Artigo de método

Avaliação Doppler por Onda Pulsada da Disfunção Diastolica no modelo ZSF-1 de Rato de Hipertensão Pulmonar Devido a Doença Cardíaca Esquerda

DOI:

10.3791/69341

⸱

22 de maio de 2026

 ,  , 
1Department of Anesthesiology and Critical Care Medicine, Johns Hopkins University, 2Department of Anesthesiology and Critical Care Medicine, Department of Biomedical Engineering, Department of Chemical and Biomolecular Engineering, Johns Hopkins University

Neste artigo

Resumo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Um protocolo para avaliação da função diastólica usando ultrassonografia Doppler em um modelo pré-clínico de hipertensão pulmonar devido a doença cardíaca esquerda é apresentado.

Resumo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Disfunção diastólica e insuficiência cardíaca com fração de ejeção preservada (HFpEF) são fatores significativos para a hipertensão pulmonar (HP) devido à doença cardíaca esquerda. A avaliação padrão in vivo de anormalidades de relaxamento em modelos pré-clínicos inclui ecocardiografia bidimensional (2D) com avaliação Doppler do fluxo transmissor e relaxamento tecidual, que é complexa, cara e requer equipamentos ecocardiográficos sofisticados. Aqui, um método substituto valioso para avaliar a disfunção diastólica na HP devido a doença cardíaca esquerda é demonstrado em um modelo de roedor bem estabelecido, utilizando ultrassom Doppler de onda pulsada sem ecocardiografia 2D. O padrão de fluxo transmissor diastólico é identificado a partir da janela apical e está correlacionado com um rastreamento de ECG registrado simultaneamente. Índices da função diastólica são coletados, e a identificação desses índices é descrita neste protocolo. Essa técnica de baixo custo e pronta implementação identifica marcadores relevantes de disfunção diastólica associada à HP, doenças cardiovasculares e HFpEF. Além disso, detecta reprodutivamente sua progressão ao longo do tempo, quando a ecocardiografia 2D não é preferida ou disponível. As principais limitações desse método estão relacionadas à ausência de visualização das estruturas cardíacas, ao potencial de imprecisões devido à dependência do ângulo do sinal Doppler, bem como ao hábito corporal do animal, que pode ser mitigado ajustando a localização da sonda e otimizando seu alinhamento com o fluxo sanguíneo.

Introdução

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

A hipertensão pulmonar (HP) é uma doença mortal sem cura, caracterizada pelo aumento da pressão arterialpulmonar 1. A doença cardíaca esquerda (LHD) é, de longe, a causa mais comum de HP no mundo e está associada a alto custo e morbidadesignificativa 2,3. Os culpados cardíacos da PH-LHD incluem múltiplas entidades diferentes que resultam em disfunção sistólica ou diastólica, como insuficiência cardíaca, que é uma síndrome clínica multifacetada que continua sendo uma das principais causas de mortalidade nomundo 4. Entre os pacientes com insuficiência cardíaca, a HFpEF representa mais da metade das internações hospitalares baseadas emincidentes 4,5. A disfunção diastólica foi identificada como um dos precursores mais importantes e uma característica fundamental na interação entre HFpEF e HP devido à LHD (PH-LHD)6,7. Devido à falta de modelos pré-clínicos adequados que recapitulem a maioria das características clínicas e subclínicas da PH e HFpEF, a compreensão dos mecanismos subjacentes a essas doenças éincompleta 7.

