Artigo de método

Extração de DNA e comparação entre amostras de moscas necrófilas antigas e frescas

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DOI:

10.3791/66737

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3 de maio de 2024

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1Hainan Province Tropical Forensic Engineering Research Center, Department of Forensic Medicine, Hainan Medical University, Hainan Provincial Academician Workstation (tropical forensic medicine), 2Hainan Vocational College of Political Science and Law, Hainan Gongping Forensic Center, 3Department of Forensic Medicine, Hebei Medical University

* These authors contributed equally

Neste artigo

Aviso de errata

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Resumo

Este artigo descreve um protocolo para extração de DNA de mosca necrófila fresca e velha usando um kit de extração de DNA comum modificado.

Resumo

Um total de cinco amostras de amostras de Chrysomya megacephala - três amostras frescas, uma amostra armazenada em álcool por 2 anos e uma amostra armazenada em armazenamento selado a seco por 2 anos protegida apenas da luz - foram selecionadas para investigar se um kit de extração de DNA sanguíneo poderia extrair DNA de moscas necrófilas e para determinar se o álcool poderia prolongar a preservação do DNA das moscas necrófilas. Primeiro, o kit de extração de DNA do sangue foi usado para extrair DNA de seus tecidos do tórax. Em seguida, a pureza e a concentração do DNA foram examinadas usando um leitor de microplacas e um fluorômetro. Finalmente, a amplificação por PCR e a eletroforese do DNA extraído foram feitas com primers necrófilos específicos para moscas localizados na sequência mitocondrial do gene CO I. Os resultados mostraram que a pureza do DNA de todas as amostras foi superior a 2,0. Observou-se que a concentração de DNA era da seguinte ordem: amostras frescas > amostras antigas preservadas em álcool > amostras antigas não tratadas. Todas as amostras apresentaram bandas eletroforéticas específicas após a amplificação por PCR. Em conclusão, um kit de extração de DNA sanguíneo pode ser usado para extrair DNA de moscas necrófilas com sucesso, e a concentração de DNA de amostras de moscas frescas é maior do que a de amostras de moscas antigas. As moscas podem ser armazenadas em álcool por muito tempo.

Introdução

A inferência da hora da morte sempre foi uma das questões-chave e difíceis de serem resolvidas na prática judicial. Na prática da ciência forense, para um caso criminal, determinar o intervalo post-mortem desempenha um papel crucial na dedução da hora do crime, prendendo o suspeito e estreitando o escopo da investigação. Os métodos tradicionais de inferir a hora da morte são baseados principalmente em fenômenos post-mortem precoces, que geralmente só podem ser usados para inferir a hora da morte em 24 horas. No entanto, o longo tempo de morte não pode ser determinado por fenômenos post-mortem. Agora é geralmente reconhecido na comunidade de ciências forenses que a entomologia forense tem o potencial de ser um método eficaz de inferir um tempo mais longo de morte.

Os insetos necrófagos são nomeados por suas larvas que se alimentam de cadáveres. Entre eles, sempre que um cadáver estiver presente, as moscas necrófilas adultas serão as primeiras a chegar ao cadáver e colocar seus ovos ou larvas. As larvas se alimentam de tecido do cadáver e amadurecem em pupas, que se transformam em adultos. As moscas necrófilas desempenham um papel importante na prática da ciência forense devido ao seu ciclo de vida regular e distribuição geográfica, por exemplo, deduzindo a hora da morte e determinando o local da morte 1,2. No entanto, a barreira para o uso de moscas necrófilas na prática forense é a identificação de espécies. Os métodos morfológicos ainda são usados como método oficial para a identificação de espécies de moscas necrófilas. No entanto, a identificação morfológica das espécies requer um alto grau de integridade do inseto. Se as moscas estavam em diferentes estágios de desenvolvimento, ou devido a mudanças morfológicas causadas por escolhas ambientais, tudo isso dificulta o exame morfológico. Em particular, a morfologia das pupas e conchas de pupas, que são mais frequentemente encontradas na cena do crime, é quase irreconhecível. Isso, juntamente com a escassez de especialistas morfológicos, dificulta enormemente a identificação morfológica das espécies. Portanto, surgiu a aplicação de métodos de biologia molecular para identificação de espécies de moscas, o que reduz a dificuldade de identificação morfológica e é independente do estágio de desenvolvimento 3,4,5,6,7.

