É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Fluorescence Lifetime Macro Imager para aplicações biomédicas

1.5K visualizações

⸱

DOI:

10.3791/64321

⸱

7 de abril de 2023

Neste artigo

Resumo

Este artigo descreve o uso de um novo imageador óptico rápido para a imagem macroscópica da vida útil da fotoluminescência de amostras emissoras de decaimento longo. Os procedimentos de integração, aquisição e análise das imagens são descritos, juntamente com a preparação e caracterização dos materiais sensores para a aquisição de imagens e a aplicação do imageador no estudo de amostras biológicas.

Resumo

Este trabalho apresenta um novo imageador de vida útil de fotoluminescência projetado para mapear a concentração de oxigênio molecular (O 2) em diferentes amostras fosforescentes, desde revestimentos sensíveis ao estado sólido do tipo O 2 até amostras de tecido animal vivo coradas com sondas solúveis sensíveis ao O2. Em particular, a sonda de infravermelho próximo NanO2-IR, baseada em nanopartículas, que é excitável com um diodo emissor de luz (LED) de 625 nm e emite a 760 nm, foi usada. O sistema de imagem é baseado na câmera Timepix3 (Tpx3Cam) e no adaptador optomecânico, que também abriga um intensificador de imagem. A microscopia de imagem ao longo da vida da fosforescência (PLIM) do O2 é comumente necessária para vários estudos, mas as plataformas atuais têm limitações em sua precisão, flexibilidade geral e usabilidade.

O sistema apresentado aqui é um imager rápido e altamente sensível, que é construído sobre um sensor óptico integrado e módulo de chip de leitura, Tpx3Cam. É mostrado para produzir sinais de fosforescência de alta intensidade e valores estáveis de vida a partir de amostras de tecido intestinal corados superficialmente ou fragmentos intraluminalmente corados do intestino grosso e permite o mapeamento detalhado dos níveis de tecido O2 em cerca de 20 s ou menos. Experimentos iniciais sobre a imagem de hipóxia em tumores enxertados em animais inconscientes também são apresentados. Também descrevemos como o imageador pode ser reconfigurado para uso com materiais sensíveis ao O2 baseados em corantes Pt-porfirina usando um LED de 390 nm para a excitação e um filtro passa-banda de 650 nm para emissão. Em geral, o imageador PLIM produziu medidas quantitativas precisas dos valores de vida útil das sondas usadas e respectivos mapas bidimensionais da concentração de O2 . Também é útil para a obtenção de imagens metabólicas de modelos teciduais ex vivo e animais vivos.

Introdução

O 2 é um dos principais parâmetros ambientais para sistemas vivos, e o conhecimento da distribuição do O 2 e sua dinâmica é importante para muitos estudos biológicos 1,2,3. A avaliação da oxigenação tecidual por meio de sondas fosforescentes 4,5,6,7,8 e PLIM 9,10,11,12,13 vem ganhando popularidade nas pesquisas biológicas e médicas 3,9,14,15,16

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

Todos os procedimentos com animais foram realizados sob autorizações emitidas pela Health Products Regulatory Authority (HPRA, Irlanda) de acordo com a Diretiva do Conselho das Comunidades Europeias (2010/63/EU) e foram aprovados pelo Comitê de Ética em Experimentação Animal da University College Cork.

1. Preparação da amostra

  1. Coloração com sonda de amostras de tecidos vivos ex vivo
    1. Para aplicações ex vivo , use amostras de tecido recém-isoladas de camundongos Balb/c fêmeas com 4 semanas de idade.
    2. No dia do experimento, eutanasiar um camundongo por decapitação e dissecar rapidam....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

Para aplicações de imagem ex vivo , fragmentos de tecido intestinal foram corados pela aplicação tópica da sonda NanO2-IR no lado seroso do tecido. Para uma coloração mais profunda, 1 μL da sonda foi injetado no lúmen. Neste último caso, a parede intestinal de 0,2-0,25 mm de espessura protegeu a sonda da câmera. Os dois processos de coloração estão demonstrados na Figura 2A.