A disfunção diastólica é uma característica marcante do PH-LHD e pode ser avaliada por ecocardiografia 2D eDoppler 8. Métodos bidimensionais e Doppler para avaliação da função diastólica ventricular esquerda incluem, entre outros parâmetros, a velocidade máxima da onda E diastólica precoce, a onda A tardia da diastólia pico, a duração da válvula mitral A (intervalo de tempo do início da onda A ao fim da onda A na linha base zero), razão E/A da válvula mitral, tempo de desaceleração da onda E (DT, intervalo de tempo desde o pico da onda E extrapolada até a linha base de velocidade zero), imagem Doppler tecidal (TDI) do anel da válvula mitral septal (e', parâmetro ecocardiográfico de relaxamento tecidular do anel da válvula mitral), e IVRT (tempo de relaxamento isovolumoso, tempo entre o fechamento da válvula aórtica e a abertura da válvula mitral). Marcadores ecocardiográficos de relaxamento comprometido incluem uma combinação de redução ou inversão da razão E/A no contexto de aumento e redução da onda A, IVT prolongado, redução do tempo de desaceleração da onda E, índices Doppler tardiados no tecido (velocidade prolongada e', aumento médio do E/e' septal) e um valor absoluto menor da tensão longitudinal global (GLS)9. Estudos comparando medições ecocardiográficas e hemodinâmicas invasivas demonstraram que medições ecocardiográficas e invasivas são comparáveis e são um método confiável para avaliar a hemodinâmicacardíaca 10. No entanto, a ecocardiografia 2D é complexa, cara e requer equipamentos e pessoal sofisticados de ecocardiograma. Esses fatores são uma grande limitação para acompanhar a progressão da doença em animais. Consequentemente, os pesquisadores dependem de duas medidas (início e fim do estudo) para estudos longitudinais ou de medições únicas em um desenho transversal.

Entre esses parâmetros da disfunção diastólica, E, A, E/A, duração A, DT e IVRT podem ser avaliados por ecocardiografia Doppler de onda pulsada, evitando a necessidade de ecocardiografia 2D. Neste artigo, um protocolo para avaliação Doppler da função diastólica é demonstrado no bem estabelecido modelo ZSF-1 do ratoPH-LHD 11. Um total de 25 ratos machos ZSF1 (10 geneticamente obesos e 15 geneticamente magros) foram acompanhados longitudinalmente e avaliados sonograficamente para o desenvolvimento de disfunção diastólica por dezesseis semanas entre 8 e 24 semanas de idade. Os mesmos parâmetros ecocardiográficos foram avaliados entre as duas coortes. Todos os animais foram avaliados no início da linha de encontro (8 semanas de idade). Evidências Doppler de disfunção diastólica foram manifestadas às 16 semanas de idade, quando as medições intermediárias foram realizadas. As medições finais foram feitas com 24 semanas de idade. Embora o pesquisador que realizava a coleta de dados não pudesse ser cegado devido ao ganho de peso óbvio na coorte obesa, o pesquisador que realizava a análise de dados estava cego para o fenótipo dos animais. Embora esse método facilmente implementável ofereça uma rota para avaliação longitudinal da progressão da doença em roedores, as limitações dessa técnica incluem a dependência do ângulo de um sinal Doppler de boa qualidade, que pode ser difícil de obter dependendo do alinhamento da sonda e do tamanho do animal.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Todos os procedimentos foram realizados de acordo com a aprovação do Comitê de Cuidados e Uso de Animais (ACUC) da Universidade Johns Hopkins para RA21M273 protocolo. Nenhum animal foi exposto ao desconforto para a coleta de dados ou para os fins das medições. Os reagentes e os equipamentos utilizados estão listados na Tabela de Materiais.

1. Preparação do equipamento e do animal

  1. Limpe a câmara de anestesiação com álcool etílico 70% e limpe todas as superfícies.
  2. Cubra a câmara com um trocador descartável e papel toalha. Certifique-se de que os orifícios de entrada e saída de gás não estejam obstruídos.
  3. Tome as seguintes precauções de Segurança e Manuseio da Anestesia:
    1. Certifique-se de que a estação de anestesia esteja instalada em uma área bem ventilada.
    2. Inspecione o equipamento de anestesia para vazamentos e falhas.
    3. Evite ligar o vaporizador até que o circuito esteja conectado ao animal.
    4. Mantenha fluxo contínuo de oxigênio durante todo o experimento.
    5. Certifique-se de que o sistema de limpeza seja contínuo com o sistema de circuito anestésico.
    6. Obstrua a abertura entre o cone do nariz e o nariz do animal com um pedaço de fita adesiva para reduzir o vazamento de anestésicos e evitar a fuga de contaminantes do ar para o ar.
    7. Reduzir as taxas de fluxo de gás fresco no sistema de circuito anestésico durante a fase de manutenção da anestesia. Recomenda-se o uso da menor vazão possível de gás fresco.
    8. Ao final do experimento, continue administrando oxigênio em alta taxa de fluxo para eliminar qualquer agente anestésico residual e o sistema respiratório.
  4. Abra o tanque de oxigênio (100%) e permita o fluxo livre de oxigênio para a câmara de anestesiação.
  5. Abra a gaiola do animal e coloque o animal na câmara de anestesiação.
  6. Tranque a câmara com segurança.
  7. Abra o vaporizador de isoflurano e permita um fluxo livre de 2% a 3% de isoflurano na câmara de anestesiação, misturado com oxigênio (2 L/min).
  8. Permita que o animal inale a mistura de gás oxigênio-isoflurano por até 3 minutos, ou até que a anestesia geral seja atingida a profundidade adequada.
    NOTA: A anestesia é considerada adequada quando o animal não responde a estímulos não nocivos ou nocivos antes do início do experimento, enquanto continua respirando espontaneamente e sem dificuldade.

