$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
O protocolo de pesquisa foi aprovado pelo Comitê de Ética do Segundo Hospital Afiliado, Faculdade de Medicina da Universidade de Zhejiang (nº 2025-0581). Todos os experimentos e procedimentos foram realizados de acordo com a Declaração de Helsinque (conforme revisada em 2013). Este estudo retrospectivo incluiu 47 pacientes hospitalizados para LETM no Segundo Hospital Afiliado da Faculdade de Medicina da Universidade de Zhejiang. Este estudo obteve consentimento informado de todos os participantes. Este estudo de coorte retrospectivo incluiu todos os pacientes elegíveis. Foi realizada uma análise de potência pós-hoc para avaliar a adequação do tamanho da amostra. Os resultados mostraram que, com o tamanho atual da amostra, o tamanho do efeito observado foi 1,213515, e a potência alcançada (1-β err provável) foi 0,9659161, o que excede o limite convencional de 0,8. Assim, o tamanho da amostra atende aos requisitos estatísticos.
Recrutamento de pacientes
Critérios de inclusão: Inclua pacientes que estavam sofrendo ataques agudos, que possuem dados clínicos completos, cujos soros testaram negativo para anticorpos MOG, AQP4 e GFAP, e cujos segmentos afetados foram maiores ou iguais a três18. Critérios de exclusão: Exclua pacientes que tenham apresentado outras doenças que possam causar incapacidade e pacientes que haviam aceitado efgartigimod no inícioagudo 18. Coleta de informações do paciente: Foram registrados dados dados demográficos, incluindo idade, sexo, duração da doença e comprimento dos segmentos espinais envolvidos.
Tratamento e avaliação clínica
Agrupar os pacientes de acordo com seus respectivos regimes de tratamento. Os pacientes foram divididos em dois grupos: o grupo de tratamento com efgartigimod (n = 11) e o grupo de tratamento convencional (n = 36). No grupo efgartigimod, os pacientes foram tratados com administração de 400 mg de efgartigimod por 2 semanas, juntamente com infusão intravenosa de 1.000 mg de metilprednisolona misturada com 500 mL de solução de glicose a 10%, administrada durante um período de tratamentode 2 semanas 16. No grupo de tratamento tradicional, os pacientes foram tratados com infusão intravenosa de 1.000 mg de metilprednisolona misturada com 500 mL de solução de glicose a 10% administrada durante um período de tratamentode 2 semanas 19.
Parâmetros de avaliação clínica dos pacientes
A deficiência dos pacientes foi avaliada com uma série de índices, incluindo a escala expandida de status de incapacidade (EDSS) e a escala de fragilidade clínica (SFC)20,21. A qualidade de vida dos pacientes foi avaliada com o Formulário Abreviado da Pesquisa de Saúde-36 (SF-36), incluindo função física (PF), saúde mental (MH), dor (PA), saúde geral (GH), vitalidade (VT), funcionamento social (SF), papel emocional (ER) e papel físico (RP)22.
Medição da interleucina-6 (IL-6), IL-10 e IL-41
Amostras de sangue em jejum foram coletadas pela manhã. O soro foi isolado do sangue por centrifugação de 10 minutos a 1.000 x g e armazenado a -80 °C para análise subsequente. O tempo de armazenamento de todas as amostras variou de 6 a 48 meses.
Os níveis séricos de IL-6, IL-10 e IL-41 foram medidos usando kits de ensaio imunossorvente ligado a enzimas (ELISA), seguindo as instruções do fabricante (Tabela de Materiais). Equilibre todos os reagentes do kit ELISA até a temperatura ambiente por 20 minutos antes do ensaio. Poços padrão, amostral e em branco eram utilizados. 50 μL de solução padrão em diferentes concentrações (0-100 pg/mL) foram adicionados aos poços padrão, 50 μL da amostra de soro foram adicionados aos poços da amostra e 50 μL de diluiente amostral foram adicionados aos poços em branco. Um tampão de lavagem foi preparado diluindo a solução concentrada de lavagem com água duplamente destilada na proporção de 1:24. O buffer preparado foi usado no mesmo dia para garantir a eficiência ideal da lavagem.