As imagens resultantes de intensidade e PLIM estão apresentadas na

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

Os protocolos acima fornecem uma descrição detalhada da montagem do novo imageador e seu funcionamento no modo FLIM/PLIM de microssegundos. A câmera Tpx3Cam de nova geração baseada em TCSPC, acoplada por meio do adaptador optomecânico Cricket com o intensificador de imagem, filtro de emissão e macrolente, produz um módulo óptico estável, compacto e flexível que é fácil de operar. O imageador mostrou um bom desempenho com uma variedade de diferentes amostras e tarefas analíticas, que incluíram a caracterização de materiai.......

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Os autores declaram não haver conflitos de interesse.

Agradecimentos

O apoio financeiro para este trabalho da Science Foundation Ireland, subsídios SFI/12/RC/2276_P2, SFI/17/RC-PhD/3484 e 18/SP/3522, e Breakthrough Cancer Research (Precision Oncology Ireland) é reconhecido com gratidão.

....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Peças de LED de 627 nmExpressPode ser substituído por LED diferente com base no comprimento de onda de excitação do sensor. LED de 390 nm usado para corantes de Pt-porfirina.
Filtro de emissão de 760 ± 50 nmEdmund Optics84-788Pode ser substituído por um filtro diferente com base no comprimento de onda de emissão do sensor. Usado 650 ± Filtro passa-banda de 50 nm para corantes de Pt-porfirina.
Camundongos Balb/cEnvigo, UKBalb/c
Caixa pretaThorlabsXE25C9/M
PhotonisCricket-2
células CT26 ATCCCT26. WThttps://www.atcc.org/products/crl-2638
DMEMSigma-AldrichD0697Outras mídias também podem ser usadas
Software ImageJgratuito de análise de imagens. Pode ser baixado de: https://imagej.nih.gov/ij/index.html
intensificador de imagem MCP-125 com tela de fósforo P47PhotonisPP0360EF
Mini pratosSarstedt83.3900.30035 mm de diâmetro 
Filme plástico de Mylar, 75 micron RS Irlanda785-0795Outros substratos plásticos também podem ser usados
NanO2-IRcaseiron/aA sonda pode ser sintetizada de acordo com o método publicado 'Tsytsarev V, Arakawa H, Borisov S, Pumbo E, Erzurumlu RS, Papkovsky DB. Imagem in vivo da atividade do metabolismo cerebral usando uma sonda sensível ao oxigênio fosforescente. J Métodos Neurosci. 15 de junho de 2013; 216(2):146-51. DOI: 10.1016/j.jneumeth.2013.04.005. Epub 2013 25 de abril. PMID: 23624034; PMCID: PMC3719178.' ou fornecido pelo nosso laboratório. 
Lente NMV-50M11" 50 mmNavitarOutras lentes compatíveis com adaptadores de montagem em C podem ser usadas
Placa de ensaio ópticaThorlabsMB1836
Placas de PetriSarstedt82.1472.00192 mm de diâmetro
Fonte de alimentaçãoTenma72-10495
Gerador de pulsosTenmaTGP110
SophyInstrumentos Científicos de Amsterdãn/zFornecido pela ASI junto com o Tpx3Cam
Tpx3CamInstrumentos Científicos de AmsterdãSoftware TPXCAM
Tri2Universidade de Oxfordn/aSoftware de Imagem Resolvida por Tempo Livre, pode ser baixado em: https://users.ox.ac.uk/~atdgroup/index.shtml
Estágio de Tradução XYZThorlabsLT3
Adaptador de críquete Software

Referências

  1. Papkovsky, D. B., Dmitriev, R. I. Imaging of oxygen and hypoxia in cell and tissue samples. Cellular and Molecular Life Sciences. 75 (16), 2963-2980 (2018).
  2. Carreau, A., El Hafny-Rahbi, B., Matejuk, A., Grillon, C., Kieda, C.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Etiquetas

Imagem de Tempo de Vida de FluorescênciaImagem de Tempo de Vida de FosforescênciaMapeamento de OxigênioCâmera Timepix3Modo TCSPCImagem de Tecido AnimalSonda de Oxigênio de NanopartículasIntensificador de ImagemImagem de HipóxiaCorante de Porfirina de Platina