2. Obtenção de um rastreamento por ECG

  1. Ligue o tablet conectado ao painel de rastreamento do ECG. Selecione RSMonitor entre os aplicativos disponíveis. Ligue o painel de ECG pressionando o botão de roda à frente.
    NOTA: Uma luz verde piscando indica que o Pad de ECG está emparelhado com o tablet. Uma luz verde fixa indica a conclusão do emparelhamento.
  2. Toque em CONFIGURAÇÕES no canto inferior direito da interface do usuário.
  3. Selecione PRESETS no menu suspenso de configurações experimentais.
  4. Toque no menu suspenso abaixo de Presets Salvos.
  5. Selecione Rat CV e clique em OK no canto inferior direito.
    NOTA: O pad deve estar no modo "Rato" para permitir a detecção do ECG pelas patas.
  6. Limpe o painel de ECG com álcool etílico 70% para remover qualquer resíduo de gel de ECG.
  7. Pegue gel eletrodo altamente condutivo para o ECG e gel de ultrassom hipoalergênico solúvel em água para o Doppler.
  8. Abra o fluxo da mistura gasosa até o cone do nariz.
  9. Coloque o animal anestesiado em supino sobre o absorvente não invasivo de ECG, com o nariz no cone do nariz de tamanho adequado. Ajuste a saída do vaporizador entre 1,5% e 2% (fluxo de oxigênio em 1 L/min). Garanta o fluxo livre de isoflurano para o cone nasal.
  10. Desligue o fluxo de gás em direção à câmara de anestesiação.
  11. Aplique uma pequena quantidade de gel de eletrodo na superfície dorsal das patas dianteiras usando um aplicador com ponta de algodão e no lado plantar das patas traseiras. Prenda as patas com fita adesiva na superfície de contato do eletrodo do painel de ECG e certifique-se de que o gel do eletrodo tenha contato suficiente com o painel de ECG.
    NOTA: Ratos precisam de um cone de nariz menor em comparação com ratos.
  12. Remova os pelos do peito e abdominais do animal usando um creme depilador suave para facilitar melhor contato com a sonda da pele. Remova qualquer creme depilador residual para evitar irritação na pele.
  13. Certifique-se de que a linha de base isoelétrica e a forma de onda P-QRS-T no rastreamento do ECG estejam exibidas no monitor do computador.
    NOTA: Dependendo da frequência cardíaca, as amplitudes P e T podem não ser distinguíveis do complexo QRS, e a onda R é o elemento mais importante para determinar o tempo das formas de onda Doppler.