O primeiro passo na identificação de espécies de moscas necrófilas com base em métodos de biologia molecular é a extração eficiente de DNA, enquanto kits especializados para extração de DNA de insetos não estão comumente disponíveis atualmente. E como usar kits de sangue comuns para extração de DNA de moscas necrófilas torna-se mais relevante forense. As moscas necrófilas encontradas em cenas de crime são frequentemente mutiladas ou sofreram decomposição e degradação do DNA. As amostras de moscas não estão imediatamente disponíveis para extração de DNA após a aquisição ou, se possível, amostras completas precisam ser retidas devido aos requisitos de preservação de evidências. Com base nos requisitos acima, neste estudo, aplicamos o kit de DNA sanguíneo baseado na digestão da proteinase K e selecionamos três amostras frescas de Chrysomya megacephala (Diptera, Lepidoptera) (Figura 1), uma amostra antiga de C. megacephala colocada em álcool por dois anos e uma amostra de C. megacephala colocada em armazenamento protegido contra luz por dois anos, pesando cada uma das cinco amostras, elegeu o tecido do tórax do inseto para extração de DNA. Comparando a qualidade e pureza do DNA extraído das amostras antigas e novas, a amplificação por PCR e a eletroforese do DNA extraído foram realizadas com primers necrófilos específicos para moscas localizados na sequência do gene CO figure-introduction-1 mitocondrial.

Protocolo

NOTA: Um total de cinco amostras de amostras de C. megacephala foram usadas neste protocolo - três amostras frescas (Fresh 1, Fresh 2 e Fresh 3), uma amostra armazenada em álcool por 2 anos (Old 1) e uma amostra armazenada em armazenamento selado a seco por 2 anos protegida apenas da luz (Old 2). As amostras devem ser rotuladas de acordo com os requisitos experimentais.

1. Armazenamento e preparações gerais de amostras

  1. Seleção e preparação de amostras
    NOTA: Certifique-se de trabalhar na hotte ao aplicar acetato de etila para executar moscas necrófagas. Remova o líquido da superfície da mosca antes de pesar.
    1. Amostras frescas: Coloque três amostras de moscas coletadas em frascos de gás depois de matá-las com acetato de etila. Pese e nomeie as amostras como Fresh 1, Fresh 2 e Fresh 3 e use-as imediatamente em experimentos.
      NOTA: As amostras de moscas frescas neste protocolo tinham massas de 56,8 mg, 49,3 mg e 52,1 mg.
    2. Amostra antiga 1: Retirar amostras de moscas mortas por acetato de etilo e armazenadas em tubos de centrífuga cheios de álcool durante 2 anos em contenção hermética, protegidas da luz à temperatura ambiente. Pesar a amostra após adsorver o líquido da superfície com papel de filtro; chame-o de Velho 1.
      NOTA: A massa de Old 1 foi de 42,3 mg neste protocolo.
    3. Amostra antiga 2: Retirar a amostra de mosca morta por acetato de etilo e armazenada num tubo de centrifugação durante 2 anos em contenção hermética, protegida da luz à temperatura ambiente. Pese e chame de Velho 2.
  2. Preparação antes da extração
    1. Adicione uma pequena quantidade de nitrogênio líquido para resfriar um recipiente de aço inoxidável; Espere até que todo o nitrogênio líquido tenha evaporado.
    2. Coloque uma amostra de mosca no recipiente; Despeje o nitrogênio líquido lentamente para evitar que o nitrogênio líquido respingue e impacte a amostra de inseto.
    3. Congele as amostras em nitrogênio líquido. Remova as amostras após a evaporação do nitrogênio líquido.
    4. Separe o tórax individualmente, coloque em um tubo de centrífuga de 2 mL e corte nas menores fatias possíveis.
      NOTA: Corte a amostra em pedaços pequenos para que possa ser totalmente clivada e o DNA possa ser liberado em grandes quantidades.
    5. Repita as etapas acima para cada mosca, congele individualmente e remova para um novo tubo de centrífuga para evitar a contaminação cruzada do DNA.

