Waiting
Processando Login

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Engineering
Click here for the English version

Engineering

Fabbricazione di chip micro-patterned con spessore controllato per microscopia elettronica criogenica ad alta produttività

Published: April 21, 2022 doi: 10.3791/63739
Automatic Translation
1,2, 3,4, 3,4, 3,4,5,6
1Department of Biomedical-Chemical Engineering, The Catholic University of Korea, 2Department of Biotechnology, The Catholic University of Korea, 3School of Chemical and Biological Engineering, and Institute of Chemical Processes, Seoul National University, 4Center for Nanoparticle Research, Institute of Basic Science (IBS), 5Institute of Engineering Research, College of Engineering, Seoul National University, 6Advanced Institutes of Convergence Technology, Seoul National University

Summary

Un chip micro-modellato di nuova concezione con finestre di ossido di grafene viene fabbricato applicando tecniche di sistema microelettromeccanico, consentendo l'imaging criogenico al microscopio elettronico efficiente e ad alto rendimento di varie biomolecole e nanomateriali.

Abstract

Una delle principali limitazioni per l'analisi efficiente e ad alto rendimento della struttura delle biomolecole utilizzando la microscopia elettronica criogenica (cryo-EM) è la difficoltà di preparare campioni crio-EM con spessore di ghiaccio controllato su scala nanometrica. Il chip a base di silicio (Si), che ha una serie regolare di micro-fori con finestra di ossido di grafene (GO) modellata su un film di nitruro di silicio (SixNy) a spessore controllato, è stato sviluppato applicando tecniche di sistema microelettromeccanico (MEMS). La fotolitografia UV, la deposizione chimica da vapore, l'incisione a umido e a secco del film sottile e la fusione a goccia di materiali nanofogli 2D sono state utilizzate per la produzione di massa dei chip micro-modellati con finestre GO. La profondità dei microfori è regolata per controllare lo spessore del ghiaccio su richiesta, a seconda delle dimensioni del campione per l'analisi crio-EM. L'affinità favorevole di GO verso le biomolecole concentra le biomolecole di interesse all'interno del micro-foro durante la preparazione del campione crio-EM. Il chip micro-modellato con finestre GO consente l'imaging crio-EM ad alto rendimento di varie molecole biologiche e nanomateriali inorganici.

Introduction

La microscopia elettronica criogenica (cryo-EM) è stata sviluppata per risolvere la struttura tridimensionale (3D) delle proteine nel loro stato nativo 1,2,3,4. La tecnica prevede il fissaggio di proteine in uno strato sottile (10-100 nm) di ghiaccio vitreo e l'acquisizione di immagini di proiezione di proteine orientate casualmente utilizzando un microscopio elettronico a trasmissione (TEM), con il campione mantenuto a temperatura di azoto liquido. Migliaia o milioni di immagini di proiezione vengono acquisite e utilizzate per ricostruire una struttura 3D della proteina mediante algoritmi computazionali 5,6. Per un'analisi di successo con crio-EM, la preparazione del criocampione è stata automatizzata congelando a immersione l'apparecchiatura che controlla le condizioni di blotting, l'umidità e la temperatura. La soluzione campione viene caricata su una griglia TEM con una membrana di carbonio bucato, successivamente cancellata per rimuovere la soluzione in eccesso, e quindi congelata a immersione con etano liquido per produrre ghiaccio sottile e vitreo 1,5,6. Con i progressi nella crio-EM e l'automazione della preparazione del campione7, il cryo-EM è stato sempre più utilizzato per risolvere la struttura delle proteine, comprese le proteine dell'involucro per i virus e le proteine del canale ionico nella membrana cellulare 8,9,10. La struttura delle proteine dell'involucro delle particelle virali patogene è importante per comprendere la patologia dell'infezione virale, nonché per sviluppare il sistema di diagnosi e i vaccini, ad esempio SARS-CoV-211, che ha causato la pandemia di COVID-19. Inoltre, le tecniche crio-EM sono state recentemente applicate alle scienze dei materiali, come per l'imaging di materiali sensibili al fascio utilizzati nelle batterie 12,13,14 e nei sistemi catalitici 14,15 e l'analisi della struttura dei materiali inorganici nello stato di soluzione16.

