Um método cirúrgico para intervenção na estrutura subvalvular por meio de abordagem transaórtica em porcos Bama normais

Summary

Este estudo apresenta um método cirúrgico para intervenção na estrutura da válvula aórtica subvalvular utilizando corte de tecido direcionado via abordagem transaórtica em porcos Bama normais.

Abstract

Anomalias da estrutura subvalvular que levam a alterações no trato de saída ventricular esquerda (LVOT) e hipertrofia miocárdica são características anatômicas características de doenças estruturais cardíacas, como a cardiomiopatia hipertrófica (CMH). Este estudo estabelece um método cirúrgico para intervenção na estrutura subvalvicular aórtica por meio de uma abordagem transaórtica em porcos Bama normais. Os animais foram obtidos de um fornecedor certificado de porcos experimentais em Pequim (Licença nº SCXK (Jing) 2018-0008). Esse método foi validado em três porcas miniatura Bama saudáveis, com idades aproximadas de 33-35 semanas, pesando de 30 a 35 kg no momento da cirurgia. O procedimento envolve esternotomia mediana e incisão na parede anterior da aorta, realizadas sob suporte de bypass cardiopulmonar (CPB), parada cardíaca hipotérmica e visualização direta das regiões LVOT e subvalvular. A tração tecidual direcionada, localização e corte são utilizados para remodelar a estrutura subvalvar.

O processo cirúrgico completo inclui indução anestesica, colocação de cateter venoso central e cateter urinário, desinfecção e revestimento do local cirúrgico, esternotomia mediana, incisão pericárdica e mobilização cardíaca. A CPB é estabelecida por drenagem do atrio esquerdo e perfusão do seio coronário retrógrado. Após uma incisão na parede aórtica anterior, o ventrículo esquerdo é acessado através da válvula aórtica, e a intervenção no tecido subvalvular é realizada em caso de parada cardíaca. O procedimento termina com fechamento aórtico, retomada cardíaca do batimento acelerado, retirada da CPB e fechamento torácico. Durante todo o procedimento, a estabilidade hemodinâmica foi mantida e o animal permaneceu em boas condições, sem mortalidade intraoperatória. Após a cirurgia, as superfícies cortadas ficaram lisas e as estruturas ao redor permaneceram intactas.

Esse método demonstra alta reprodutibilidade e controlabilidade procedimental, fornecendo um modelo de intervenção cirúrgica estável para estudar a intervenção da estrutura subvalvular. Também oferece uma plataforma técnica para conduzir análises histológicas, validação cirúrgica e avaliação de estratégias de intervenção.

Introduction

Anomalias nas estruturas subvalvulares do ventrículo esquerdo desempenham um papel crucial em várias doenças cardiovasculares, especialmente em pacientes com cardiomiopatia hipertrófica (HCM), onde anomalias subvalvulares contribuem para obstrução do trato de saída ventricular esquerda (LVOT) e hipertrofia do septo^{interventricicular 1}. Essas mudanças estruturais não apenas prejudicam o preenchimento e a ejeção ventricular, mas também podem levar a complicações graves, como arritmias ventriculares, morte súbita cardíaca e insuficiência cardíaca^{crônica 2}. Clinicamente, a resseção cirúrgica transaórtica dos tecidos ventriculares esquerdos é frequentemente empregada nesses pacientes para aliviar a obstrução da LVOT e melhorar o^{prognóstico 3}. No entanto, apenas alguns poucos estudos investigaram sistematicamente as mudanças fisiológicas e os processos de remodelação ventricular após essa intervenção cirúrgica, limitando sua aplicação em pesquisa básica e desenvolvimento terapêutico translacional.

Diversos modelos animais têm sido amplamente empregados para estudar mudanças estruturais subvalvulares e estratégias de intervenção. Esses modelos contribuíram significativamente para a compreensão dos mecanismos moleculares e teciduais; no entanto, eles apresentam limitações notáveis na simulação de procedimentos cirúrgicos cardíacos clínicos, especialmente na obtenção de exposição precisa e corte de tecido direcionado do ventrículo esquerdo. Problemas como distorção anatômica, precisão cirúrgica insuficiente e amostragem limitada de tecidos permanecem 4,5,6,7. Essas deficiências dificultam a aplicação mais ampla desses modelos em pesquisas sobre mecanismos de intervenção cirúrgica, intervenção estrutural pós-operatória e avaliação de biomateriais.