3. Configuração do computador

  1. Ligue o computador.
  2. Crie uma pasta no computador identificando o animal e os dados de interesse. Os snapshots tirados durante o experimento serão salvos nesta pasta.
  3. Ligue o dispositivo de Transceptor Doppler Pulsado na frente e na traseira (caixa azul grande).
  4. Ligue o Processador de Sinal Doppler (pequena caixa preta).
  5. Abra o ícone da Estação de Trabalho de Processamento de Sinal Doppler para rodar o software.
    NOTA: As configurações iniciais do sistema são as seguintes: 10 MHz ou 20 MHz nas Configurações do Sistema, Taxa de amostragem: 125 kHz, Tamanho da amostra: 512, Filtro passa-baixo: 150 kHz, o que é adequado para a maioria dos experimentos.
  6. Clique em Configurar no canto superior esquerdo.
  7. Selecione Configuração do Sistema.
  8. Selecione a frequência apropriada da sonda para o experimento (20 MHz para camundongos e ratos pequenos, 10 MHz para ratos grandes).
    NOTA: A interface possui dois painéis: um painel superior para a exibição dos espectrogramas de velocidade Doppler e um painel inferior para exibir o ECG.
  9. Conecte a sonda de 20 MHz ao investigar um rato ou rato jovem. Use uma sonda de 10 MHz para ratos mais velhos, maiores ou obesos. Vale notar que ambas as sondas podem ser conectadas simultaneamente, e o módulo transceptor Doppler permite a fácil troca entre frequências/sondas (interruptor de alavanca na frente).
  10. Defina as configurações Doppler no módulo transceptor:
    1. Certifique-se de que o transdutor de sonda portátil esteja configurado para a tomada do canal A ou B.
      NOTA: A seleção do receptáculo não terá impacto na aquisição de dados, nem provocará mudanças no software.
    2. Selecione o canal apropriado de 10/20 MHz para operar a sonda portátil de 10/20 MHz, respectivamente.
    3. Defina a Frequência de Repetição de Pulso (PRF) em 62 kHz para ambiguidade ótima de alcance, aumentando a velocidade máxima que pode ser detectada com o Doppler PW a partir do volume de amostra mais proximal, minimizando o aliasing.
    4. Configure o interruptor DIRECTION para TWD para exibir qualquer fluxo vindo em direção à sonda como uma forma de onda acima da linha de base de fluxo zero.
      NOTA: Qualquer fluxo que se afaste da sonda será exibido como uma forma de onda abaixo da linha de base de fluxo zero.
    5. Ajuste a FAIXA para 2,5 - 3,5 mm para camundongos e 4-6 mm para ratos, para selecionar a profundidade em que o volume da amostra será colocado.
      NOTA: O coração de um rato está dentro dos primeiros 1 cm da face do transduttor, enquanto o coração do rato está dentro dos primeiros 0,5 cm. A distância é medida da interface pele-sonda até o meio do volume da amostra, e a faixa para detectar o fluxo transmissor varia com base no tamanho, idade e hábito corporal do animal.
    6. Defina o FILTER em 15 para suavizar a saída da velocidade fásica para "amortecida", para evitar superestimação ou subestimação das velocidades e garantir a estimativa ótima das velocidades.
  11. Pressione GO no canto superior esquerdo da tela da interface do usuário. Uma janela pop-up vai aparecer.
    1. Na nova janela, insira as Informações de Aquisição relevantes (tipo de animal, sexo, data de nascimento, idade na data de aquisição, peso, etc.).
    2. Selecione a pasta pré-criada desejada no menu suspenso em Diretório (para criar a pasta, veja o passo 3.2) com os identificadores de animal e experimento.
    3. Aperte OK.
      NOTA: O número inicial do arquivo está definido como _00.
    4. Ajuste a linha de base do ECG deslocando-a para cima ou para baixo usando a barra da escala à esquerda (clique com o botão esquerdo no eixo e puxe para cima ou para baixo), para que as ondas R fiquem claramente visíveis.
      NOTA: A linha de base pode ser deslocada mantendo o cursor no painel do ECG, clicando com o botão direito do mouse e movendo o mouse para frente e para trás.