Nonostante i notevoli sviluppi nella crio-EM e nelle tecniche pertinenti, esistono limitazioni nella preparazione del criocampione, ostacolando l'analisi della struttura 3D ad alto rendimento. Preparare un film di ghiaccio vitreo con spessore ottimale è particolarmente importante per ottenere la struttura 3D di materiali biologici con risoluzione atomica. Il ghiaccio deve essere abbastanza sottile da ridurre al minimo il rumore di fondo degli elettroni dispersi dal ghiaccio e da vietare sovrapposizioni di biomolecole lungo il percorso del fascio di elettroni 1,17. Tuttavia, se il ghiaccio è troppo sottile, può causare l'allineamento delle molecole proteiche negli orientamenti preferiti o la denaturazione 18,19,20. Pertanto, lo spessore del ghiaccio vitreo dovrebbe essere ottimizzato in base alle dimensioni del materiale di interesse. Inoltre, è in genere necessario un grande sforzo per la preparazione del campione e lo screening manuale dell'integrità del ghiaccio e delle proteine sulle griglie TEM preparate. Questo processo richiede molto tempo, il che ne ostacola l'efficienza per l'analisi della struttura 3D ad alto rendimento. Pertanto, i miglioramenti nell'affidabilità e nella riproducibilità della preparazione del campione crio-EM migliorerebbero l'utilizzo del crio-EM nella biologia strutturale e nella scoperta di farmaci commerciali, nonché per la scienza dei materiali.

Qui, introduciamo processi di microfabbricazione per la realizzazione di un chip micro-modellato con finestre di ossido di grafene (GO) progettate per crio-EM ad alto rendimento con spessore di ghiaccio controllato21. Il chip micro-modellato è stato fabbricato utilizzando tecniche di sistema microelettromeccanico (MEMS), che possono manipolare la struttura e le dimensioni del chip a seconda degli scopi di imaging. Il chip micro-modellato con finestre GO ha una struttura a micro pozzetto che può essere riempita con la soluzione campione e la profondità del microwell può essere regolata per controllare lo spessore del ghiaccio vitreo. La forte affinità di GO per le biomolecole aumenta la concentrazione di biomolecole per la visualizzazione, migliorando l'efficienza dell'analisi della struttura. Inoltre, il chip micro-modellato è composto da un telaio Si, che fornisce un'elevata stabilità meccanica per la griglia19, rendendolo ideale per la gestione del chip durante le procedure di preparazione del campione e l'imaging crio-EM. Pertanto, un chip micro-modellato con finestre GO fabbricate con tecniche MEMS fornisce affidabilità e riproducibilità della preparazione del campione crio-EM, che può consentire un'analisi della struttura efficiente e ad alto rendimento basata su cryo-EM.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Fabbricazione di chip micro-pattern con finestre GO (Figura 1)

