Este estudo apresenta um novo protocolo para aplicar diretamente força mecânica no núcleo celular através de microesferas magnéticas entregues no citoplasma e para realizar imagens fluorescentes simultâneas de células vivas.
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Artigo de método
Este estudo apresenta um novo protocolo para aplicar diretamente força mecânica no núcleo celular através de microesferas magnéticas entregues no citoplasma e para realizar imagens fluorescentes simultâneas de células vivas.
Uma questão fundamental na mecanobiologia é como as células vivas sentem estímulos mecânicos extracelulares no contexto da fisiologia e patologia celular. Acredita-se que a sensação mecano-celular de estímulos mecânicos extracelulares seja através dos receptores de membrana, do complexo proteico associado e do citoesqueleto. Avanços recentes na mecanobiologia demonstram que o núcleo celular no próprio citoplasma pode sentir independentemente estímulos mecânicos simultaneamente. No entanto, falta uma compreensão mecanicista de como o núcleo celular detecta, transduz e responde a estímulos mecânicos, principalmente por causa dos desafios técnicos no acesso e quantificação da mecânica do núcleo por ferramentas convencionais. Este artigo descreve o projeto, fabricação e implementação de um novo atuador de força magnética que aplica estímulos mecânicos 3D precisos e não invasivos para deformar diretamente o núcleo celular. Usando células modificadas por CRISPR/Cas9, este estudo demonstra que esta ferramenta, combinada com imagens fluorescentes confocais de alta resolução, permite a revelação da dinâmica em tempo real de uma proteína associada ao sim (YAP) mecanósquia em células individuais em função da deformação do núcleo. Este método simples tem o potencial de preencher a lacuna tecnológica atual na comunidade de mecanobiologia e fornecer respostas para a lacuna de conhecimento que existe na relação entre a mecanotransdução do núcleo e a função celular.
Este estudo tem como objetivo desenvolver e aplicar uma nova técnica para elucidar a mecanobiologia do núcleo, combinando os atuadores magnéticos que aplicam força mecânica diretamente no núcleo celular e a microscopia de fluorescência confocal que simultaneamente visualiza as alterações estruturais e funcionais subcelulares. As células detectam sinais biofísicos extracelulares, incluindo rigidez tecidual 1,2,3,4, pressão do fluido intersticial e tensão de cisalhamento 5,6,7, topologia/geometria da superfície
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1. Manutenção de células B2B projetadas por CRISPR/Cas9
2. Cultura celular
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Projeto de um dispositivo de movimento magnético e aplicação de força magnética
Para aplicar força no núcleo através das microesferas magnéticas, um dispositivo de movimento magnético foi projetado e construído para controlar a posição espacial do ímã. O dispositivo de movimento magnético contém uma estrutura central, três botões e trilhos para mover o ímã conectado nas direções x, y e z independentemente na resolução espacial de 1,59 mm por ciclo (Figura 1A). Uma vez que.......
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A internalização das microesferas magnéticas (secção 2.2) é crítica porque as microesferas extracelulares não podem aplicar força diretamente ao núcleo. A aplicação de força e a imagem (secção 5.3) são etapas críticas nesta experiência, e a força necessária para deformar o núcleo e induzir consequências biológicas significativas pode ser dependente da amostra. A magnitude da força neste experimento (0,8 nN e 1,4 nN) pode ser aumentada ainda mais para desencadear a detecção de mecano nuclear em células menos sensíveis.
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Não há conflitos de interesse a declarar.
Este projeto é financiado pelo UF Gatorade Award Start-up Package (X. T.), o UFHCC Pilot Award (X. T. e Dr. Dietmar Siemann), UF Opportunity Seed Fund (X. T.) e UFHCC University Scholars Program (H. Y. Wang). Agradecemos sinceramente as discussões intelectuais e o apoio técnico do Dr. Jonathan Licht (UFHCC), Dr. Rolf Renne (UFHCC), Dr. Christopher Vulpe (UFHCC), Dr. Blanka Sharma (BME), Dr. Mark Sheplak (MAE & ECE), Dr. Daniel Ferris (BME), Dr. Malisa Sarntinoranont (MAE), Dr. Ashok Kumar (MAE), Dr. Benjamin Keselowsky (BME), Dr. Brent Gila (RSC), Dr. Philip Feng (ECE), Dr. Gregory A. Hudalla (BME), Dr. Steven Ghivizzani (OSSM), Dr. Yenisel Cruz-Almeida (CDBS), Dr. R....
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| 0,05 % Tripsina | Corning | 25-051-CI | |
| 25 cm2 | frasco Corning | 156340 | |
| 7-µ m microesferas de ferro carbonílico de diâmetro médio | N/A | N/A | |
| A1R sistema confocal | Nikon | ||
| Carbonyl Iron Powder CM | BASF | 30042253 | Meio de cultura de microesferas magnéticas |
| (RPMI-1640) | Gibco | 11875093 | |
| Computador desktop | Dell | com sistema operacional Windows 10 | |
| Câmara ambiental TIZB | Tokai Hit | TIZB | |
| Soro bovino fetal (FBS) | Gibco | 26140 | |
| Fiji ImageJ | Institutos Nacionais de Saúde e o Laboratório de Instrumentação | ||
| Placa de Petri com fundo de vidro | MatTek | P35G-1.5-14-C | |
| Ímã | K& J Magnetics, Inc. | D99-N52 | |
| Monocromático Câmera | FLIR | BFS-U3-70S7M-C | |
| NIS-Elements plataforma | de software Nikon plataforma de software | Máscara | |
| Máscara de https://github.com/KOLIUG/Nuclear macro | |||
| ImageJ NucSpot Live 650 | Biotium | #40082 | Coloração nuclear |
| Penicilina-estreptomicina | Gibco | 15140122 | |
| Tamponado com fosfato solução salina (PBS) | Gibco | 10010023 | |
| Ti2-E microscópio invertido | Nikon | ||
| XYZ mover (arquivos CAD) | https://github.com/KOLIUG/XYZ-mover |
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