4. Realização de medições Doppler

  1. Aplique uma pequena quantidade de gel de ultrassom na região subesternal/epigástrica do peito e abdômen do animal para facilitar a transmissão do ultrassom entre a sonda e a pele.
  2. Coloque a sonda Doppler na linha média sob o diafragma, abaixo do esterno (logo abaixo e ligeiramente à esquerda do xifóide), cabeça apontando para a cefálade e para a orelha esquerda do animal, e comece a escanear o fluxo movendo lentamente a sonda em um pequeno movimento circular com raio crescente (1mm de cada vez), usando movimentos finos da mão.
  3. Mantenha uma pressão suave da sonda sobre a pele sob o diafragma o tempo todo.
  4. Se o fluxo mitral não for detectado, ajuste o ALCANCE conforme necessário girando o mostrador de ALCANCE em incrementos de 0,5 mm para detectar a forma de onda transmissor (Figura 1A), repetindo o movimento circular de varredura a cada giro do mostrador.
    NOTA: Um padrão de fluxo antegrado diastólico em formato de M aparecerá acima da linha de base zero (quando o interruptor de direção está definido para "TWD" (em direção a)), indicando um padrão de fluxo diastólico consistente com o fluxo através da válvula mitral que ocorre com a abertura da válvula mitral. Vale notar que a maior parte do fluxo deve estar acima da linha base para um padrão de fluxo da válvula mitral, enquanto uma forma de onda assimétrica em forma de V, que está principalmente abaixo da linha de base, indica fluxo sistólico através de uma válvula diferente, como a válvula aórtica. Se uma forma de onda consistente com um padrão de fluxo aórtico for encontrada, mova a ponta levemente para a direita do animal e incline-a para cima (requer um movimento mínimo de um ou dois milímetros). Todos os sinais são exibidos em tempo real. O fluxo diastólico através da válvula tricúspide aparecerá como uma forma de onda semelhante em formato de M acima da linha de base; no entanto, devido a um gradiente de pressão menor entre o átrio direito e o ventrículo direito, as velocidades de pico serão significativamente menores (Figura 1B). Se for encontrada uma forma de onda compatível com o fluxo da válvula tricúspide, deslize a sonda levemente para a esquerda do animal sem alterar seu ângulo em relação à pele.
  5. Garanta a exibição simultânea da forma de onda Doppler e do ECG na tela.
    NOTA: A velocidade de varredura do ECG pode ser ajustada para um nível confortável clicando nas setas para cima/baixo no canto inferior direito do painel. 4-5 batidas visíveis por tela são ideais.

5. Obtenção de dados por ultrassonografia Doppler

  1. Crie snapshots usando o pedal de pé assim que o fluxo correto for identificado. Isso pode ser repetido várias vezes conforme necessário para obter a qualidade ideal dos dados.
    NOTA: Uma imagem ideal exibirá uma definição clara das bordas espectrais, sem alargamento espectral, sem preenchimento espectral, sem exibição simultânea do fluxo direto e reverso, e exibição simultânea dos fluxos transmissores e sistólicos da aorta. Os snapshots são salvos automaticamente ao pressionar o pedal.
  2. Pare a aquisição de dados quando estiver satisfeito com a qualidade dos dados clicando no botão STOP no canto superior direito da interface do usuário. É necessário um mínimo de 3 réplicas de um par de formas de onda de ECG e Doppler para uma representação confiável das velocidades médias e tempos de contração/relaxamento.
  3. Clique no menu Arquivo na barra de funções superior.
  4. Selecione Abrir no menu suspenso.
  5. Selecione o arquivo de maior qualidade de dados da pasta pré-criada para análise.
  6. Clique em Análise no canto superior esquerdo. Uma janela pop-up vai aparecer.
    1. Selecione a Etapa 2: Configuração Geral
      1. Tipo de dado: Doppler
      2. Sinal: Entrada Mitral
      3. Animal: Selecione o modelo apropriado para o experimento.
      4. Defina "Todos os nomes das medições" nos nomes padrão das medições.
  7. Vá e clique no Passo 5: Editor de picos R no menu suspenso Controle de Análise. Selecione Exibir marcadores de batida e R. Selecione Cálculo automático.
    NOTA: Marcadores verdes do pico R aparecerão. Alinhe os marcadores verdes com a ponta das ondas R. Marcadores de batida indesejados podem ser removidos do painel colocando o cursor no marcador e realizando um movimento rápido para a direita com o mouse enquanto se mantém o clique direito pressionado.
  8. Clique no Passo 6: Editor de Beats no menu suspenso Controle de Análise. Selecione Exibir marcadores de batida e R e clique em Selecionar todos os batidas.
  9. Clique no Passo 7: Editor de Marcadores no menu suspenso Controle de Análise. Clique em Exibir marcadores de análise. Selecione o parâmetro desejado para medição em "Marcador de Corrente Selecionado".
    1. Certifique-se de que os seguintes parâmetros sejam necessários para a completude dos dados (Figura 1):
      1. ES: começo cedo. Este é o início do movimento ascendente do fluxo diastólico inicial, medido na linha de base.
      2. EPV: velocidade máxima inicial. A primeira velocidade máxima acima da linha de base reflete o gradiente de pressão do atrial esquerdo (LA) - ventricular esquerdo (VI) durante a diástole inicial (esta é a velocidade máxima do fluxo passivo de LA para LV devido ao gradiente de pressão LA-LV pré-existente).
      3. EEAS: fim antecipado, início atrial. Reflete a equalização da pressão e a cessação do fluxo entre a LA e o LV (diástase).
      4. APV: velocidade máxima do atrio. A segunda velocidade máxima acima da linha de base reflete o gradiente de pressão do ventriculo auricular esquerdo durante a diástole tardia. Essa é a velocidade máxima do fluxo sanguíneo durante o "chute atrial".
      5. AE: extremidade atrial. Reflete a cessação do fluxo ao final da diástole tardia e a equalização da pressão entre a LA e o LV.
      6. IVCTE: tempo de contração isovolumosa e fim. Este é o intervalo de tempo entre o fechamento da válvula mitral e a abertura da válvula aórtica no início da sístole.
      7. IVRT: o tempo de relaxamento isovolumoso começa. Este é o intervalo de tempo entre o fechamento da válvula aórtica e a abertura da válvula mitral no início da diástole.
    2. Após realizar as medições acima, selecione Passo 8: Resultados da Medição no menu suspenso Controle de Análise .
    3. Copie os dados para um arquivo Excel clicando em Copiar Resultados para a Área de Transferência. Salve os dados do Excel.
    4. Feche a janela "Controle de Análise".
    5. Clique em Arquivo no canto superior esquerdo e selecione Salvar. Isso economiza as medições realizadas.
    6. Saia da estação de trabalho de processamento de sinal Doppler.

