Os receptores acoplados à proteína G (GPCRs) constituem a maior família de receptores transmembrana, desempenhando um papel crucial na sinalização celular ao transduzir estímulos extracelulares em respostas intracelulares. A ativação do GPCR leva a mudanças conformacionais que permitem interações com proteínas G heterotriméricas. Após a ativação, a subunidade Gα sofre troca GDP-GTP, dissociando-se do dímero Gβγ e desencadeando cascatas de sinalização a jusante. Para estudar a ativação da proteína G mediada por GPCR, os biossensores baseados em transferência de energia de ressonância de bioluminescência (BRET) são uma abordagem altamente sensível e não invasiva. Os sensores de atividade tricistrônica baseados na proteína G (biossensores G-CASE), desenvolvidos por Schihada et al., detectam a dissociação do heterotrímero como um proxy para ativação e permitem o monitoramento em tempo real da atividade do GPCR usando uma única transfecção de plasmídeo, superando as limitações das abordagens de co-transfecção. Os ensaios BRET oferecem várias vantagens em relação às técnicas baseadas em fluorescência, como menor ruído de fundo, fotobranqueamento reduzido e sensibilidade aprimorada. Neste protocolo, os biossensores G-CASE baseados em BRET foram usados em células vivas e placas de 96 poços. Especificamente, avaliamos a atividade do receptor β2-adrenérgico (β2-AR) e do receptor canabinóide tipo 1 (CB1R) em termos de ativação da proteína G. Usando células do tipo selvagem HEK 293T transfectadas transitoriamente com β2-AR e células HEK293T expressando CB1R de forma estável, a robustez dos biossensores Gs e Gi3 G-CASE é confirmada. Este protocolo apóia a utilidade dessa abordagem para estudos farmacológicos e triagem de GPCR de alto rendimento para entender melhor a capacidade dos ligantes de ativar vias específicas, por exemplo, por meio de uma sinalização tendenciosa e, assim, facilitar a descoberta de novos compostos terapêuticos.