuba as células a 2-8 °C por aproximadamente 15 minutos com agitação.
- Lave as células com um total de 600 mL de tampão PBS/EDTA + 0,5% HSA. Centrífuga para remover o anticorpo desvinculado em 200-500 × g por 15 min a 2-8 °C. Resuspend ~5 × 108 células/mL em buffer PBS/EDTA + 0,5% HSA com microesferas anti-biotina (7,5 mL/1 frasco).
- Coloque o agitador na geladeira e incuba as células a 2-8 °C por aproximadamente 15 minutos com agitação. Após a incubação, centrifugar as células a 200-500 × g por 15 min a 2-8 °C para remover as microesferas não ligadas. Resuspend ~6 × 107 células/mL no buffer PBS/EDTA + 0,5% HSA e transfira-as para uma mala de transferência.
- Instale o conjunto de tubos no dispositivo de separação celular magnética de grau clínico seguindo as instruções do fabricante, coloque as embalagens com o tampão PBS/EDTA e o pacote de transferência com o produto celular no instrumento e bata-o quando instruído pelo instrumento.
- Selecione o protocolo Depletion 1.2 para o esgotamento das células αβ T rotuladas.
- Centrifugar a fração alvo (células γδ t enriquecidas) e resuspensar as células em meio suplementado com soro AB 10% humano.
- Pegue uma amostra de 0,5 mL e realize uma contagem de células e viabilidade com a mancha AO/PI. Leve as células a uma concentração final de aproximadamente 1 × 106 células/mL. Pegue uma amostra de 5 × 106 células do produto para fenotometria de fluxo pós-esgotamento.
3. Co-cultura com aAPCs
- Irradiar 5 × 107 aAPCs/frasco a 100 Gy no instrumento gerador de raios-X.
- Use os aAPCs na cocultura em uma proporção de 10:1 com as células γδ T. Coloque as células aAPCs irradiadas (5 × 107 células/frascos) e γδ T (5 × 106 células/frascos) em frascos bioreatores de sistema fechado 1 L com 1 L de meio de cultura suplementado com soro AB 10% humano. Semente até 10 frascos.
- Expanda as células na cultura por 10 dias em uma incubadora a 37 °C e 5% de CO2.
- Monitore os níveis de glicose e lactato a cada 3-4 dias usando tiras, glicose e um medidor de lactato.
- Se a glicose cair para 250 mg/dL, reduza o volume no frasco para 200 mL usando uma bomba farmacêutica por solda estéril um pacote de transferência de 1 L para a linha vermelha do bioreator do sistema fechado.
- Misture as células nos 200 mL restantes e pegue uma amostra de 0,5 mL para contagem celular e medição de viabilidade por coloração AO-PI. Se a contagem de células for ≥109, divida um frasco em dois frascos e encha cada frasco até 1 L com AIM-V complementado com soro AB 10% humano. Se a contagem de células for <109, alimente as células com um litro fresco de cultura de meio suplementado com soro AB 10% humano.
- Repita o passo 3.6 para todos os frascos e devolva-os à incubadora a 37 °C e 5% de CO2. Repita as etapas 3.4-3.7 a cada 3 a 4 dias.
4. Colheita celular
- Ao final de 10 dias em co-cultura, colhe todos os frascos bioreatores. Colher 1 frasco de bioreator de cada vez, e juntar todas as células em um pacote de transferência de tamanho apropriado. Soldar o pacote de transferência para a linha vermelha do bioreator do sistema fechado, e usar a bomba farmacêutica para transferir as células para o pacote de transferência.
- Remova as seguintes amostras de controle de qualidade: 1% do produto medicamentoso (DP) para esterilidade por cultura sanguínea e coloração gramada; 0,5 mL para contagem de células e viabilidade utilizando AO/PI; 5-10 × 106 células para citometria de fluxo (ver Figura 1 para estratégia de gating); 0,5 mL para endotoxina; 0,5 mL para coloração de grama; 106 células cravadas em 10 mL de meio gasto para testes de Mycoplasma.