  1. Depositare il nitruro di silicio.
    1. Depositare il nitruro di silicio a basso stress (SixNy) su entrambi i lati del wafer Si (diametro 4 pollici e spessore 100 μm) utilizzando la deposizione chimica da vapore a bassa pressione (LPCVD) a 830 °C e una pressione di 150 mTorr, sotto un flusso di 170 sccm diclorosilano (SiH2Cl2, DCS) e 38 sccm ammoniaca (NH3).
    2. Utilizzando una velocità di deposizione di ~30 Å/min, controllare lo spessore SixNy entro 25-100 nm variando il tempo di deposizione.
      NOTA: Estrema attenzione è necessario prestare attenzione quando si maneggia il wafer Si perché il wafer è molto sottile e fragile. Fare attenzione a non piegare il wafer durante la sua manipolazione o caricamento nell'apparecchiatura.
  2. Modella il fotoresist.
    1. Applicare una soluzione di esametildilazano (HMDS) sul wafer Sidepositatoa Si x Ny con volume sufficiente a coprire l'intera superficie del wafer, girare il rivestimento con una centrifuga a 3.000 giri / min per 30 s e cuocere a 95 ° C per 30 s su una piastra calda per rendere la superficie del wafer idrofoba e quindi garantire una buona prestazione di rivestimento con fotoresist (PR).
    2. Applicare PR (Table of Materials) positivo con un volume sufficiente a coprire l'intera superficie del wafer, girare la mano a 3.000 giri / min per 30 s e cuocere a 100 ° C per 90 s su una piastra calda. Spin-coated PR ha uno spessore di 500 nm.
    3. Esporre il wafer rivestito pr con luce ultravioletta (lunghezza d'onda 365 nm e intensità 20 mW/cm2) per 5 s attraverso una maschera di cromo (Figura 2A-D) utilizzando un allineatore.
    4. Sviluppa il PR per 1 minuto usando uno sviluppatore (Table of Materials) e risciacqua il wafer immergendolo in acqua deionizzata (DI) 2x. Asciugare completamente il wafer con pattern PR soffiando gas N2 sulla superficie del wafer.
      NOTA: Prestare estrema attenzione durante il soffiaggio del gas N2 sul wafer Si perché il wafer è molto sottile e fragile. Non soffiare gas N2 ad alta pressione in una direzione perpendicolare al wafer, in quanto ciò potrebbe causare la frattura del wafer.
  3. Create una serie di valori SixNy.
    1. Incidere il SixNy esposto seguendo il modello del PR utilizzando un'incisore ionica reattiva costruita in laboratorio (RIE), con gas esafluoruro di zolfo (SF6) da 3 sccm a una potenza di radiofrequenza (RF) di 50 W. La velocità di incisione con queste impostazioni è ~ 6 Å / s. Impostare il tempo di incisione in base allo spessore dello strato SixNy depositato.
      NOTA: la velocità di incisione può variare e richiedere un'ottimizzazione in laboratorio a seconda delle specifiche dell'apparecchiatura RIE utilizzata.
    2. Eliminare il PR immergendo il wafer modellato SixNy in acetone a temperatura ambiente per 30 minuti, quindi risciacquando il wafer immergendolo in acqua DI 2x. Asciugare completamente il wafer soffiando gas N2 sulla superficie del wafer.
      NOTA: è necessario prestare estrema attenzione durante l'immersione o l'estrazione del wafer dalle soluzioni perché il wafer può essere fratturato dalla tensione superficiale della soluzione. Non immergere o estrarre il wafer parallelamente alla superficie della soluzione. Utilizzare pinzette di precisione per la gestione dei wafer con punte in fibra di carbonio. Non afferrare con forza il wafer con la pinzetta; sollevare un lato del wafer fino a quando il wafer non si inclina ad angolo, dove può essere estratto dalla soluzione. Il wafer può fratturarsi quando si piega a causa della presa salda durante il sollevamento.
  4. Incidere il Si.
    1. Preparare una soluzione di idrossido di potassio (KOH) da 1,5 M sciogliendo la polvere di KOH in acqua DI a 80 °C.
    2. Immergere il wafer con pattern SixNy in soluzione KOH per incidere il Si esposto. Lasciare il wafer nella soluzione mescolando fino a quando le finestre SixNy indipendenti possono essere osservate sul lato opposto del SixNy modellato.
      NOTA: Il tempo di incisione a umido può variare a seconda dello spessore del Si; per un wafer di 100 μm di spessore, l'incisione a umido richiede normalmente diverse ore. Non impostare la velocità di agitazione troppo alta durante l'incisione Si perché le finestre sixNy indipendenti sono molto sottili e possono essere fratturate dal flusso del fluido. In questo esperimento, la velocità di agitazione è stata impostata su 250 giri / min.
    3. Pulire il wafer inciso immergendolo più volte in un bagno d'acqua DI per eliminare i residui di incisione. Asciugare il wafer all'aria.
      NOTA: è necessario prestare estrema attenzione durante l'immersione o l'estrazione del wafer modellato Si dalle soluzioni perché le finestre sixNy autoportanti sono molto sottili e fragili e possono essere fratturate dalla tensione superficiale della soluzione. Il wafer deve essere immerso o estratto ad angolo, in modo tale che il bordo del wafer entri ed esca prima dalla soluzione.
  5. Eliminare i residui di incisione KOH.
    1. Premere leggermente i bordi dell'array di chip con una pinzetta per ottenere una matrice di chip che saranno micro-modellati (Figura 1B).
    2. Preparare la soluzione koh da 1,5 M a 80 °C mescolando.
    3. Immergere l'array di chip in soluzione KOH per 30 s e risciacquarlo immergendolo in acqua DI 2x. Asciugare completamente i trucioli soffiando gas N2 .
      NOTA: Prestare estrema attenzione durante l'immersione dei trucioli in soluzioni e asciugarli con gas N2 perché le finestre SixNy indipendenti sono molto sottili e fragili. Mentre il chip è immerso nella soluzione KOH, l'agitazione deve essere interrotta. I trucioli devono essere immersi con i loro bordi prima nella direzione perpendicolare alla soluzione e soffiati con gas N2 nella direzione parallela.
    4. Asciugare completamente l'array di chip nell'aria per almeno 1 ora.
  6. Modella il PR.
    1. Preparare un wafer Si vuoto da 525 μm come supporto solido. Rivestire il wafer Si con HMDS e PR positivo, come descritto sopra, ma collegare l'array di chip (con il lato della finestra SixNy indipendente verso l'alto) sul wafer Si prima di cuocere il PR. Il PR funge da adesivo tra il wafer e l'array di chip. Cuocere il wafer Si attaccato con l'array di chip a 100 °C per 90 s su una piastra calda.
    2. Spin coat il chipset con HMDS e PR positivo, come descritto sopra.
    3. Esporre il chipset con luce ultravioletta (lunghezza d'onda 365 nm; intensità 20 mW/cm2) per 5 s attraverso una maschera al cromo (Figura 2E,F) utilizzando un allineatore.
    4. Sviluppa il PR utilizzando uno sviluppatore per 15 s, risciacqua il chipset immergendolo in acqua DI 2x e asciuga completamente il chipset con pattern PR soffiando N2 gas.
  7. Preparare il micro-patterned SixNy.
    1. Etch SixNy seguendo il modello PR utilizzando un RIE costruito in laboratorio, con 3 sccm SF6 gas a potenza RF di 50 W. Controllare il tempo di incisione a seconda dello spessore dello strato SixNy .
  8. Elimina il PR.
    1. Eliminare il PR immergendo il set di chip modellato in soluzione di 1-metil-2-pirrolidinone (NMP) a 60 °C e lasciandolo durante la notte. Risciacquare il chipset immergendolo in acqua DI 2x e asciugare completamente il chipset modellato soffiando N2 gas.
    2. Elimina i residui di PR con un processo al plasma O2 utilizzando gas O2 da 100 sccm a una potenza RF di 150 W per 1 minuto con il RIE costruito in laboratorio.
  9. Risciacquare il chip micro-modellato.
    1. Preparare una soluzione KOH da 1,5 M a 80 °C.
    2. Immergere i chip micro-modellati in soluzione KOH per 30 s per eliminare completamente i residui di PR e risciacquare i trucioli immergendoli in acqua DI 2x. Asciugare completamente i trucioli soffiando gas N2 .
    3. Asciugare completamente i trucioli all'aria per almeno 1 ora.
  10. Trasferire l'ossido di grafene (GO) con il metodo drop-casting.
    1. Diluire la soluzione di GO (2 mg/mL) a 0,2 mg/L con acqua DI e sonicare per 10 minuti per rompere gli aggregati dei fogli di GO. Centrifugare la soluzione GO diluita a 300 x g per 30 s.
    2. Glow scarica il lato inciso Si del chip micro-modellato per rendere la superficie del chip con carica positiva utilizzando uno scaricatore a bagliore (Table of Materials) a 15 mA per 1 min.
    3. Rilasciare 3 μL della soluzione GO sul lato scaricato a bagliore del chip micro-modellato e lasciare la goccia sul chip per 1 minuto. Dopo 1 minuto, asciugare la soluzione GO in eccesso sul chip con carta da filtro.
    4. Lavare il chip trasferito GO con gocce d'acqua DI preparate su pellicola di paraffina e asciugare l'acqua DI sul chip con carta da filtro. Ripetere questa procedura 2x sul lato GO trasferito e 1x sul lato opposto. Asciugare il chip trasferito GO a temperatura ambiente durante la notte.
    5. Lavare il chip micro-modellato con le finestre GO immergendolo nell'acqua DI e asciugare il chip con gas N2 .