Calculou o volume da solução de trabalho com base nos requisitos experimentais (100 μL por poço). Aos 15 minutos do uso, centrifugado o anticorpo biotinilado concentrado 100x a 7.150 x g por 1 minuto e diluído com tampão de diluição de anticorpos biotinilados na proporção de 1:99 para alcançar uma concentração de trabalho 1x. Usei a solução de trabalho preparada imediatamente para manter sua atividade. O conjugado HRP consistia em estreptavidina conjugada com HRP. Calculou o volume necessário com base nos requisitos experimentais (100 μL por poço), com 100-200 μL adicionais preparados para garantir uma quantidade suficiente. Aos 15 minutos antes do uso, centrifugou o conjugado HRP concentrado 100x a 11.173 x g por 1 min e depois diluído com buffer de diluição conjugado HRP na proporção de 1:99 para alcançar uma concentração de trabalho 1x. Usei imediatamente a solução de trabalho preparada para preservar sua atividade.
Preparou poços padrão (100 μL de padrão diluído), poços em branco (100 μL de tampão padrão e de diluição de amostra) e poços de amostra (100 μL de amostra de teste diluída) conforme necessário. Após a adição das soluções, sele a placa com uma membrana e incube em temperatura ambiente por 1,5 h. Após a incubação, remova o líquido dos poços sem lavar. Em seguida, 100 μL de solução de trabalho de anticorpos biotinilados foram adicionados a cada poço. Sele a placa e incube a 37 °C por 1 hora para facilitar a ligação do anticorpo biotinilado aos complexos antígeno-anticorpo. Após a incubação, remova o líquido dos poços e sece a placa em papel absorvente limpo. Encha cada poço com 350 μL de tampão de lavagem e deixe repousar por 1 minuto. Após remover o líquido, sece novamente a placa em papel absorvente. Repeti esse procedimento de lavagem 4 vezes.
Após a lavagem, adicione 100 μL de solução de trabalho conjugada enzimática a cada poço. Fele a placa e incube a 37 °C por 30 minutos para permitir uma ligação completa entre o conjugado HRP e o anticorpo biotinilado. Após a incubação, remova completamente o líquido dos poços e sece a placa em papel absorvente limpo. Repita o procedimento de lavagem descrito acima 5 vezes para remover completamente os conjugados enzimáticos não ligados e minimizar reações inespecíficas. Após a lavagem, adicione 90 μL da solução do substrato a cada poço. Fele a placa e incube a 37 °C no escuro por aproximadamente 15 minutos. Pré-aqueci o leitor de microplacas por 15 minutos para garantir a precisão da detecção. Após a incubação, 50 μL de solução de parada foram adicionados a cada poço para encerrar o desenvolvimento da cor e a reação enzimática. Após a reação ser interrompida, a densidade óptica (OD) em 450 nm de cada poço era imediatamente medida, e os resultados eram registrados usando um leitor de microplacas para análise e cálculo subsequentes dos dados.
Análise estatística
A análise estatística foi realizada no SPSS 27.0 e no GraphPad Prism 8.4.3. Amostras independentes do teste t e do teste χ2 foram usadas para comparar dados de linha de base entre os dois grupos. O teste t de amostra pareada ou teste Wilcoxon foi usado para comparar escores clínicos e de qualidade de vida antes e depois do tratamento. Além disso, os níveis séricos de IL-6, IL-10 e IL-41 séricos foram comparados antes e depois do tratamento usando um teste t de amostra parelhado. Uma comparação entre os dois grupos foi realizada usando um teste t de amostras independentes. O coeficiente de correlação de Pearson foi usado para medir a correlação entre os níveis de fatores inflamatórios e o EDSS. As diferenças foram consideradas estatisticamente significativas em p < 0,05.