- Centrifugar as células a 200-500 × g por 15 minutos à temperatura ambiente e descartar o sobrenante.
- Lave as células em uma solução de solução cristalina balanceada+ 0,5% HSA a 200-500 × g por 15 min a temperatura ambiente. Resuspennciá-los em um volume-alvo de 100-300 mL de solução cristalina equilibrada + 0,5% HSA.
5. Teste de liberação
- Realizar testes de controle de qualidade da célula γδ T DP para os seguintes: pureza e identidade por citometria de fluxo (Live/Dead, CD45, CD3, TCR αβ, TCR γδ, CD20, CD56, CD16); viabilidade por manchas ao/PI; endotoxina; Teste de mycoplasma por reação em cadeia de polimerase (PCR); esterilidade por manchas gramas e culturas sanguíneas aeróbicas e anaeróbicas; ensaio residual K562 por citometria de fluxo (CD3-CD16-CD56-CD71+).
Resultados
O processo celular γδ T foi caracterizado e otimizado para a produção do produto de célula γδ T. Otimização de processos incluída 1) enriquecimento de linfócitos utilizando elutriação, 2) expansão específica da substância celular γδ T (DS) com ácido zoledrônico, 3) γδ T célula DS esgotamento de TCRαβ, 4) expansão secundária da célula γδ T DS usando aAPCs derivadas de K562, e 5) colheita final de DP e formulação de produto para administração ou criopreservação. Após a otimização do processo, as corridas de confirmação foram realizadas em escala utilizando o material derivado de três doadores saudáveis para confirmar a adequação do processamento celular. Todos os dados foram analisados e estão resumidos na Tabela 1, Tabela 2 e Tabela 3. As células separadas da fração de centrifugação pós-contrafluxo 2 (F2) produziram uma população pura de linfócitos com uma média de 99,23% de células CD45+ (relatada como a frequência do portão vivo total) e excelente viabilidade média de 95,80% (Tabela 1).
A expansão específica das células T γδ com ácido zoledrônico dependia da porcentagem inicial de células assassinas naturais (NK) presentes na fração de linfócito (F2) após a elutriação. O enriquecimento da célula γδ T DS com esgotamento TCRαβ foi consistente (Tabela 2). A célula γδ T DP fabricada a partir de três doadores saudáveis teve uma média de 0,11% ± 0,05% células B CD20+ e 0,00% ± células TCR αβ+ T de 0,00%, atendendo assim ao critério de liberação de ≤1% das células T. O percentual médio de células NK no produto final é de 17,06% ± 26,19% e atende ao critério de liberação de <35%. Além disso, o percentual médio de células T e células NK linhagem-negativa no produto final foi de 0,48% ± 0,42% (Tabela 3). A coloração da superfície celular e a análise citométrica de fluxo foram utilizadas para caracterizar a identidade, pureza e impurezas de processo do DS e DP, conforme mostrado na Figura 2A-D.
A expansão secundária, obtida a partir da cocultura do aAPC (K562CL6(CD3-CD137L:CD28-IL-15RA)) WCB e γδ T cell DS em uma proporção de 10:1, gerou um DP de célula γδ T que atendeu a todos os critérios de liberação, como mostrado na Tabela 4. Além disso, as células foram manchadas e avaliadas por citometria de fluxo nas células F2 do dia 0- contrafluxo, Dia 7-zoledrônico células T expandidas por ácido, Dia 7-TCR αβ T esgotamento celular, Dp dia 17-final para o seguinte conjunto biomarcadores de diferenciação (CD)3, TCRαβ, TCR γδ, CD45RA, CD45RO, receptor de quimioterapia CC 7 (CCR7), proteína de morte celular programada-1 (PD-1), proteína associada ao linfócito T citotóxico 4 (CTLA4), gene ativador de linfócitos 3 (LAG3) e imunoglobulina t celular e proteína contendo domínio de mucina 3 (TIM3). Os dados apresentados na Figura 3 são mediados a partir de três corridas independentes e demonstram que as células não atingiram a exaustão. O CTF Moffitt também desenvolveu um ensaio residual K562 para determinar as impurezas de DP relacionadas aos AAPCs derivados do K562 (Figura 4).