2. Imaging crio-EM

  1. Preparare il criocampione.
    1. Preparare il criocampione utilizzando una crioimmergatrice meccanica (Table of Materials), che controlla la temperatura, l'umidità, il tempo di blotting e la forza. Dopo aver caricato il tampone sui blotter, assicurarsi che l'umidità e la temperatura nella camera siano mantenute rispettivamente al 100% e al 15 °C.
    2. Raccogli il chip micro-modellato con una tipica criopenzetta e carica la pinzetta sulla crio-tuffatrice. Pipettare 3 μL di soluzione campione sul chip micro-modellato sul lato a foro, con finestre GO sul fondo. Controllare il tempo di blotting e la forza a seconda della soluzione campione.
      NOTA: Qui, campioni biologici, vale a dire il virus dell'immunodeficienza umana (HIV-1), la ferritina, il proteasoma 26S, il groEL, le particelle proteiche apoferritin e le proteine del filamento tau sono stati utilizzati per l'imaging crio-EM. Inoltre, diversi tipi di materiali inorganici, come le nanoparticelle Fe2O3 (NP), le nanoparticelle Au, le nanobarre Au e le nanoparticelle di silice, sono stati utilizzati per l'imaging crio-EM. Il tempo di blotting e la forza desiderati sono stati impostati sullo stantuffo crio per diversi tipi di campioni.
    3. Dopo il processo di blotting, congelare immediatamente il chip caricato con il campione in etano liquido. Trasferire il chip nella griglia in azoto liquido (LN2) e conservarlo in LN2 prima dell'imaging crio-EM.
  2. Eseguire l'imaging crio-EM.
    1. Caricare il criocampione su un supporto crio-EM con la temperatura mantenuta a -180 °C.
    2. Caricare il supporto crio-EM in un TEM e osservare i campioni con la modalità sistema a dose minima (MDS).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Un chip micro-modellato con finestre GO è stato fabbricato dalla fabbricazione MEMS e dal trasferimento di nanofogli GO 2D. I chip per il micro-patterning sono stati prodotti in serie, con circa 500 chip prodotti da un wafer da 4 pollici (Figura 1B e Figura 2A,B). I disegni dei chip micro-modellati possono essere manipolati utilizzando diversi disegni della maschera al cromo (Figura 2) durante la procedura di fotolitografia. I chip micro-modellati fabbricati avevano numeri e dimensioni controllati di membrane SixNy indipendenti. I numeri delle membrane sixNy indipendenti sono stati controllati da 48 (6 x 8) a 50 (5 x 10) e le dimensioni da 50 x 40 μm2 a 250 x 40 μm2 (Figura 3A, B, F, G). Ogni membrana SixNy autoportante può avere da decine a centinaia di microfori con diametri personalizzabili che vanno da 2-3 μm con diversa spaziatura dei fori. I chip micro-modellati fabbricati hanno fino a ~ 25.000 fori sospesi GO, mentre anche il numero dei fori è controllabile (Figura 3B-D e Figura 3G-I). L'esistenza del sottile strato GO attraverso il foro è stata confermata dalla spettroscopia Raman e dalla diffrazione elettronica. Lo spettro Raman alla finestra GO ha mostrato picchi rappresentativi di GO, vale a dire le bande D e G a 1360 cm-1 e 1590 cm-1, rispettivamente22 (Figura 3E). I modelli di diffrazione esagonale orientati moltiplicati indicano che le finestre sono costituite da GO multistrato (Figura 3J).

