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Artigo de método

Visualizando mudanças no Circuito Neuron-Glia com a Técnica de Imagem de Cálcio

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DOI:

10.3791/63338

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8 de abril de 2022

Neste artigo

Resumo

A imagem celular de cálcio é uma metodologia versátil para estudar a sinalização dinâmica de células individuais, em populações mistas na cultura ou mesmo em animais despertados, com base na expressão de canais/receptores permeáveis de cálcio que dão assinaturas funcionais únicas.

Resumo

Aqui, relatamos modelos in vitro seletivos de circuitos baseados em glia (astrócitos, oligodendrócitos e microglia) e/ou neurônios de tecidos periféricos (gânglios raiz dorsal) e centrais (córtex, zona subventricular, organoide) que são estudados dinamicamente em termos de mudanças de cálcio. O modelo escolhido para ilustrar os resultados é a retina, um tecido simples com interações celulares complexas. O cálcio é um mensageiro universal envolvido na maioria dos papéis celulares importantes. Explicamos em um protocolo passo-a-passo como as células neuron-glial da retina na cultura podem ser preparadas e avaliadas, imaginando mudanças de cálcio. Neste modelo, diferenciamos neurônios da glia com base em sua resposta seletiva ao KCl e ATP. Receptores e canais permeáveis de cálcio são expressos seletivamente em diferentes compartimentos. Para analisar as respostas de cálcio, usamos mortes fluorescentes racionmétricas como fura-2. Esta sonda quantifica a concentração gratuita de Ca2+ com base em formas ligadas a Ca2+e Ca2+, apresentando dois picos diferentes, fundadas na intensidade de fluorescência percebida em dois comprimentos de onda.

Introdução

Devido às propriedades universais do cálcio como segundo mensageiro, este íon está envolvido em um grande número de atividades de sinalização: transcrição genética, nascimento e morte, proliferação, migração e diferenciação, transmissão sináptica e plasticidade. Assim, um método capaz de rastrear a dinâmica de ativação de cálcio com fidelidade e agilidade forneceria uma maneira de observar respostas espaciais-temporais únicas. Tal método é a técnica de imagem de cálcio celular, que correlaciona dados funcionais de cálcio com fenótipos celulares específicos com base em suas respostas distintas.

As sondas Ca2+ foram desenvolvidas p....

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Protocolo

Todos os experimentos envolvendo animais foram aprovados e realizados seguindo as diretrizes do Comitê Institucional de Cuidado e Uso de Animais da Universidade Federal do Rio de Janeiro, seguindo os "Princípios do Cuidado Animal Laboratorial" (NIH, Bethesda, EUA); permitir o número IBCCF-035 para ovos de galinha leghorn branco fertilizados.

1. Preparação de soluções

  1. Prepare a solução Krebs: (132 mM NaCl, 4 mM KCl, 1,4 mM MgCl2, 2,5 mM CaCl2, 6 mM de glicose, 10 mM HEPES, pH 7.4, 373 mOsm).
  2. Prepare o tampão salino (solução livre Ca2+ e Mg2+ - CMF): 76,55 g/L Na....

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Resultados

Aqui, usamos células de retina na cultura a partir de filhotes embrionários do dia 8 para investigar como neurônios e glia sinal em termos de mudanças de cálcio. As culturas foram preparadas essencialmente como descritas15,19 como células neurônio-glial mistas (a uma densidade de ≥ 1 x 106 célula/prato) em um estágio de 7 dias in vitro (Figura 1A). Alternativamente, células neuronais enriquecidas preparadas em baixa densid.......

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Discussão

Usamos o tecido da retina para mostrar que as respostas de cálcio mediadas por KCl ou ATP são claramente compartimentadas em respostas neuronais e gliais, respectivamente (Figura 1). Embora alguns dados na literatura impliquem que os receptores P2X7 sejam expressos em neurônios, que regulam a atividade neuronal e a liberação de neurotransmissores sinápticos20, outros autores questionam a existência de receptores P2X7 neuronais. De fato, os resultados atuais sustentam .......

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Bolsas, patrocinadores e fontes de financiamento: A MS é beneficiária de uma bolsa de doutorado do CNPq. A HRF é beneficiária de uma bolsa pós-doutorado apoiada pelo CNPq (número de bolsas do HRF 152071/2020-2). O RAMR conta com o apoio do CNPq e da FAPERJ (números de bolsas E-26/202.668/2018, E-26/010.002215/2019, 426342/2018-6 e 312157/2016-9 e INCT-INNT (Instituto Nacional de Neurociências Translacionais).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
lamínula de 15 mmPaul Marienfeld GmbH & Co. KG111550Suporte de célula
Filtro passa-longo de 510 nmCarl Zeiss
ATPSigmaA1852
B-27 SuplementoGibco17504044Suplement
CaCl2Sigma-AldrichC8106
CoolSNAP digital câmeraRoper Scientific, Trenton, NJ
D-(+)-GlucoseNeon1466
DMEM/ F-12Gibco12400-24Meio de cultura de células
Excel SoftwareMicrosoft
Fetal Calf SerumSigma-AldrichF9665Suplement
Fluorescence MicroscopeAxiovert 200; Carl ZeissB 40-080
Fura-2 AMSondas MolecularesF1221Indicador Raciométrico Ca2+
Sulfato de GentamicinaCalbiochem1405-41-0antibióticos
HEPESSigmaH4034
KClSigmaP5405
KH2PO4SigmaP5655
Lambda Aparelho DG-4Sutter Instrument, Novato, CADG-4PLUS/OF30
LamininGibco23017-015Ajuda à adesão celular
Software MetafluorUniversal Imaging Corp. West Chester, PA
MgCl2SigmaM4880
Na2HPO4Vetec129
NaClIsofar310
NaHCO3Vetec306
Plataforma PH3Warner Intruments, Hamden, CT64-0286
Sondas Moleculares Plurônicas F-127P6866não iônicas, surfactante
Poli-L-lisinaSigma-AldrichP8920Ajuda na adesão celular
Tripsina-EDTA 0,25%Gibco25200056enzima de dissociação

Referências

  1. Tsien, R. Y., Pozzan, T., Rink, T. J. Calcium homeostasis in intact lymphocytes: cytoplasmic free calcium monitored with a new, intracellularly trapped fluorescent indicator. Journal of Cell Biology. 94 (2), 325-334 (1982).
  2. Paredes, R. M., Etzler, J. C., Watts, L. T., Zheng, W., Lechleiter, J. D.

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

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