Nos últimos anos, modelos animais que simulam intervenção na estrutura subvalvicular do ventrículo esquerdo por meio de abordagem transaórtica permaneceram extremamente limitados. Os estudos existentes são principalmente restritos a modificações das técnicas cirúrgicas atuais, tentando intervir em estruturas localizadas do tecido ventricular por meio de vias minimamente invasivas ou métodos baseados em energia. No entanto, essas abordagens diferem significativamente das práticas cirúrgicas clínicas em termos de vias cirúrgicas, condições cardíacas intraoperatórias e estratégias de intervenção tecidual, dificultando a reprodução precisa das respostas estruturais, hemodinâmicas, de reperfusão e mecânicas induzidas pelas intervenções^{cirúrgicas 8,9}. Portanto, neste estudo, estabelecemos um modelo cirúrgico reprodutível de grande porte animal realizando uma esternotomia mediana e uma incisão na parede da aorta anterior sob suporte de bypass cardiopulmonar (CPB) em porcos Bama normais. Esse modelo permite a exposição direta do trato de saída do ventriculo esquerdo e da região subvalvular, seguida por cortes de tecido controlados para promover a intervenção da estrutura subvalvular, fornecendo uma plataforma clinicamente relevante para pesquisas futuras.

Especificamente, esse modelo foi projetado para replicar a via procedimental e o ambiente operatório da miectomia transaórtica clínica do septo transaórtico usada em pacientes com cardiomiopatia obstrutiva hipertrófica (HOCM). Não se destina a recapitular a fisiopatologia da MCO nem servir como modelo de doença, mas sim a reproduzir as condições operacionais sob as quais a intervenção subvalvular é realizada.

Esse modelo serve como uma estrutura cirúrgica padronizada para estudar intervenções estruturais subvalvulares, avaliar novos dispositivos cirúrgicos cardíacos e fornecer uma plataforma de treinamento reprodutível para cirurgia cardíaca experimental, incluindo treinamento cirúrgico em exposição transaórtica a LVOT e resseção subvalvular controlada, bem como estudos agudos em nível de tecido e histológicos após intervenções estruturais definidas.

Protocol

Todos os procedimentos com animais foram aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidado e Uso Animal (IACUC) da Academia Chinesa de Ciências Médicas do Hospital Fuwai, sob o número de aprovação 0106-1-20-ZX(X)-21. Todos os experimentos foram conduzidos de acordo com as diretrizes do ARRIVE e o Guia dos Institutos Nacionais de Saúde para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório. Os animais eram alojados sob condições ambientais padrão (temperatura 20-26 °C, umidade 40-60%, ciclo de 12 horas luz/escuro) com livre acesso a alimento e água.

1. Preparação experimental de animais

1. Obtenha porcos miniatura adultos normais de Bama de um fornecedor experimental certificado em Pequim (Licença nº SCXK (Jing) 2018-0008).
   NOTA: Este método foi validado em três porcas miniatura Bama saudáveis, com idades aproximadas de 33-35 semanas, pesando entre 30 e 35 kg no momento da cirurgia.
2. Aloje os animais em um ambiente padrão de barreira por pelo menos 7 dias antes da cirurgia para aclimatação, sob temperatura controlada (20-26 °C), umidade (40-60%) e um ciclo de 12 horas luz/escuro, com acesso livre a comida e água.
3. Realize uma avaliação abrangente de saúde 24 horas antes da cirurgia, incluindo avaliação do estado mental, apetite, características fecais, integridade da pele, marcha e condição respiratória.
4. Retenha a alimentação por 12 horas e a água por 4 horas pré-operatórias para reduzir o risco de aspiração durante a anestesia.
5. Preencha a medição do peso corporal e o registro de identificação antes da cirurgia, além de registrar sinais vitais de base.
6. No dia da cirurgia, transferir os animais para a área de cirurgia para estabelecimento de acesso intravenoso e preparação para indução da anestesia.