Il chip micro-modellato con finestre GO è stato fabbricato in tre profondità target rappresentative (25 nm, 50 nm e 100 nm) controllando lo spessore di deposizione del SixNy sul wafer Si durante il processo LPCVD per confermare la fattibilità della regolazione della profondità dei microfori. Per valutare la struttura e lo spessore dei microfori con finestre GO, sono state ottenute immagini al microscopio elettronico a scansione (SEM) inclinate di 40 ° e sezioni trasversali e immagini al microscopio a forza atomica (AFM) del chip micro-modellato con finestre GO. La struttura ben strutturata del microforo con una finestra GO è stata chiaramente osservata, con la profondità del microforo corrispondente alla profondità target (Figura 4). I risultati confermano che è possibile controllare il numero e il design del chip micro-modellato con finestre GO.

Per dimostrare l'uso del chip micro-modellato per l'imaging crio-EM, sono stati preparati vari crio-campioni di biomolecole e NP inorganiche utilizzando il chip micro-modellato. Per i campioni biologici, HIV-1, ferritina, proteasoma 26S, groEL, particelle proteiche di apoferritina e proteine del filamento tau sono state riprese con crio-EM utilizzando il chip micro-modellato con finestre GO (Figura 5A-F). Oltre alle biomolecole, materiali inorganici come Fe2O3 NP, Au NP, Au nanorods e SILICE NPs sono stati osservati anche da cryo-EM utilizzando chip micro-patterned (Figura 5G-J).

Figure 1
Figura 1: Schemi e immagini della procedura di fabbricazione del chip micro-patterned di nuova concezione con finestre GO per crio-EM. (A) Schemi del processo di fabbricazione e sezioni trasversali del chip micro-modellato con finestre GO durante il processo di fabbricazione. (B) Immagini dei prodotti di fabbricazione in ogni fase di fabbricazione. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 2
Figura 2: Breve illustrazione delle maschere di cromo utilizzate per il processo di fotolitografia. (A,B) Progettazione di maschere per la produzione di massa di chip per un wafer da 4 pollici (24 x 24 array di chip), (C,D) disegni di 2 x 2 array di chip e (E,F) disegni di modelli a microforo. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 3
Figura 3: Struttura dei chip micro-modellati con finestre GO. (A,F) Immagini al microscopio ottico di interi chip micro-modellati, (B,G) immagini SEM di singole membrane SixNy micro-modellate, (C,H) immagini SEM di micro-pattern e (D,I) immagini SEM di singoli microfori con finestre GO. (E,J) Conferma di GO al microforo attraverso (E) lo spettro Raman e (J) il modello di diffrazione elettronica ad area selezionata (SAED) della finestra GO. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 4
Figura 4: Struttura del pozzo e profondità del microforo con finestre GO. (A-C) Immagini SEM inclinate di 40 ° di un singolo microforo con una finestra GO e immagine SEM (D-F) della sezione trasversale del chip micro-modellato con finestre GO in diverse profondità (25 nm, 50 nm e 100 nm). (G) Immagine di rendering 3D al microscopio a forza atomica (AFM), (H) Immagine di deflessione AFM e (I) profilo di linea lungo la linea rossa in (H) che mostra la profondità del chip micro-modellato con finestre GO fabbricate con membrana SixNy da 100 nm. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 5
Figura 5: Immagini crio-EM di biomateriali di varie dimensioni e nanomateriali inorganici utilizzando il chip micro-modellato con finestre GO. (A) Particella virale HIV-1, (B) ferritina, (C) proteasoma 26S, (D) groEL, (E) apoferitina, (F) proteina tau (frecce che indicano la proteina tau fibrillizzata), (G) Fe2O3 NP, (H) Au NP, (I) Au nanorod e (J) silice NP. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Qui vengono introdotti i processi di microfabbricazione per la produzione di chip micro-modellati con finestre GO. Il chip micro-modellato fabbricato è progettato per regolare lo spessore dello strato di ghiaccio vitreo controllando la profondità del microforo con finestre GO a seconda delle dimensioni del materiale da analizzare. Un chip micro-modellato con finestre GO è stato fabbricato utilizzando una serie di tecniche MEMS e un metodo di trasferimento di nanofogli 2D (Figura 1). Il principale vantaggio dell'utilizzo della tecnica di fabbricazione MEMS è la sua capacità per la produzione di massa e la fattibilità di manipolare la struttura e le dimensioni del microchip utilizzando diversi disegni della maschera di cromo durante la fotolitografia (Figura 2). Lo strato SixNy depositato da LPCVD con bassa sollecitazione garantisce la stabilità delle decine di nanometri di spessore siindipendente Si xNy 23,24,25,26. Tuttavia, lo strato sixN y indipendente su scalananometrica è ancora vulnerabile alle forze nella direzione perpendicolare27. Pertanto, è necessaria estrema cautela durante la manipolazione del chip micro-modellato, ad esempio quando si immerge in soluzione o si asciuga. Inoltre, il processo di fabbricazione per il chip micro-modellato utilizza il wafer Si da 100 μm, che garantisce la compatibilità con la maggior parte dei portacampioni crio-EM e dei caricatori automatici. Tuttavia, è necessaria cautela durante i processi di fabbricazione per evitare che il fragile wafer si fratturi.