2. Extração de DNA

NOTA: Todas as etapas de centrifugação devem ser realizadas à temperatura ambiente (15-25 °C) em uma microcentrífuga. Todas as etapas devem ser executadas em estrita conformidade com os princípios da assepsia e para evitar contaminação cruzada.

  1. Lise tecidual
    1. Adicione 180 μL de tampão de lise tecidual a um tubo de centrífuga de 2 mL contendo uma amostra cortada.
    2. Adicionar 20 μl de proteinase K. Homogeneizar por vórtice a 3 000 rpm durante 10 s e incubar a 56 °C até que os tecidos dos insectos estejam completamente lisados.
      NOTA: Adicione mais Proteinase K se o tecido não for totalmente digerido. A lise geralmente é concluída em 1-3h, também pode estender o tempo de lise durante a noite.
  2. Precipitação de DNA
    1. Vórtice a 3.000 rpm por 15 s. Adicione 200 μL de tampão de lise à amostra e misture bem por vórtice a 3.000 rpm por 15 s.
    2. Adicione 200 μL de etanol (96-100%) e misture novamente bem por vórtice a 3.000 rpm por 15 s.
      NOTA: O tampão de lise e o etanol podem ser pré-adicionados juntos em uma única etapa para economizar tempo. Um precipitado branco pode se formar com a adição de tampão de lise e etanol.
  3. Pipetar a mistura para a coluna de adsorção de ADN colocada num tubo de colheita de 2 ml. Centrifugue a 6.000 × g por 1 min. Descarte o fluxo e o tubo de coleta.
  4. Coloque a coluna de adsorção de DNA da etapa anterior em um novo tubo de coleta de 2 mL, adicione 500 μL de tampão de remoção de proteína e centrifugue a 6.000 × g por 1 min. Descarte o fluxo e o tubo de coleta.
  5. Transfira a coluna de adsorção de DNA para um novo tubo de coleta de 2 mL, adicione 500 μL de tampão de dessalinização e centrifugue a 20.000 × g por 3 min para secar a membrana da coluna de adsorção de DNA. Descarte o fluxo e o tubo de coleta.
    NOTA: Esta etapa de centrifugação garante a remoção de qualquer etanol residual antes da eluição seguinte. Se houver algum transporte de etanol, centrifugue novamente a 20.000 × g por 1 min.
  6. Coloque a coluna de adsorção de DNA em um tubo de microcentrífuga limpo de 2 mL, pipete diretamente 100 μL de tampão de eluição de DNA na membrana da coluna, incube em temperatura ambiente por 1 min e, em seguida, centrifugue a 6.000 × g por 1 min para eluir.
    NOTA: A eluição com 100 μL (em vez de 200 μL) aumenta a concentração final de DNA no eluato, mas também diminui o rendimento geral do DNA. Para maximizar o rendimento do DNA, repita a eluição uma vez, conforme descrito na etapa 2.8.
  7. Armazene as amostras de DNA a 4 °C (até 1 semana) ou -80 °C para armazenamento de longo prazo.