2. Preparação pré-operatória

1. Estabelecimento de acesso venoso auricular
   1. Antes da indução da anestesia, estabeleça o acesso venoso pela veia auricular marginal da seguinte forma:
      1. Aplique uma pressão suave na porção proximal da veia auricular marginal para permitir o preenchimento venoso. Usando um cateter intravenoso 22-G (22 GA × 1,00 pol; 0,8 × 25 mm), insira a agulha ao longo do curso do vaso, do distal em direção ao proximal.
      2. Ao observar o retorno do sangue, retire o estilete e avance o cateter totalmente para dentro da veia. Remova o núcleo da agulha, conecte uma torneira de três vias e injete uma pequena quantidade de soro estéril para confirmar a permeabilidade.
      3. Confirme que não há protuberância subcutânea e que a infusão ocorreu bem, então fixe a torneira com fita adesiva para estabilizar o cateter.
2. Anestesia
   ATENÇÃO: Verifique a profundidade adequada da anestesia e a perda de reflexos antes de realizar qualquer procedimento invasivo para prevenir estresse ou dor.
   1. Induza anestesia injetando solução de propofol a 1% pela veia auricular em doses de 2-4 mg/kg. Quando o animal perde a capacidade de ficar em pé, apresenta consciência reduzida e desmaia, transfere-o imediatamente para o centro da mesa de operações.
   2. Posicione o animal em posição supina e prenda os quatro membros aos lados da mesa de cirurgia usando tiras de contenção. Coloque almofadas macias sob as costas e pescoço para evitar lesões por compressão.
   3. Após confirmar a inconsciência, administre fentanil (3-5 μg/kg) por via intravenosa para analgesia, seguido de atracúrio (0,2 mg/kg) para relaxamento muscular.
   4. Realize a intubação endotraqueal expondo a glote com um laringoscópio. Insira um tubo endotraqueal com manguito de tamanho adequado (diâmetro interno recomendado 6,5-7,5 mm) na traqueia e avance-o para o segmento torácico para evitar a oclusão do brônquio craniano direito.
   5. Conecte o tubo a um ventilador mecânico. Ajuste o ventilador para um volume de maré de 10-12 mL/kg, uma frequência respiratória de 12-16 respirações/min,_{FiO 2} 100% e uma razão I:E de 1:2. Confirme a ventilação pulmonar bilateral antes de fixar o tubo endotraqueal.
   6. Mantenha a anestesia durante a cirurgia usando infusão intravenosa contínua de propofol (6-10 mg/kg/h). Ajuste a dosagem de fentanil de acordo com os sinais vitais do animal.
   7. Monitore continuamente o eletrocardiograma (ECG), pressão arterial (BP), saturação de oxigênio (_{SpO 2}) e temperatura corporal (Temperatura).
   8. Mantenha a temperatura corporal em 37 ± 0,5 °C para reduzir a demanda metabólica e garantir proteção miocárdica durante o bypass cardiopulmonar. Mantenha_{SpO 2}≥ 95% e mantenha a pressão arterial dentro de uma faixa fisiológica estável.
3. Preparação cirúrgica da mão
   1. Realize antissepse cirúrgica padrão da mão conforme o protocolo institucional. Após lavar as mãos, seque as mans com toalhas cirúrgicas estéreis antes de colocar as luvas estéreis.
4. Cateterismo venoso central sob orientação por guiamento por fio guia
   ATENÇÃO: Mantenha uma técnica asséptica rigorosa durante o cateterismo. Manuseie agulhas e fios-guia com cuidado para evitar ferimentos acidentais.
   1. Selecione a veia jugular externa direita para acesso venoso. Desinfete bem a área da pele local e injete 5 mL de lidocaína a 2% por via subcutânea para obter anestesia local.
