Este protocolo descreve um método eficiente para dissociar a escarro em uma única suspensão celular e a subsequente caracterização de subconjuntos celulares em plataformas citométricas de fluxo padrão.
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Artigo de método
* These authors contributed equally
Este protocolo descreve um método eficiente para dissociar a escarro em uma única suspensão celular e a subsequente caracterização de subconjuntos celulares em plataformas citométricas de fluxo padrão.
O sputum, amplamente utilizado para estudar o conteúdo celular e outras características microambientais para entender a saúde do pulmão, é tradicionalmente analisado por meio de metodologias baseadas em citologia. Sua utilidade é limitada porque a leitura dos slides é demorada e requer pessoal altamente especializado. Além disso, detritos extensos e a presença de muitas células epiteliais escamosas (SECs), ou células da bochecha, muitas vezes torna uma amostra inadequada para o diagnóstico. Em contraste, a citometria de fluxo permite fenotipagem de alto rendimento de populações celulares, excluindo simultaneamente detritos e SECs.
O protocolo aqui apresentado descreve um método eficiente para dissociar a escarro em uma única suspensão celular, mancha de anticorpos e fixar populações celulares, e adquirir amostras em uma plataforma citométrica de fluxo. Uma estratégia de gating que descreve a exclusão de detritos, células mortas (incluindo SECs) e doublets de células é apresentada aqui. Além disso, este trabalho também explica como analisar células de escarro única viáveis baseadas em um aglomerado de diferenciação (CD)45 populações positivas e negativas para caracterizar subconjuntos de linhagem hematopoiética e epitelial. Uma medida de controle de qualidade também é fornecida pela identificação de macrófagos específicos do pulmão como evidência de que uma amostra é derivada do pulmão e não é saliva. Finalmente, foi demonstrado que este método pode ser aplicado a diferentes plataformas citométricas, fornecendo perfis de escarro do mesmo paciente analisado em três citómetros de fluxo; Navios EX, LSR II e Lyric. Além disso, este protocolo pode ser modificado para incluir marcadores celulares adicionais de interesse. Um método para analisar uma amostra de escarro inteira em uma plataforma citométrica de fluxo é apresentado aqui que torna a escarro favorável para o desenvolvimento de diagnósticos de alta produtividade de doenças pulmonares.
Os avanços técnicos no hardware e software de citómetros de fluxo permitiram identificar muitas populações celulares distintas simultaneamente1,2,3,4. A utilização do citómetro de fluxo na pesquisa de células hematopoiéticas, por exemplo, levou a uma compreensão muito melhor do sistema imunológico2 e da hierarquia celular do sistema hematopoiético5, bem como a distinção diagnóstica de uma infinidade de diferentes cânceres sanguíneos6,7,8.
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Todas as etapas do processamento de escarro são realizadas em um gabinete de segurança biológica com equipamentos de proteção individual adequados.
1. Preparação do reagente antes de iniciar a dissociação do escarro
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Este protocolo foi desenvolvido com um ambiente de laboratório clínico em mente. O foco durante o desenvolvimento do protocolo foi a simplicidade, eficiência e reprodutibilidade. Verificou-se que o passo mais demorado no processamento da escarro era contar as células. Portanto, o protocolo é configurado de tal forma que o processamento de escarro e rotulagem celular possam ser realizados independentemente da contagem celular sem perda de tempo. Uma contagem de células precisa, que ainda é necessária para diluir a amostra.......
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O conteúdo celular da escarro inclui uma grande variedade de células amplas, muitas vezes acompanhadas por muitos detritos37. Além disso, a análise da escarro requer um controle de qualidade que confirme que a amostra é coletada do pulmão em vez da cavidade oral38. Portanto, não é tão simples analisar a escarro por citometria de fluxo como é para o sangue, por exemplo, que libera uma suspensão celular muito mais limpa e homogênea. Este protocolo abordou todas essas questões.......
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Todos os autores são funcionários antigos ou atuais da bioAffinity Technologies.
Queremos agradecer a David Rodriguez por sua ajuda com a preparação da figura. As amostras de sputum foram realizadas no BD LSR II no UT Health San Antonio Flow Cytometry Shared Resource Facility, apoiado pela UT Health, NIH-NCI P30 CA054174-20 (CTRC at UT Health) e UL1 TR001120 (bolsa CTSA).
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| 1% Paraformaldeído Flow-Fix | Polysciences | 25037 | |
| 100 µ Filtros de células de nylon M, Falcon #352360 | Fisher Scientific | 08-771-19 | |
| 3 M NaOH | EMD | SX0593-1 | |
| Tubo de falcão cônico de 50 mL | Fisher Scientific | 14-432-22 | |
| Alexa488 anti-humano CD19 | BioLegend | 302219 | |
| Alexa488 anti-humano CD3 | BioLegend | 300415 | |
| Alexa488 anti-citoqueratina humana | BioLegend | 628608 | |
| Alexa488 Isotipo PanCK, CD3 e CD19 | BioLegend | 400129 | |
| BV510 anti-humano CD45 | BioLegend | 304036 | |
| CD66b FITC isotipo | BD Biosciences | 555748 | |
| CompBead Plus Contas de compensação | BD Biosciences | 560497 | |
| Corning Frasco estéril descartável de poliestireno 250 mL | Fisher Scientific | 09-761-4 | |
| Frasco estéril descartável de poliestireno Corning 500 mL | Fisher Scientific | 09-761-10 | |
| CS& Contas em T | BD Biosciences | 655051 | |
| DTT | Fisher Scientific | BP172-5 | |
| FITC anti-humano CD66b | GeneTex | GTX75907 | |
| Mancha de Viabilidade Fixável | BD Biosciences | 564406 | |
| FlowCheck | Beckman Coulter | A69183 | |
| FlowSet | Beckman Coulter | A69184 | |
| HBSS | Fisher Scientific | 14-175-095 | |
| NAC | Sigma-Aldrich | A9165 | |
| NIST Beads, 05 μ M | Polysciences | 64080 | |
| NIST Beads, 20 μ M | Polysciences | 64160 | |
| NIST Beads, 30 μ M | Polysciences | 64170 | |
| PE anti-humano CD45 | BioLegend | 304039 | |
| PE-CF594 anti-humano EpCAM | BD Biosciences | 565399 | |
| PE-CF594 CD206 / EpCAM Isotipo | BD Biosciences | 562292 | |
| PE-CR594 anti-humano CD206 | BD Biosciences | 564063 | |
| Citrato de sódio di-hidratado | EMD | Solução SX0445-1 | |
| Trypan Blue, 0,4% | Fisher Scientific | 15250061 |
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