L'array regolare su scala micron di strutture di tipo pozzo con finestre GO è stato confermato con un microscopio ottico e un SEM (Figura 3 e Figura 4). Inoltre, il metodo di drop casting per il trasferimento di GO consente la deposizione di GO con elevata planarità e senza rughe evidenti (Figura 3D, E, I, J). Il chip micro-modellato è adatto per il caricamento nel caricatore automatico cryo-EM e decine di migliaia di fori su scala micron in un array regolare consentono la raccolta automatica di dati di immagini di grandi dimensioni per l'analisi di singole particelle. Inoltre, il numero e la morfologia delle membrane SixNy e dei microfori supportati da GO possono essere facilmente manipolati nel processo di fabbricazione MEMS, consentendo l'analisi di singole particelle ad alto rendimento e altri esperimenti di imaging crio-EM a seconda degli scopi della ricerca. Inoltre, le applicazioni estese di chip micro-modellati con spessore controllato possono essere facilitate dalla fabbricazione di chip che hanno fori modellati su scala nanometrica. Le tecniche di nano-patterning sviluppate nell'industria dei semiconduttori possono essere adottate nella fabbricazione di quei chip 28,29,30.

La capacità di regolare la profondità dei microfori è stata dimostrata qui fabbricando chip micro-modellati con finestre GO in tre profondità target rappresentative: 25 nm, 50 nm e 100 nm. Diverse profondità della struttura del microwell sono state ottenute controllando il tempo di deposizione dello strato SixNy sul wafer Si (Figura 4). Per valutare la morfologia e lo spessore del chip micro-modellato con finestre GO, sono state osservate sezioni trasversali dei dispositivi ottenuti dal sezionamento a fascio ionico focalizzato (FIB) con SEM e il profilo di profondità è stato misurato con AFM (Figura 4). La struttura del pozzo del microforo con finestra GO è stata chiaramente mostrata nelle immagini SEM e AFM, confermando il successo del controllo della profondità del microforo SixNy e il trasferimento della finestra GO. L'uso del chip micro-modellato personalizzabile con finestre GO è probabile che garantisca un alto tasso di successo nella produzione di regioni di spessore di ghiaccio ottimale per l'imaging crio-EM.

Poiché i materiali da osservare con crio-EM hanno dimensioni diverse, la produzione di ghiaccio vitreo con uno spessore appropriato può garantire una maggiore risoluzione del contrasto, un'ampia copertura di orientamento e una ridotta denaturazione della struttura durante l'imaging crio-EM. Per dimostrare l'uso del processo di imaging crio-EM per applicazioni biologiche, sono stati ripresi vari campioni biologici di diverse dimensioni, tra cui HIV-1, ferritina, proteasoma 26S, groEL, apoferritina e proteina tau, utilizzando il chip micro-modellato con finestre GO. Le biomolecole sono state chiaramente osservate utilizzando il chip micro-modellato con finestre GO (Figura 5A-F). Oltre alle biomolecole, sono stati osservati anche diversi tipi di nanomateriali inorganici, come Fe2O3 NP, Au NP, Au nanorods e NP di silice, utilizzando il chip micro-modellato con finestre GO (Figura 5G-J). Il chip micro-modellato e il metodo di fabbricazione mostrano compatibilità per la crio-imaging di vari materiali. Pertanto, il chip micro-modellato di nuova concezione con finestre GO fornisce una strategia di preparazione del campione affidabile e riproducibile per un'analisi della struttura efficiente e ad alto rendimento con crio-EM.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Gli autori non hanno conflitti di interesse.