   2. Conecte a agulha de perfuração a uma seringa e insira a agulha em um ângulo de 20-30° ao longo do curso da veia jugular em direção à direção craniana.
   3. Avance a agulha lentamente enquanto aspira continuamente até que o retorno venoso do sangue seja observado. Insira um fio-guia suavemente no lumen do vaso através da agulha. Estabilize o fio-guia e retire a agulha com cuidado. Avance um dilatador sobre o fio-guia para expandir o trajeto de perfuração, depois remova o dilatador.
   4. Insira um cateter venoso central sobre o fio-guia na veia. Avance o cateter para uma profundidade de aproximadamente 10-15 cm, garantindo que a ponta do cateter esteja posicionada dentro da veia cava craniana sem entrar no átrio direito para evitar interferência na oclusão cardíaca intraoperatória.
   5. Remova o fio-guia. Confirme a permeabilidade de cada lúmen por aspiração. Lave cada lúmen com soro fisiológico heparinizado (50 UI/mL) e trave o cateter usando a mesma solução para manter a permeabilidade.
   6. Fixe o cateter com pontos estéreis. Aplique um curativo estéril transparente sobre o local da perfuração. Rotule claramente a função do lúmen e a profundidade de inserção do cateter.
5. Cateterismo urinário
   1. Após a indução e posicionamento da anestesia, desinfete a área perineal usando algodão estéreis embebidas em solução de povidona-iodo e deixe secar naturalmente. Coloque uma cortina estéril sobre a área ao redor, expondo apenas o orifício uretral. Use apenas porcas fêmeas para facilitar a cateterização uretral.
   2. Em condições estéreis, abra um kit de cateter Foley. Use luvas estéreis, lubrifique a ponta do cateter e insira-a suavemente na uretra. Uma vez observado o fluxo de urina, avance o cateter mais 1-2 cm. Injete água destilada estéril no balão do cateter para fixá-lo no lugar. Aplique uma tração suave para confirmar a fixação.
   3. Conecte o cateter a uma bolsa de drenagem fechada. Fixe o tubo na cauda ou na lateral da mesa de operação com fita adesiva para evitar tensão ou contaminação. Registre o momento da inserção do cateter e os detalhes do procedimento. Durante a cirurgia, monitore continuamente a produção de urina e a permeabilidade de drenagem.
6. Drapeamento e estabelecimento do campo cirúrgico estéril
   1. Realizar novamente a antissepsia cirúrgica da mão de acordo com os padrões clínicos. Após a secagem, volte à mesa de operações.
   2. Colabore com o assistente para cobrir o campo cirúrgico. Primeiro, coloque pequenas cortinas estéreis e prenda-as com grampos de toalha. Depois, coloque cortinas de tamanho médio, cobrindo o corpo, exceto a região operadora.
   3. Certifique-se de que a área exposta se estenda do manúbrio do esterno até o processo xifoide, com aproximadamente 20-25 cm de comprimento e 10-12 cm de largura, incluindo o esterno médio e as margens costais bilaterais.
   4. Após o drapeado, realize novamente antisepsia rápida na mão. Vista aventais cirúrgicos estéreis e luvas com a ajuda da enfermeira. Coloque uma grande cortina estéril com fenestração, garantindo que apenas a área da incisão fique exposta enquanto todas as outras regiões permaneçam totalmente cobertas. Alinhe a fenestração com o centro da incisão e assegure as margens para evitar vazamento de líquido, completando assim o estabelecimento do campo cirúrgico estéril.