6. Encerramento do experimento

  1. Desligue o isoflurano e remova a fita das patas do animal.
  2. Remova o animal da almofada do eletrodo.
  3. Limpe qualquer creme depilador e gel de eletrodos restantes.
  4. Coloque o animal de volta na gaiola com acesso livre à água e comida.
  5. Permita que o animal se recupere da anestesia enquanto é monitorado conforme o protocolo institucional.
  6. Desligue o oxigênio.
  7. Limpe a câmara de anestesiação.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Esse método permite a avaliação longitudinal da função diastólica no PH-LHD. Para a avaliação mais precisa da função diastólica, padrões de fluxo antegrado e retrógrado relacionados à abertura e fechamento da válvula mitral e aórtica precisam ser visualizados dentro do mesmo ciclo cardíaco ao longo de múltiplos ciclos (Figura 1). O fechamento da válvula aórtica marca o início da diástole, cuja fase mais inicial é o relaxamento isovolumoso, que precede a aber...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Neste artigo, um método substituto para avaliar a disfunção diastólica em PH-LHD é demonstrado em um modelo de roedor bem estabelecido, utilizando ultrassom Doppler de onda pulsada sem ecocardiografia 2D. O padrão de fluxo transmissor diastólico é identificado a partir da janela apical e está correlacionado com um rastreamento de ECG registrado simultaneamente, que permite determinar índices de função diastólica. Essa técnica de baixo custo identifica marcadores de função e disfunção dia...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Os autores não têm relações financeiras com nenhum fabricante dos materiais utilizados.

Agradecimentos

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Esse trabalho foi apoiado pelo Prêmio de Desenvolvimento de Carreira da American Heart Association para MB (24CDA1267633), um prêmio NHLBI R56 para JS (1R56HL169285) e um prêmio NHLBI para LS (R01HL14811201).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Configuração da anestesiaVetEquip Inc.901806
ComputadorDell7420 Plus
CotonetePuritan Medical Products Company806-WC
Creme depilador    Church e Dwight300725
Sonda Doppler 10 e 20MHzINDUS InstrumentsNA
Configuração DopplerINDUS InstrumentsNA
Pad de ECGINDUS InstrumentsNA
Gel de eletrodosLaboratórios Parker45993
Vaporizador de isoflurano  VetEquip Inc.911103
Gel de ultrassomLaboratórios Parker45659
Câmara de indução anestesiante ventiladaVetEquip Inc.942102