3. Detecção de concentração de DNA

  1. Determine os valores de OD 260 e OD 280 para comparar a pureza do DNA e a concentração de ácido nucleico pelo leitor de microplacas. Repita três vezes em cada amostra.
  2. Determinar a concentração do ADN extraído por fluorómetro utilizando o seu kit complementar, com três repetições para cada amostra.
    1. Pegue 190 μL de solução de trabalho em dois tubos de centrífuga de 0,5 mL, pegue 10 μL de cada Padrão # 1 e Padrão # 2, adicione-os às soluções de trabalho e mantenha-os longe da luz por pelo menos 15 min.
      NOTA: O padrão # 1 e o padrão # 2 são calibrados com precisão para uma determinada concentração de DNA. As soluções padrão devem ser configuradas com precisão para garantir a formação de uma curva padrão precisa. O padrão # 1 é uma amostra de DNA de fita dupla (dsDNA) de 0,2 ng/μL; o padrão #2 é de 2.000 ng/μL. A solução de trabalho é um corante que se liga especificamente ao dsDNA.
    2. Pegue 2 μL de DNA de teste e misture com 198 μL de solução de trabalho em um tubo de centrífuga de 0,5 mL e mantenha longe da luz por pelo menos 15 min.
      NOTA: Se a concentração de DNA for baixa, adicione 5 μL de DNA de teste com 195 μL de solução de trabalho.
    3. Após 15 min, ligue o instrumento e selecione Medição de concentração de dsDNA | Longo alcance. Primeiro, teste o Padrão #1 e, em seguida, o Padrão #2 para obter a curva padrão.
      NOTA: A solução padrão deve ser usada no mesmo dia após sua configuração; deixá-lo por muito tempo resultará em um grande erro na curva padrão.
    4. Coloque as amostras a serem testadas nos poços de ensaio uma a uma, ajuste o volume de pico de DNA para 2 μL, repita a medição três vezes, pegue o valor médio e registre.

4. PCR e detecção eletroforética

NOTA: A sequência do gene CO figure-protocol-1 mitocondrial com comprimento de 278 pb foi obtida para amplificação por PCR com primer direto C1-J-2495: CAGCTACTTTATGAGCTTTAGG e primer reverso C1-N-2800: CATTTCAAGCTGTGTAAGCATC8 e, em seguida, eletroforese em gel de agarose a 2% feita para verificar o efeito de amplificação e o comprimento dos produtos de amplificação foi verificado.

  1. Configure 20 μL do sistema de amplificação de PCR adicionando 10 μL de mistura 2x Taq, 1 μL de cada primer, 5 μL de ddH2O e 3 μL de DNA molde; Misture bem por 10 s em uma centrífuga.
  2. Use os seguintes parâmetros de ciclagem de PCR: pré-desnaturação 95 °C por 10 min; desnaturação a 95 °C durante 30 s, recozimento a 48 °C durante 30 s, extensão a 72 °C durante 45 s num total de 40 ciclos; e extensão final 72 °C por 10 min.
  3. Submeta os produtos após a PCR à eletroforese em gel de agarose a 2% e, após a eletroforese, coloque-os em um sistema de imagem em gel para análise fotográfica.

Resultados

Utilizamos um leitor de microplacas para medir os valores de OD260 e OD280 da solução de DNA extraída e, em seguida, obtivemos os valores de OD260/OD280 para avaliar a pureza do DNA. O OD260/OD280 de todas as amostras frescas e da amostra antiga 1 foi maior que 2. O OD260/OD280 da antiga amostra 2 teve um valor máximo de 2,187, embora a média tenha sido de 1,753, e suas três medidas flutuaram muito devido aos pequenos valores (≤0,01) de OD280 e OD280 (Tabela 1). Com base no valor de OD260 obtido, estimou-se a concentração de DNA. A concentração de DNA dos três foi da ordem: amostras frescas > amostra antiga 1 > amostra antiga 2, medida usando o leitor de microplacas, mas a diferença entre as amostras frescas e as amostras antigas foi pequena, apenas ~ 10-20 ng / μL (Tabela 1), enquanto a concentração de DNA das três amostras frescas medidas pelo fluorômetro Qubit foi maior do que a medida pelo leitor de microplacas em 125-130 ng / μL, com uma diferença de 15 ng/μL na amostra antiga 1 e apenas 1,3 ng/μL na amostra antiga 2. A concentração de DNA das amostras frescas > amostra antiga 1 > amostra antiga 2 (Tabela 2).