3. Exposição e mobilização cardíaca

1. Exposição à cavidade torácica
   ATENÇÃO: Proteja as mãos e os olhos do operador durante a esternotomia. Certifique-se de que o retrator seja aplicado lentamente para evitar rasgos de tecido ou fraturas ósseas.
   1. Faça uma incisão na linha média ao longo do esterno, estendendo-se da incisura supraesternal até aproximadamente 2 cm abaixo do processo xifoide, utilizando um bisturi cirúrgico para incisar a pele e os tecidos subcutâneos. Mantenha um comprimento de incisão de aproximadamente 20 cm.
   2. Use um dispositivo de eletrocauterização para separar os músculos peitorais maiores e o periósteo do esterno, expondo totalmente a superfície anterior do esterno.
   3. Retraa suavemente os tecidos laterais com a ajuda de um assistente para manter o campo cirúrgico limpo.
   4. Após expor o esterno, insira uma faca de Lebsche sob o processo xifoide e aplique tração para cima.
   5. Usando um pequeno martelo, bata cuidadosamente e uniformemente na extremidade proximal da faca de Lebsche para dividir gradualmente o esterno ao longo da linha média, avançando de forma craniana até que a cavidade torácica seja aberta.
   6. Mantenha tração contínua para cima durante todo o processo para evitar desvios ou lesões no pericárdio. Após concluir a divisão esternal, coloque um retrator de costelas Finochietto e expanda lentamente a cavidade torácica bilateralmente para ampliar o campo operatório. Evite retração excessiva para evitar lesões pleurais ou fraturas nas costelas.
2. Mobilização cardíaca
   1. Identifique o percurso dos nervos frênicos bilaterais que percorrem as superfícies laterais do pericárdio (Figura 1A).
   2. Incire a margem superior do pericárdio e estender a incisão paralela ao eixo longo do animal, mantendo-a próxima à linha média para minimizar o risco de lesão nervosa (Figura 1B).
   3. Realize dissecação contundente bilateralmente para separar o pericárdio da pleura mediastinar e dos tecidos conjuntivos adjacentes.
   4. Após concluir a dissecação, exponha o coração sob visualização direta. Confirme a identificação clara das principais estruturas anatômicas, incluindo a aorta, artéria pulmonar, apêndice auricular esquerdo, ápice cardíaco e seio coronário.
3. Estabelecimento do bypass cardiopulmonar (CPB)
   ATENÇÃO: Certifique-se de que todas as conexões do circuito CPB estejam seguras e devidamente aterradas. Manuseie dispositivos elétricos e de perfusão com cuidado para evitar vazamentos ou choques elétricos.
   1. Após obter exposição cardíaca adequada, coloque um ponto de cordão na base do apêndice auricular esquerdo. Faça uma pequena incisão dentro do laço do ponto e insira uma cânula de drenagem venosa obliquamente para baixo ao longo do eixo do apêndice auricular esquerdo para estabelecer o caminho de retorno venoso para o bypass cardiopulmonar.
   2. Avance a cânula aproximadamente 3-4 cm para garantir que sua ponta entre na cavidade auricular esquerda. Fixe a cânula ao apêndice auricular usando pontos de seda para evitar escorregamento ou vazamento.
   3. Coloque um ponto de cordão de bolsa na entrada do seio coronário. Crie uma pequena incisão dentro do laço do ponto e insira uma cânula de perfusão para servir como via de entrada para a entrega de cardioplegia e perfusão miocárdica.
   4. Avance a cânula de perfusão aproximadamente 1-2 cm para dentro do seio coronário. Prenda-a com pontos de seda para garantir uma posição estável.
   5. Conecte todas as cânulas à máquina de bypass cardiopulmonar. Prepare o circuito com uma mistura de 800 mL de solução de Ringer lactada, 1.000 mL de solução de gelatina succinilada e 2 mL de heparina. Desaree o circuito completamente e realize um teste de pressão para confirmar a estabilidade.
   6. Monitore continuamente os parâmetros de perfusão e a taxa de fluxo durante todo o procedimento, e mantenha o tempo de coagulação ativada (ACT) acima de 480 s por heparinização sistêmica.
   7. Ative a bomba de retorno venosa para iniciar a drenagem venosa parcial. Abra gradualmente a bomba arterial para manter a pressão de perfusão entre 60-80 mmHg. Confirme que não há vazamento e que o fluxo do circuito está livre antes de iniciar o bypass cardiopulmonar completo.
   8. Após atingir a CPB estável, infunda lentamente uma solução resfriada de cardioplegia rica em potássio pelo seio coronário. Observe o enfraquecimento progressivo das contrações cardíacas até ocorrer uma parada cardíaca completa e o eletrocardiograma (ECG) mostrar uma linha plana. Registre o horário da parada cardíaca.
   9. Certifique-se de que a parada eletromecânica completa e o resfriamento adequado do miocárdio sejam alcançados antes de iniciar a intervenção subvalvular. Inicie a manipulação do tecido somente após confirmar a ausência de contrações ventriculares e um estado de parada estável.
   10. Neste protocolo, administre uma cardioplegia em dose única suficiente para manter a parada do miocárdio durante todo o período de intervenção subvalvular. A redosagem não é rotineiramente necessária devido à duração relativamente curta da pinça cruzada aórtica (aproximadamente 30-40 min).
   11. Aplique gelo congelado pré-preparado sobre a superfície cardíaca para reduzir ainda mais a temperatura do miocárdio, diminuir a demanda metabólica e melhorar a proteção do miocárdio.