A estratégia de gating citométrica de fluxo utilizada para caracterizar os percentuais dos tipos celulares foi a seguinte: 1) gating na população t e nk linhagem-negativa (CD3-CD56-CD16-); 2) portão em CD71+ (receptor transferrina expresso em linhagem eritróide e LMA permitindo a detecção de células residuais K562). Essa estratégia de gating permitiu a avaliação das células CD3-CD16-CD56-CD71+, que são o aAPC (K562CL6(scFv-CD3-CD137;scFv-CD28-IL15-RA)) WCB (denominado "residual K562" na Figura 4).
Discussão
O Moffit Cell Therapy Lab desenvolveu um protocolo com uma expansão bifásica de células γδ T altamente puras para uso como DP em ensaios clínicos. Este protocolo fornece um método de fabricação sob as diretrizes cGMP em um sistema fechado que produz um DP de células γδ t altamente pura que é ativado e expandido com sucesso por ácido zoledrônico e os aAPCs WCB. Este protocolo foi aprovado pela FDA para a fabricação de um DP aogenético γδ T celular para pacientes com LMA. Usando doadores saudáveis, expandimos com sucesso a pequena população de células γδ T doadoras em apenas 7 dias, de 2,06 ± 0,45% para 54,45 ± 28,34%. Após a expansão de 7 dias com ácido zoledrônico, observou-se que o doador 2 apresentou aumento na população de NK.
O ácido zoledrônico inibe a distease de difosfato de farnésila (FDPS) em monócitos, o que, por sua vez, leva ao acúmulo de pirofosfato isocenil (IPP), que foi correlacionado com um aumento significativo na proliferação de células T e células NK naturais7,8,9. Esse aumento da população de NK dificulta a 2ª fase de expansão com os aAPCs, pois os aAPCs só contribuirão para a expansão das células NK. Por essa razão, os critérios de doadores foram modificados para excluir doadores com altas populações de NK. Após o esgotamento das células αβ T, as células γδ T foram enriquecidas para 76,61 ± 27,51%. Este protocolo único inclui uma segunda expansão utilizando os aAPCs fabricados pelo Moffit para atingir os receptores CD8, CD28 e CD127L nas células γδ T. Esta segunda fase de expansão com os aAPCs rendeu um DP com ≥65% para células T CD3+TCR γδ+, ≤1% TCRαβ T e <35% células CD3-CD16+CD56+ NK. Devido ao uso de aAPCs derivados do K562, foi necessário demonstrar que esses aAPCs constituíam <1% do produto final.
O Moffit CTF desenvolveu um ensaio citométrico de fluxo utilizado para os critérios de liberação para medir o percentual das células residuais K562 no DP final. Este ensaio citométrico de fluxo atenua todas as questões de utilização de antígenos da superfície celular para identificar as células K562. Como as células T ativadas podem expressar CD71, criamos uma estratégia para excluir todas as células T e células NK, gating em populações CD3-CD56 e CD16 e, em seguida, examinando as células CD71+, que seriam exclusivamente células K562. Este protocolo demonstra que a γδ T célula DP produz 0,48 ± 0,42% das células residuais de K562 e atende a todos os critérios de liberação de ≥ 70% de viabilidade, negatividade mycoplasma por PCR, nenhum organismo visto por coloração gramada, ≤2 EU/mL de endotoxina, e nenhum crescimento final (14 dias) de esterilidade da cultura sanguínea.
Divulgações
Os autores não têm conflitos de interesse para divulgar.
