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Técnicas eficientes para amostragem abrangente de tecidos acessíveis em Xenopus adultos

DOI:

10.3791/68353

June 10th, 2025

In This Article

Summary

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Esta é a primeira parte de um protocolo abrangente de amostragem de Xenopus . Os tecidos amostrados são o ventrículo cardíaco, tronco arterial, lobo esquerdo do fígado, vesícula biliar, pulmão, pâncreas, baço, laringe, esôfago, estômago, intestinos, testículos, corpos adiposos, oviduto, rins pareados, plexo ciático, pele, timo e olho inteiro.

Abstract

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Xenopus tem sido um organismo modelo fundamental para investigar o desenvolvimento e doenças de vertebrados, oferecendo insights profundos sobre processos celulares e função gênica. Apesar da riqueza de informações sobre o Xenopus embrionário, ainda há uma lacuna significativa nos métodos padronizados para amostragem de tecidos adultos, especialmente para abordagens modernas como a proteômica quantitativa. Este estudo apresenta um protocolo abrangente para amostragem rápida, precisa e eficiente de múltiplos tecidos em Xenopus adulto. O protocolo aborda os desafios associados às sutis diferenças anatômicas em comparação com outros anuros, garantindo a reprodutibilidade mesmo para aqueles com experiência limitada em dissecação de rãs. Este protocolo é otimizado para análises bioquímicas de alta qualidade, priorizando o frescor da amostra. Estamos facilitando a coleta rápida de até 18 tecidos em uma hora. Além disso, os métodos se aplicam a condições perfundidas e não perfundidas, proporcionando flexibilidade para uma variedade de necessidades experimentais. Este trabalho não apenas preenche uma lacuna metodológica crítica para Xenopus laevis e tropicalis , mas também serve como um recurso valioso para pesquisadores que adaptam técnicas a modelos de anfíbios semelhantes, aumentando assim o escopo e a confiabilidade de estudos biológicos e evolutivos comparativos.

Introduction

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Xenopus oferece vantagens únicas sobre camundongos, peixes-zebra e outros organismos modelo para estudar doenças humanas, particularmente em contextos de desenvolvimento e evolução. Seu desenvolvimento embrionário externo e embriões grandes e facilmente manipuláveis permitem observação em tempo real e intervenções experimentais (por exemplo, enxerto de tecido, edição de genes) que são desafiadoras em camundongos, que se desenvolvem internamente e requerem procedimentos invasivos. Além disso, o coração de três câmaras e os membros tetrápodes de Xeopus fornecem uma ponte evolutiva mais direta para estudar defeitos cong....

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Protocol

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Todos os experimentos foram aprovados e realizados de acordo com as regras e regulamentos da Harvard Medical School IACUC (Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais IS 00001365_3). Se o protocolo de perfusão13 for seguido antes da amostragem, pule para a etapa 2.3.

1. Preparação (sem perfusão)

  1. Certifique-se de que a instituição de pesquisa aprovou a técnica de eutanásia descrita neste protocolo.
  2. Preparar uma solução de 5 g/L de MS-222 (metanossulfonato de tricaína) e 5 g/L de bicarbonato de sódio (ver Tabela de Materiais). Verifique o pH....

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Results

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Seguindo todas as etapas deste protocolo, o ventrículo cardíaco, o tronco arterial, o lobo do fígado esquerdo, a vesícula biliar, o pulmão, o pâncreas, o baço, a laringe, o esôfago, o estômago, os intestinos, os testículos, os corpos adiposos, o oviduto, os rins pareados, o plexo ciático, a pele, o timo e todo o olho foram excisados de forma limpa dentro de uma hora após a eutanásia (ver Figura 1, Figura 2, Figura 3.......

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Discussion

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O protocolo aqui apresentado foi projetado para fornecer flexibilidade para usuários em vários níveis de experiência, garantindo a coleta de tecidos essenciais de maneira oportuna e eficiente. Novos usuários são aconselhados a seguir cada etapa do protocolo, conforme descrito, para garantir a coleta sistemática de tecidos. Usuários mais experientes, no entanto, podem optar por pular certas etapas e coletar amostras apenas dos tecidos de que precisam. Por exemplo, o acesso ao baço, locali.......

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Disclosures

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Os autores não têm interesses conflitantes a declarar.

Acknowledgements

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Este trabalho foi apoiado pela ODO31956 de concessão OD R24 do NIH. Também gostaríamos de agradecer a Samantha Jalbert e Jill Ralston por sua assistência e apoio.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
1x PBS Corning21-040-CV
5x Lupa com Luz LED e Suporteamazon.comB08QJ6J8P1luz não deve produzir calor
Pipetas de Transferência DescartáveisVWR414004-036
Pinça de Dissecação de Ponta FinaFisher Scientific08-875
Tesoura de dissecação pione afiado, reto 6.5"VWR76457-374
Bandeja de DissecçãoFisher Scientific14-370-284folhas de isopor são uma alternativa aceitável
Recipiente de eutanásiaUS Plastic Item  2860recipientes opacos alternativos aceitáveis
Tampa de recipiente de eutanásiaUS Plastic Item  Tesoura de Iridectomia 3047
6"VWR470018-938tesouras de íris são uma alternativa aceitável
MS-222: Síncaína (anteriormente tricaine)Pentair AESTRS1
5.5 in., Aço InoxidávelFisher ScientificS08100
Bicarbonato de Sódio, Pó, USPFisher Scientific18-606-333
Pinça de amostra, Pinos em T serrilhadosVWR82027-442
para dissecarFisher ScinetificS99385
Pinça de Tecido Dentário de Rato

References

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  1. Duncan, A. R., Khokha, M. K. Xenopus as a model organism for birth defects—Congenital heart disease and heterotaxy. Semin Cell Biol. 51, 73(2016).
  2. Kawasumi-Kita, A., et al. hoxc12/c13 as key regulators for rebooting....

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Xenopus Tissue SamplingAdult XenopusFrog DissectionQuantitative ProteomicsBiochemical AnalysisTissue CollectionAmphibian ModelsComparative BiologyPerfused TissuesReproducible Protocol

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