O DNA extraído pelo método de extração usado atualmente contém todos os componentes de DNA de diferentes fontes na amostra. Isso significa que a solução de DNA não era apenas uma solução de DNA genômico de mosca. Os primers para amplificar especificamente fragmentos do gene CO figure-results-1 mitocondrial de moscas foram selecionados por consulta à literatura e verificados pelo NCBI-Blast Primer. Os resultados mostraram que o primer direto C1-J-2495 e o primer reverso C1-N-2800 do gene CO mitocondrial figure-results-2 eram primers específicos para moscas com polimorfismo de sequência e cobriam muitas espécies de moscas. Os resultados da amplificação não mostraram genes humanos. Eles eram um par de biomarcadores de DNA confiáveis para identificação de moscas necrófilas e foram selecionados para a verificação dos resultados deste experimento.

Todas as diferentes amostras mostraram bandas eletroforéticas óbvias com comprimentos variando de 250 pb a 400 pb. As bandas eram mais brilhantes nas amostras frescas do que nas amostras antigas, e as amostras antigas colocadas com álcool (Figura 2, Old1) eram mais brilhantes do que as amostras antigas não tratadas (Figura 2, Old2), mas as amostras antigas também tinham duas bandas em posições diferentes. O controle em branco não tinha bandas (Figura 2).

figure-results-3
Figura 1: Imagens de Chrysomya megacephala de diferentes ângulos. (A) Masculino; (B) feminino. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

figure-results-4
Figura 2: Eletroferograma de produtos de amplificação por PCR. As três primeiras bandas da esquerda são produtos de amplificação de PCR de DNA de amostras frescas de moscas. A quarta banda eletroforética é o produto de PCR do DNA da amostra de mosca velha preservada em álcool. A quinta banda é o produto de PCR do DNA da amostra de mosca antiga sem qualquer preservação especial. A sexta banda é um controle em branco; está limpo, provando que não ocorreu contaminação durante a amplificação da PCR. Na extrema direita está a escada de DNA, onde rotulamos as posições de DNA com comprimentos de 250 pb e 400 pb. As bandas eletroforéticas de todos os produtos de PCR das amostras estavam ligeiramente acima de 250 pb e abaixo de 400 pb. Esta posição corresponde ao comprimento do gene alvo de 278 pb. É mais óbvio a olho nu que as bandas de DNA que representam amostras frescas são mais brilhantes do que as de amostras antigas. As amostras antigas compreendem outras bandas de DNA que estão presentes em genes menos intensos, não-alvo, de diferentes comprimentos. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

AmostraFresco1Fresco2Fresco3Velho1Velho2
OD260/OD2802.354±0.0362,245±0,0272.060±0.0382,143±0,0121.753±0.421
DNA (ng / μL)119,91±1,686116.084±4.96595.239±3.40186.845±6.1410.151±0.168

Tabela 1: Medindo a pureza e concentração do DNA com um leitor de microplacas.

AmostraFresco1Fresco2Fresco3Velho1Velho2
DNA (ng / μL)243.333±1.528237.667±2.082226.000±2.000101.000±0.00011.433±0.058

Tabela 2: Medição da concentração de DNA com um fluorômetro.

Discussão

A extração de DNA é o elo mais crítico na identificação molecular de moscas necrófilas, e seu método de extração e a qualidade do DNA extraído afetam diretamente a detecção subsequente. Neste experimento, extraímos com sucesso o DNA de moscas necrófilas usando um kit de sangue comum, sem a necessidade de comprar um kit especial de extração de DNA de inseto, o que facilita a extração de DNA de inseto.

A superfície das moscas é rica em quitina, principalmente nos estágios larval e pupal, onde a quitina epidérmica pode atingir 60-70%, dificultando a extração de DNA de moscas necrófilas9. Descobrimos durante o processo de extração que, se a amostra estivesse úmida, embora tivéssemos cortado adequadamente a amostra, a amostra permanecia gelatinosa quando a proteinase K era aplicada para digestão. Isso impediu que o líquido adicionado passasse de volta pela coluna de adsorção. Para resolver esse problema, primeiro aplicamos nitrogênio líquido para congelar rapidamente as amostras para tornar as moscas quebradiças e fáceis de moer, além de fáceis de digerir completamente. Se o nitrogênio líquido não estiver disponível para moagem e a eficiência da extração de DNA ainda não tiver sido melhorada, as amostras de moscas podem ser colocadas em uma área ventilada por aproximadamente 48 h. As amostras podem secar antes de serem adequadamente cortadas e, posteriormente, extraídas de DNA.