Agradecimentos
Agradecemos ao Prêmio de Testes Intramuros do Prêmio de Testes Intramuros do Moffitt Cancer Center por fornecer o financiamento para este desenvolvimento de protocolos. Agradecemos também ao Dr. Claudio Anasetti por sua inestimável ajuda e orientação através deste projeto. Finalmente, agradecemos ao Dr. Justin Boucher por suas ideias e revisão do manuscrito.
Materiais
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Hanks Solução salina balanceada | R & D | 285-GMP | |
| Albumina Humana 25% | Grifolis | 65483-16-071 | |
| Plasmalyte A | Fisher | 2B2543Q | |
| Ácido Zoledrônico (Zometa) | Hos pira | 4215-04--8 | FDA aprovou a droga |
| DMSO | WAK-CHEMIE MEDICAL GMBH | WAK-DMSO-10 | |
| CS10 | BIOLIFE SOLUTIONS | 210374 | |
| 3 mL seringa | BD | 309657 | |
| seringa de 10 mL | BD | 309604 | |
| seringa de 20 mL | BD | 302830 | |
| seringa de 50 mL | BD | 309653 | |
| seringa de 100 mL | JMS | 992861 | |
| 18g Agulha | Fisher | 305198 | |
| Cryovials 1,8 mL | Fisher | 375418 | |
| Pipeta de 5 mL | Fisher | 1367811D | |
| Pipeta de 50 mL | Fisher | 1367610Q | |
| Pipeta de 10 mL | Fisher | 1367811E | |
| Pipeta de 100 mL | Fisher | 07-200-620 | |
| 15 mL cônica | Fisher | 05-539-12 | |
| 50 mL cônica | Fisher | 05-539-7 | |
| 250 mL cônica | Fisher | 430776 | |
| Pacote de Transferência de 600 mL | TERUMO BCT INC | 1BBT060CB71 | |
| Conjunto de Transferência de Plasma de 4" | INDEPENDENT MEDICSL ASSOCIATES | 03-220-90 | |
| Conjunto de Tubulação Elutra | TerumoBCT | 70800 | |
| 100 MCS GREX | WILSON WOLF MFG CORP | 81100-CS | |
| Sistema de dispensação de líquido estéril Pumpmatic Ashton | Fisher Scientific | 22-246660 | |
| Bomba de Acácia bota | MPS Medical In | 17789HP3MLL | |
| CliniMACS PBS/EDTA Buffer | Miltenyi Biotec Inc | 130-070-525 | |
| Dornase Alpha | Genentech, Inc | 50242-100-40/186-0055 | Medicamento aprovado pela FDA |
| 1000 mL 0,22 um Filtro | Fisher | 157-0020 | |
| Filtro de Sangue 170um | B. Braun | V2500 | |
| CliniMACs Conjunto de tubos | Miltenyi Biotec Inc | 130-090-719 | |
| CliniMACS TCRα/β Kit | Miltenyi Biotec Inc | 130-021-301 | |
| Conjunto de sangue tipo Y | Fenwal | FWL4C2498H | |
| 75 mL Frasco | Fisher | 430641U | |
| IL-2 | Prometheus | 65483-116-071 | Medicamento aprovado pela FDA |
| AIM-V | Fisher | 0870112BK | |
| Soro AB humano | Gemini Bioproduto | 100H41T | |
| Pacote de transferência de 3 litros | Independent Medical Associates | T3109 | |
| 1000 pontas de pipeta | Fisher Scientific | 5991040 | |
| CF-250 | KOLBio | CF-250 | |
| Elutra | TERUMOBCT | ||
| CliniMACS | Miltenyi Biotec Inc | ||
| GatheRex Manuseio de Líquidos, Bomba de Colheita de Células | WILSON WOLF MFG Incubadora de | ||
| HERAcell Vios | Thermo Scientific |
Referências
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- Schmid, C., et al. Treatment, risk factors, and outcome of adults with relapsed AML after reduced intensity conditioning for allogeneic stem cell transplantation. Blood. 119 (6), 1599-1606 (2012).
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Reimpressões e permissões