Referências

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Simonneau, G., et al. Haemodynamic definitions and updated clinical classification of pulmonary hypertension. Eur Respir J. 53 (1), 1801913(2019).
  2. Ghoreishi, M., et al. Pulmonary hypertension adversely affects short- and long-term survival after mitral valve operation for mitral regurgitation: Implications for timing of surgery. J Thorac Cardiovasc Surg. 142 (6), 1439-1452 (2011).
  3. Charalampopoulos, A., et al. Pathophysiology and diagnosis of pulmonary hypertension due to left heart disease. Front Med (Lausanne). 5, 174(2018).
  4. Dunlay, S. M., Roger, V. L., Redfield, M. M. Epidemiology of heart failure with preserved ejection fraction. Nat Rev Cardiol. 14 (10), 591-602 (2017).
  5. Savarese, G., et al. Global burden of heart failure: A comprehensive and updated review of epidemiology. Cardiovasc Res. 118 (17), 3272-3287 (2023).
  6. Thenappan, T., et al. Clinical characteristics of pulmonary hypertension in patients with heart failure and preserved ejection fraction. Circ Heart Fail. 4 (3), 257-265 (2011).
  7. Bauer, M., Gadkari, M., Martinez Yus, M., Santhanam, L., Steppan, J. Sexual dimorphism in animal models of heart failure with preserved ejection fraction. J Appl Physiol (1985). 138 (6), 1449-1473 (2025).
  8. Cameron, D. M., Mclaughlin, V. V., Rubenfire, M., Visovatti, S., Bach, D. S. Usefulness of echocardiography/Doppler to reliably predict elevated left ventricular end-diastolic pressure in patients with pulmonary hypertension. Am J Cardiol. 119 (5), 790-794 (2017).
  9. Nagueh, S. F., et al. Recommendations for the evaluation of left ventricular diastolic function by echocardiography and for heart failure with preserved ejection fraction diagnosis: An update from the American Society of Echocardiography. J Am Soc Echocardiogr. 38 (7), 537-569 (2025).
  10. Yavuz, Y. E., Soylu, A., Gurbuz, A. S. The relationship of systemic and pulmonary arterial parameters with HFPEF scores (h(2) fpef, hfa-peff) and diastolic dysfunction parameters in heart failure patients with preserved ejection fraction. J Clin Ultrasound. 52 (1), 39-50 (2024).
  11. Villalba-Orero, M., Garcia-Pavia, P., Lara-Pezzi, E. Noninvasive assessment of HFPEF in mouse models: Current gaps and future directions. BMC Med. 20 (1), 349(2022).
  12. Watson, L. E., Sheth, M., Denyer, R. F., Dostal, D. E. Baseline echocardiographic values for adult male rats. J Am Soc Echocardiogr. 17 (2), 161-167 (2004).
  13. Kass, D. A. Assessing and interpreting diastolic function in animal models of heart disease. J Mol Cell Cardiol. 197, 1-4 (2024).
  14. Schnelle, M., et al. Echocardiographic evaluation of diastolic function in mouse models of heart disease. J Mol Cell Cardiol. 114, 20-28 (2018).
  15. Westenberg, J. J. Cmr for assessment of diastolic function. Curr Cardiovasc Imaging Rep. 4 (2), 149-158 (2011).
  16. Robinson, S., et al. The assessment of left ventricular diastolic function: Guidance and recommendations from the British Society of Echocardiography. Echo Res Pract. 11 (1), 16(2024).
  17. Del Buono, M. G., et al. Heart failure with preserved ejection fraction diagnosis and treatment: An updated review of the evidence. Prog Cardiovasc Dis. 63 (5), 570-584 (2020).
  18. Little, W. C., Oh, J. K. Echocardiographic evaluation of diastolic function can be used to guide clinical care. Circulation. 120 (9), 802-809 (2009).
  19. Reddy, Y. N. V., Carter, R. E., Obokata, M., Redfield, M. M., Borlaug, B. A. A simple, evidence-based approach to help guide diagnosis of heart failure with preserved ejection fraction. Circulation. 138 (9), 861-870 (2018).
  20. Ram, R., Mickelsen, D. M., Theodoropoulos, C., Blaxall, B. C. New approaches in small animal echocardiography: Imaging the sounds of silence. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 301 (5), H1765-H1780 (2011).
  21. Anavekar, N. S., Oh, J. K. Doppler echocardiography: A contemporary review. J Cardiol. 54 (3), 347-358 (2009).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Solicitar permissão para reutilizar o texto ou as figuras deste artigo JoVE

Solicitar permissão

Etiquetas

Fluxo TransmitralUltrassom DopplerInsufici ncia Card acaICFpEndices de Fun o Diast lica

Artigos relacionados