Considerando que a degradação do DNA de amostras antigas era uma preocupação maior, amostras de tórax de mosca foram selecionadas para extração de DNA neste experimento devido ao alto teor de DNA no tórax. No entanto, o uso do tórax é muito prejudicial à integridade morfológica da mosca para a preservação completa de evidências subsequentes e a necessidade de identificação morfológica. As amostras são difíceis de extrair quando o tórax estava apodrecendo. Se as amostras forem recentes, a extração de DNA do pé e da asa pode ser preferível. O pé e a asa são distribuídos simétrica e bilateralmente, e características morfológicas mais completas podem ser mantidas após a extração do tecido de um lado. No entanto, a concentração de DNA extraído da asa e do pé é relativamente baixa, o que é arriscado para estudos subsequentes. Além disso, as amostras eram pequenas e facilmente perdidas10.

Ao empregar o kit de extração de DNA para extração de DNA, os valores de OD260/OD280 medidos pelo leitor de microplacas foram maiores que 2, exceto para a amostra antiga 2. Primeiro, pode-se determinar que a proteína foi removida mais completamente, mas pode haver contaminação por RNA, quebras de fita dupla de DNA devido à centrifugação repetida ou degradação de DNA nas amostras antigas11. Em segundo lugar, também pode indicar que o álcool prolonga a preservação do RNA.

A concentração de DNA é calculada a partir do valor OD260 do leitor de microplacas, enquanto o fluorômetro Qubit é usado para estabelecer uma curva padrão primeiro e, em seguida, medir o valor de absorbância para calcular a concentração de DNA. Ambos os métodos podem realizar a medição da concentração de DNA traço, mas cada um tem suas vantagens e desvantagens: O leitor de microplacas aplica OD260 para calcular a concentração de DNA, mas seu método de cálculo também é uma estimativa. Se a amostra for misturada com um grande número de nucleotídeos ou proteínas e outras substâncias que podem absorver a luz ultravioleta, o erro fotométrico será maior, por isso devemos tentar removê-los previamente.

Os leitores de microplacas e espectrofotômetros UV usam absorbância UV para detecção, que não consegue distinguir entre DNA, RNA, ácidos nucléicos degradados, nucleotídeos livres e outras impurezas, e a absorbância também é muito afetada pela contaminação de outras substâncias, tornando suas leituras relativamente pouco confiáveis. Durante as amostras de pico, que geralmente são medidas em gotas, as amostras são enriquecidas diretamente sem diluição ou processamento, permitindo a medição simultânea de várias amostras e o cálculo direto da pureza do DNA a partir de medições OD260 / OD280. O fluorômetro Qubit, por outro lado, foi projetado para medir apenas a concentração de DNA de fita dupla, aplicando duas soluções padrão de concentração conhecida para estabelecer uma curva padrão e aplicando as características de corantes fluorescentes que se ligam especificamente ao DNA de fita dupla. No entanto, cada amostra precisa ser pré-tratada individualmente e, em seguida, medida individualmente, o que é complicado para aplicações de amostras em lote, e a pureza do DNA extraído não pode ser medida. Na aplicação específica dos dois podem ser selecionados de acordo com suas próprias necessidades de testes de qualidade do DNA 12,13,14.

A concentração de DNA de amostras frescas foi maior do que a de amostras antigas colocadas em álcool e maior do que a de amostras antigas não tratadas, independentemente de a concentração de DNA ter sido medida por um leitor de microplacas ou um fluorômetro Qubit. Para armazenamento de longo prazo, as amostras podem ser imersas em álcool para evitar o crescimento de bactérias e fungos15,16.

Os diferentes métodos de medição tiveram menos impacto nas medições de DNA de amostras antigas sem qualquer tratamento, provavelmente porque as amostras antigas foram mais degradadas, especialmente proteínas e RNA podem ser degradados mais rapidamente do que o DNA. Em contraste, as amostras frescas apresentaram mais proteína e RNA e, portanto, tiveram um impacto maior nos resultados. Se apenas as concentrações de DNA de fita dupla forem comparadas, devemos usar os resultados do fluorômetro Qubit, e os resultados de nossos experimentos também criaram um gradiente significativo de concentração de DNA nas amostras antigas e novas.

O conteúdo de DNA de amostras frescas e antigas após a extração de DNA pode ser usado para análises de biologia molecular subsequentes. Como neste experimento, os primers selecionados para o gene CO mitocondrial figure-discussion-1 tinham apenas 278 pb, e todos eles puderam ser amplificados com sucesso pelo DNA. O gene mitocondrial CO figure-discussion-2 é, por sua vez, um locus reconhecido em moscas por seu potencial de código de barras de DNA, permitindo assim a identificação de espécies de moscas necrófilas por análise sequencial subsequente17. A biologia molecular de amostras preservadas por mais tempo pode ser alcançada com sucesso selecionando primers para outras sequências de DNA mais curtas. É importante notar que as bandas eletroforéticas das amostras antigas tinham duas bandas com posições diferentes e sequências mais curtas, provavelmente devido à amplificação não específica dos primers causada pela degradação do DNA aliada à baixa temperatura de recozimento.

No entanto, neste experimento, menos amostras foram preservadas por um longo período para satisfazer a necessidade de experimentos repetitivos, enquanto os resultados exigiram apenas amostras representativas. Portanto, não realizamos um teste de repetibilidade, que pode ser exploratório para a preservação de amostras antigas e novas, mas não afeta a extração bem-sucedida de amostras de moscas necrófilas.

Em resumo, o uso de um kit de extração de DNA sanguíneo também pode ajudar na extração de DNA necrófilo de moscas. Amostras antigas e novas podem ser extraídas com sucesso e todo o DNA extraído pode ser usado para análise subsequente. O álcool também é favorável para a preservação a longo prazo de amostras de DNA de moscas.

Divulgações

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Agradecimentos

Este trabalho é apoiado pela Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (82060341,81560304) e pelo Projeto de Pesquisa Científica da Plataforma de Inovação Acadêmica da Província de Hainan (YSPTZX202134).

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Tampão AEQiagen172026832tampão de eluição de DNA
Tampão ALQiagentampão delise
Tampão ATLdelise tecidualQiagen
Tampão AW1Tampão de remoçãode proteína 172028760Qiagen
Tampão AW2Tampão
de dessalinização de 57203108 QiagenC1-J-2495Taihe BiotecnologiaTW21109216forword primer
C1-N-2800Taihe BiotecnologiaTW21109217primer reverso
D2000 Escada de DNAReal-Times(Beijing) BiotechnologyRTM415Meça a posição das bandas eletroforéticas
DNeasy Mini colunaQiagen166050343coluna de adsorção de DNA
Incubadora de banho secoMiulabDKT200-2Dusado para aquecimento
MIX-30S Mini MixerMiulabMUC881206ação oscilatória
Proteinase KQiagen172026218Inativação de nucleases intracelulares e outras proteínas
Qubit 3.0 FluorômetroThermo Fisher Scientific2321611188
Speed Micro-CentrifugeScilogex9013001121centrífuga
Padrão # 1Thermo Fisher Scientific2342797
Padrão # 2Thermo Fisher Scientific2342797
Tanon 3500R Gel ImagerTanon16T5553R-455imagem em gel
Taq Mix ProMonad00007808-140534PCR Mix
Taq Mix ProMonad00007808-140534PCR Mix
Thermo CyclerZhuhai HemaVRB020Asolução de trabalho PCR comum
Thermo Fisher Scientific2342797
172028374 Tampão 172028162 giratória

Referências

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