Acknowledgments

M.-H.K., S.K., M.L. e J.P. riconoscono il sostegno finanziario dell'Institute for Basic Science (Grant No. IBS-R006-D1). S.K., M.L. e J.P. riconoscono il sostegno finanziario del Creative-Pioneering Researchers Program attraverso la Seoul National University (2021) e la sovvenzione NRF finanziata dal governo coreano (MSIT; Concessione Nos. NRF-2020R1A2C2101871 e NRF-2021M3A9I4022936). M.L. e J.P. riconoscono il sostegno finanziario della POSCO Science Fellowship della POSCO TJ Park Foundation e la sovvenzione NRF finanziata dal governo coreano (MSIT; Concessione n. NRF-2017R1A5A1015365). J.P. riconosce il sostegno finanziario della sovvenzione NRF finanziata dal governo coreano (MSIT; Concessione n. NRF-2020R1A6C101A183) e i programmi di iniziative di ricerca interdisciplinare del College of Engineering e del College of Medicine, Seoul National University (2021). M.-H.K. riconosce il sostegno finanziario della sovvenzione NRF finanziata dal governo coreano (MSIT; Concessione n. NRF-2020R1I1A1A0107416612). Gli autori ringraziano lo staff e l'equipaggio del Seoul National University Center for Macromolecular and Cell Imaging (SNU CMCI) per i loro instancabili sforzi e la perseveranza con gli esperimenti crio-EM. Gli autori ringraziano S. J. Kim del National Center for Inter-university Research Facilities per l'assistenza con gli esperimenti FIB-SEM.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1-methyl-2-pyrrolidinone (NMP) Sigma Aldrich, USA 443778
Acetone
AFM Park Systems, South Korea NX-10
Aligner Midas System, South Korea MDA-600S
AZ 300 MIF developer AZ Electronic Materials USA Corp., USA 184411
Cryo-EM holder Gatan, USA 626 single tilt cryo-EM holder
Cryo-plunging machine Thermo Fisher SCIENTIFIC, USA Vitrobot Mark IV
Focused ion beam-scanning electron microscopy (FIB-SEM) FEI Company, USA Helios NanoLab 650
Glow discharger Ted Pella Inc., USA PELCO easiGlow
Graphene oxide (GO) solution Sigma Aldrich, USA 763705
Hexamethyldisizazne (HMDS), 98+% Alfa Aesar, USA 10226590
Low pressure chemical vapor deposition (LPCVD) Centrotherm, Germany LPCVD E1200
maP1205 positive PR Micro resist technology, Germany A15139
Potassium hydroxide (KOH), flake DAEJUNG CHEMICALS & METALS Co. LTD., South Korea 6597-4400
Raman Spectrometer NOST, South Korea Confocal Micro Raman System HEDA
Reactive ion etcher (RIE) Scientific Engineering, South Korea Lab-built
SEM Carl Zeiss, Germany SUPRA 55VP
Si wafer JP COMMERCE, South Korea 4" Silicon wafer, P(B)type, (100), 1-30ohm.c m, DSP, T:100um
Spin coater Dong Ah Trade Corp., South Korea ACE-200
TEM JEOL, Japan JEM-2100F

