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Artigo de método

Análise quantitativa da taxa de crescimento de nidulans aspergillus usando microscopia ao vivo e software de código aberto

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DOI:

10.3791/62778

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24 de julho de 2021

Neste artigo

Resumo

Apresentamos um protocolo de imagem ao vivo sem rótulos usando técnicas de microscopia de luz transmitida para capturar imagens, analisar e quantificar a cinética de crescimento do fungo filamentoso A. nidulans em culturas submersas e mídia sólida. Este protocolo pode ser usado em conjunto com microscopia de fluorescência.

Resumo

Está bem estabelecido que o crescimento de fungos filamentosos, principalmente dependentes de mudanças na taxa de crescimento hifa/micáceico, é macroscopicamente estimado em mídia solidificada comparando o tamanho da colônia. No entanto, medir quantitativamente a taxa de crescimento de cepas ou cepas fúngicas geneticamente diferentes sob diferentes condições ambientais/de crescimento (pH, temperatura, fontes de carbono e nitrogênio, antibióticos, etc.) é um desafio. Assim, a busca de abordagens complementares para quantificar a cinética do crescimento torna-se obrigatória para entender melhor o crescimento das células fúngicas. Além disso, é sabido que fungos filamentosos, incluindo aspergillus spp., possuem modos distintos de crescimento e diferenciação sob condições sub-aéreas em mídia sólida ou culturas submersas. Aqui, detalhamos um método microscópico quantitativo para analisar a cinética de crescimento do fungo modelo Aspergillus nidulans, utilizando imagens vivas em culturas submersas e mídia sólida. Capturamos imagens, analisamos e quantificamos as taxas de crescimento de diferentes cepas fúngicas de forma reprodutível e confiável usando um software livre de código aberto para bioimagens (por exemplo, Fiji), de uma forma que não exija qualquer experiência prévia de análise de imagem do usuário.

Introdução

Os fungos filamentosos são de grande importância socioeconômica e ecológica, sendo tanto cruciais quanto ferramentas industriais/agrícolas para a produção de enzimas e antibióticos1,2 e como patógenos de plantas agrícolas3, insetos depragas 4 e humanos3. Além disso, fungos filamentosos como os nidulans Aspergillus são amplamente utilizados como organismos-modelo para pesquisas fundamentais, como estudos em genética, biologia celular e evolutiva, bem como para o estudo da extensão hifal5. Fungos fil....

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Protocolo

1. Preparação inóculo

NOTA: Todas as etapas devem ser executadas sob um gabinete de fluxo laminar.

  1. Estirpe de interesse fúngico, a partir de um estoque de glicerol (-80 °C) utilizando um laço de inoculação estéril, em placas de mídia mínima (MM) complementadas com os requisitos nutricionais adequados relevantes para a cepa examinada [MM: 10,0 g/L de glicose, solução de sal de 20 mL/L (solução de sal: 26 g/L KCl, 26 g/L MgSO4·7H2,O 76 g/L KH2PO4, 2,0 mL/L clorofórmio) e 1 mL/L de traços (elementos de traço: 40 mg/L Na2B4O7· H2O, 400 mg/L CuSO

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Resultados

Seguindo este protocolo, capturamos e analisamos várias imagens correspondentes a diferentes estágios de crescimento/desenvolvimento do fungo filamentoso A. nidulans. Os dados apresentados neste estudo foram processados e analisados utilizando-se o software Fiji. As medições foram salvas como arquivos csv, estatisticamente analisadas e preparadas como gráficos usando software estatístico comercial e/ou linguagem de programação Python usando bibliotecas de software como pandas, numpy, statsmodels, matplotlib e se.......

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Discussão

Monitorar o crescimento e o fenótipo das células fúngicas por microscopia de lapso de tempo é uma abordagem poderosa para avaliar o comportamento celular em tempo real e quantitativamente e com precisão e determinar com precisão se um tratamento medicamentoso específico e/ou intervenção genética resulta em crescimento celular detectável ou diferenças fenotípicas ao longo do tempo.

Neste estudo, foi descrita uma metodologia confiável de imagem de células vivas para medir e analisar quantitativa.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Este trabalho foi parcialmente apoiado pelo projeto "Uma Infraestrutura de Pesquisa Grega para Visualização e Monitoramento de Processos Biológicos Fundamentais (BioImaging-GR)" (MIS 5002755) que é implementado sob a Ação "Reforço da Infraestrutura de Pesquisa e Inovação", financiado pelo Programa Operacional "Competitividade, Empreendedorismo e Inovação" (NSRF 2014-2020) e co-financiado pela Grécia e pela E. U.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
µ-Slide 8 WellIbidi80826Lâminas
de imagem 4-Ácido aminobenzóicoMerckA9878
azhAΔ ngnAΔGenótipo: zhAΔ::p yrGAf; ngnAΔ::p yrGAf; pyroA4 pantoB100 / Referências:Coleção de laboratório, Athanasopoulos et al., 2013
Bacto Casamino ÁcidosGibco223030
BiotinaMerckB4639
ClorofórmioMerck67-66-3
Sulfato de cobre (II) pentahidratadoMerckC8027
GlicoseMerckG8270
GraphPad Prism 8.0SoftwareGraphPad Software Estatístico
ImageJNIHSoftware de processamento e análise
de imagem Inoculating LoopMerckI8263-500EA
Fosfato de ferro(III)Merck1.03935
Leica Application Suite XLeica MicrosystemsSoftware do microscópio
Sulfato de magnésio heptahidratadoMerck63138
Sulfato de manganês (II) monohidratadoMerckM7899
Microscópio Leica TCS SP8Leica Microsystems
Nicotinamida (Niacinamida)Supelco47865-U
PeptonaMillipore68971
Placas de Petri para Cultura MicrobiológicaKISKERG090
Cloreto de potássioMerckP4504
Fosfato de potássio monobásicoMerckP5655
Cloridrato de piridoxinaMerckP6280
Quali - Tubos de microcentrífuga, 1,7 mL, livre de DNase, RNase e pirogênio, estérilKISKERG052-S
Quali - Tubos de Microcentrífuga, 2.0 mL, esterilizadosKISKERG053-S
Quali - Pontas Padrão, Biseladas, 100-1000 µ LKISKERVL004G
Quali - Pontas Padrão, Biseladas, 1-200 µ LKISKERVL700G
Pontas de Microvolume Quali, DNase-, RNase livre, 0,1-10 µ L/clearKISKERGC. DICAS. B
Riboflavina (B2)Supelco47861
Lâminas de bisturi NO. 11OdontoMed2011S2771
Cloreto de sódioMerckS7653
Hidróxido de sódioMerckS8045
Tetraborato de sódio decahidratadoMerckS9640
VS151 (PilA-GFP e H1-mRFP)Genótipo: pyrG89; pilA::sgfp::AfpyrG+ argB2 nkuAΔ::argB+  pyroA4 hhoA::mrfp::Afribo+ riboB2 / Referências:Coleção de laboratório, Biratsi et al., 2021
WTGenótipo: nkuAΔ::argB; pyrG89; pyroA4; pyrG89 / Referências: TN02A3 -FGSC A1149
Extrato de LeveduraMillipore70161
ZnSO4

Referências

  1. Kumar, A. Aspergillus nidulans: A Potential Resource of the Production of the Native and Heterologous Enzymes for Industrial Applications. International Journal of Microbiology. 2020, 8894215(2020).
  2. Kück, U., Bloemendal, S., Teichert, I.

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

Taxa de Crescimento FúngicoCinética de CrescimentoMicroscopia de Lapso de TempoImageJ FijiRastreamento de Pontas HifaisFungos FilamentososMedição do Crescimento da ColôniaAnálise Quantitativa de Imagens