4. Exposição do ventrículo esquerdo e intervenção na estrutura subvalvicular via acesso aórtico

ATENÇÃO: Manuseie cuidadosamente instrumentos afiados e tesouras durante incisões aórticas e cortes de tecido. Evite tração excessiva que possa danificar as estruturas ao redor.

1. Após alcançar a parada cardioplégica e a proteção contra hipotermia, faça uma incisão transversal de aproximadamente 1,0-1,5 cm de comprimento na parede anterior da aorta ascendente, localizada aproximadamente 1,5-2,0 cm acima do anel da válvula aórtica e orientada perpendicularmente ao eixo longo da aorta.
2. Insira dois ganchos curvos em folha na incisão aórtica, respectivamente, dos lados dorsal e ventral esquerdo. Retraa suavemente a incisão lateralmente para abrir a raiz aórtica e expandir o campo cirúrgico (Figura 2A).
3. Introduza um suporte de agulha carregando um ponto de tração pré-carregado no campo operatório. Coloque a sutura no tecido subvalvular alvo para facilitar a tração intraoperatória e a localização precisa.
4. Avance as pequenas tesouras curvas pela incisão aórtica ao longo do eixo da aorta em direção à câmara ventricular esquerda. Use o ponto de tração para expor a região subvalvalular alvo (Figura 2A).
5. Sob visualização direta, oriente a tesoura horizontalmente e corte as estruturas subvalvulares designadas de forma controlada (Figura 2B). Remova o tecido ressecado e entregue ao assistente.
6. Irrige cuidadosamente a câmara ventricular esquerda e o lúmen aórtico com soro fisiológico estéril para remover qualquer detrito residual de tecido.
7. Feche a incisão aórtica usando suturas absorvíveis contínuas. Comece por uma extremidade da incisão e passe a agulha sequencialmente pela íntima e pelo meio, usando pontos espaçados uniformemente para garantir um fechamento completo e à prova d'água. Após concluir a sutura, irrige novamente a superfície externa do local de fechamento com soro sorológico estéril para limpar a área.

5. Retomada cardíaca e bypass cardiopulmonar

ATENÇÃO: Confirme a desativação total das câmaras cardíacas e linhas de perfusão antes de restaurar a circulação para evitar embolia aérea.

1. Após o fechamento da aorta, reduza gradualmente a taxa de perfusão do seio coronário e interrompa a infusão de cardioplegia. Simultaneamente, diminua gradualmente a taxa de fluxo da bomba de bypass cardiopulmonar (CPB) para permitir a recuperação progressiva da atividade cardíaca espontânea.
2. Monitore continuamente o ritmo cardíaco usando eletrocardiografia (ECG) para detectar o retorno do ritmo sinusal ou a presença de arritmias.
3. Após o desmame bem-sucedido da CPB, reverta a heparinização sistêmica administrando protamina para neutralizar a heparina circulante e restaurar a função normal da coagulação.
4. Se a realimentação cardíaca espontânea não ocorrer em alguns minutos, aplique desfibrilação direta colocando pás do desfibrilador diretamente na superfície cardíaca. Aplicar um único choque de baixa energia e repetir conforme necessário até que a atividade elétrica organizada seja restaurada.
5. Após a restauração das formas de onda regulares do ECG, avalie o impulso apical, a pulsação coronariana e a contratilidade geral do miocárdio.
6. Uma vez que o ritmo cardíaco se estabiliza e a força contrátil seja satisfatória, remova sequencialmente a cânula de perfusão do seio coronário e a cânula de drenagem venosa auricular esquerda. Feche cada local da canulação com pontos para alcançar a hemostasia.
7. Desconecte o sistema CPB. Registre a duração total da CPB, o tempo de pinça cruzada aórtica e o tempo até a retomada cardíaca.
8. Irrige cuidadosamente a cavidade pericárdica com solução fisiológica estéril e aspire qualquer líquido residual ou coágulos sanguíneos.
9. Antes do fechamento esternal, coloque dois tubos de drenagem fechados dentro da cavidade pericárdica, posicionando um de cada lado do coração. Exteriorize os tubos de drenagem através de um espaço intercostal e conecte-os a garrafas externas de drenagem.
10. Feche o esterno usando quatro fios de aço inoxidável em uma configuração interrompida. Em seguida, realize um fechamento rotineiro em camadas da parede torácica.

Results

Esse protocolo cirúrgico permite exposição estável e corte controlado das estruturas subvalvulares dentro do ventrículo esquerdo. Durante o procedimento, a incisão aórtica foi posicionada com precisão, e a entrada pela abertura aórtica permitiu a visualização clara do trato de saída ventricular esquerdo e da região subvalvular associada. O cirurgião localizou a área do corte aplicando tração no ponto pré-colocado e realizou o corte subvalvalar direcionado sob visão direta usando tesouras...

Discussion

Anomalias na estrutura subvalvular do ventrículo esquerdo representam mudanças anatômicas críticas em pacientes com cardiomiopatia hipertrófica (HCM), levando a comprometimento da compaciência ventricular, pressão diastólica elevada e obstrução do trato de saída ventricular esquerdo (LVOT). Essas anomalias estruturais constituem bases patológicas importantes para disfunção cardíaca clínica e desfechos^{adversos 10,11}. Neste estudo,...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
0,9% Sodium Chloride Injection	-	-	Usado para irrigação e diluição de solução
Máquina de Anestesia	-	-	Fornece anestésicos inalados e suporte respiratório
Anestésicos (Propofol, Fentanyl, Atracúrio)	-	-	Usado para indução e manutenção da anestesia
Retractor Aórtico	SINOVIEW	RT37008-25	Usado para retrair a aorta e melhorar a visibilidade
Pinças Atraumáticas	SINOVIEW	FC22500-24	Usado para agarrar tecido minimizando o trauma
Solução de Cardioplegia (St. Thomas)	-	-	Usado para parada cardíaca e proteção
Máquina e Tubulação de Bypass Cardiopulmonar	-	-	Usado para manter a circulação durante o CPB
Kit de Cateter Venoso Central	-	-	Estabelece acesso venoso central
Conjunto de Intubação Endotraqueal e Ventilador	-	-	Mantém as vias aéreas durante a cirurgia
Retractor de Gancho Plano	SINOVIEW	RT37000-00	Usado para retrair tecido na cavidade torácica
Retractor Geral	-	-	Usado para retrair tecido e expor área cirúrgica
Pinça Hemostática	-	-	Usado para clampear vasos sanguíneos ou tecido para hemostasia
Injeção de Heparina Sódica	-	-	Usado para anticoagulação
Cáteter IV·Radiopaco 22 GA × 1,00 pol.	BD Angiocath	381123	Usado para estabelecer acesso venoso
Cesta de Instrumentos Microcirúrgicos	SINOVIEW	90X0003	Usado para armazenar e transportar instrumentos microcirúrgicos
Tesouras Curvas Minimalmente Invasivas	SINOVIEW	SC40230-25	Usado em procedimentos minimamente invasivos para cortes curvos
Tesouras Minimalmente Invasivas de Dupla Junta	SINOVIEW	SC55001-29	Usado para corte preciso em campos operatórios profundos
Suporte de Agulha	-	-	Usado para segurar agulhas de sutura durante a costura
Manípulo e Lâmina de Bisturi	-	-	Usado para incisão de pele e tecidos
Drapos Estériis, Suturas, Luvas, Máscaras	-	-	Usado para manter um campo cirúrgico estéril
Caixa de Esterilização para Instrumentos de Precisão	SINOVIEW	90X0401	Usado para limpeza e esterilização de instrumentos cirúrgicos
Pinças de Tecidos (Dentadas/Não Dentadas)	-	-	Usado para agarrar tecido
Tesouras de Tecidos	SINOVIEW	SC35101-25SC	Usado para corte geral de tecido
Microforceps de Tripla Junta	SINOVIEW	FC17010-301	Usado em microcirurgia para manipulação delicada
Tesouras Ultra-afiadas	SINOVIEW	SC35101-23UC	Usado para dissecação precisa de tecido
Cáteter Urinário e Bolsa de Drenagem	-	-	Usado para drenagem e monitoramento de urina
Monitor de Sinais Vitais	-	-	Monitora ECG, pressão arterial, SpO2, temperatura