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Dillard, R. S., et al. Biological applications at the cutting edge of cryo-electron microscopy. Microscopy and Microanalysis. 24 (4), 406-419 (2018).
  2. Meyerson, J. R., et al. Self-assembled monolayers improve protein distribution on holey carbon cryo-EM supports. Scientific Reports. 4, (2014).
  3. Palovcak, E., et al. A simple and robust procedure for preparing graphene-oxide cryo-EM grids. Journal of Structural Biology. 204 (1), 80-84 (2018).
  4. Xu, B. J., Developments Liu, L. applications, and prospects of cryo-electron microscopy. Protein Science. 29 (4), 872-882 (2020).
  5. Stewart, P. L. Cryo-electron microscopy and cryo-electron tomography of nanoparticles. Wiley Interdisciplinary Reviews-Nanomedicine and Nanobiotechnology. 9 (2), (2017).
  6. Murata, K., Wolf, M. Cryo-electron microscopy for structural analysis of dynamic biological macromolecules. Biochimica Et Biophysica Acta-General Subjects. 1862 (2), 324-334 (2018).
  7. Darrow, M. C., et al. Chameleon: next generation sample preparation for cryoEM based on spotiton. Acta Crystallographica a-Foundation and Advances. 75, 424 (2019).
  8. Hite, R. K., Tao, X., MacKinnon, R. Structural basis for gating the high-conductance Ca2+-activated K+ channel. Nature. 541 (7635), 52-57 (2017).
  9. Zhang, Y., et al. Cryo-EM structure of the activated GLP-1 receptor in complex with a G protein. Nature. 546 (7657), 248-253 (2017).
  10. Shaik, M. M., et al. Structural basis of coreceptor recognition by HIV-1 envelope spike. Nature. 565 (7739), 318-323 (2019).
  11. Liu, C., et al. The architecture of inactivated SARS-CoV-2 with postfusion spikes revealed by cryo-EM and cryo-ET. Structure. 28 (11), 1218-1224 (2020).
  12. Ren, X. C., Zhang, X. Q., Xu, R., Huang, J. Q., Zhang, Q. Analyzing energy materials by cryogenic electron microscopy. Advanced Materials. 32 (24), 1908293 (2020).
  13. Li, Y. Z., et al. Atomic structure of sensitive battery materials and Interfaces revealed by cryo-electron microscopy. Science. 358 (6362), 506-510 (2017).
  14. Li, Y. B., Huang, W., Li, Y. Z., Chiu, W., Cui, Y. Opportunities for cryogenic electron microscopy in materials science and nanoscience. Acs Nano. 14 (8), 9263-9276 (2020).
  15. Kim, Y., et al. Uniform synthesis of palladium species confined in a small-pore zeolite via full ion-exchange investigated by cryogenic electron microscopy. Journal of Materials Chemistry A. 9 (35), 19796-19806 (2021).
  16. Baumgartner, J., et al. Nucleation and growth of magnetite from solution. Nature Materials. 12 (4), 310-314 (2013).
  17. Rice, W. J., et al. Routine determination of ice thickness for cryo-EM grids. Journal of Structural Biology. 204 (1), 38-44 (2018).
  18. D'Imprima, E., et al. Protein denaturation at the air-water interface and how to prevent it. Elife. 8, 42747 (2019).
  19. Alden, N. A., et al. Cryo-EM-on-a-chip: custom-designed substrates for the 3D analysis of macromolecules. Small. 15 (21), 1900918 (2019).
  20. Naydenova, K., Peet, M. J., Russo, C. J. Multifunctional graphene supports for electron cryomicroscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 116 (24), 11718-11724 (2019).
  21. Kang, M. H., et al. Graphene oxide-supported microwell grids for preparing cryo-EM samples with controlled ice thickness. Advanced Materials. 33 (43), 2102991 (2021).
  22. Johra, F. T., Lee, J. W., Jung, W. G. Facile and safe graphene preparation on solution based platform. Journal of Industrial and Engineering Chemistry. 20 (5), 2883-2887 (2014).
  23. Yang, C., Pham, J. Characteristic study of silicon nitride films deposited by LPCVD and PECVD. Silicon. 10 (6), 2561-2567 (2018).
  24. Olson, J. M. Analysis of LPCVD process conditions for the deposition of low stress silicon nitride. Part I: preliminary LPCVD experiments. Materials Science in Semiconductor Processing. 5 (1), 51-60 (2002).
  25. Zheng, B. R., Zhou, C., Wang, Q., Chen, Y. F., Xue, W. Deposition of low stress silicon nitride thin film and its application in surface micromachining device structures. Advances in Materials Science and Engineering. 2013, 835942 (2013).
  26. Chuang, W. H., Fettig, R. K., Ghodssi, R. An electrostatic actuator for fatigue testing of low-stress LPCVD silicon nitride thin films. Sensors and Actuators a-Physical. 121 (2), 557-565 (2005).
  27. Shafikov, A., et al. Strengthening ultrathin Si3N4 membranes by compressive surface stress. Sensors and Actuators a-Physical. 317, 112456 (2021).
  28. Ng, W. H., et al. Controlling and modelling the wetting properties of III-V semiconductor surfaces using re-entrant nanostructures. Scientific Reports. 8, 3544 (2018).
  29. Han, D., et al. Nanopore-templated silver nanoparticle arrays photopolymerized in zero-mode waveguides. Frontiers in Chemistry. 7, 216 (2019).
  30. Escobedo, C. On-chip nanohole array based sensing: a review. Lab Chip. 13, 2445-2463 (2013).

Tags

Ingegneria Numero 182 Microscopio criogenico-elettronico sistemi microelettromeccanici ossido di grafene spessore del ghiaccio vitreo virus proteine nanomateriali
Fabbricazione di chip micro-patterned con spessore controllato per microscopia elettronica criogenica ad alta produttività
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Kang, M. H., Lee, M., Kang, S.,… More

Kang, M. H., Lee, M., Kang, S., Park, J. Fabrication of Micro-Patterned Chip with Controlled Thickness for High-Throughput Cryogenic Electron Microscopy. J. Vis. Exp. (182), e63739, doi:10.3791/63739 (2022).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter