Informações gerais
A paciente, uma mulher de 15 anos, apresentou febre de origem desconhecida em outubro de 2022. Os episódios de febre ocorriam principalmente à noite, com temperatura máxima de 38,3 °C, acompanhados de dor de garganta, calafrios e fadiga. Exames de sangue iniciais revelaram uma leve diminuição na contagem de glóbulos brancos, níveis normais de proteína C-reativa, linfócitos elevados e um nível de EBV-DNA de 1,50 × 10cópias de 3 mL, levando ao diagnóstico de mononucleose infecciosa. Após receber tratamento sintomático e de apoio, os sintomas melhoraram. No entanto, três meses depois, ela apresentou febre recorrente, com temperaturas atingindo o pico de 38,5 °C, além de tosse seca e o aparecimento de uma massa de 1 cm × 1 cm nas regiões frontal e temporal esquerda, além de múltiplos linfonodos cervicais bilaterais aumentados. Testes repetidos de EBV-DNA mostraram um nível de 1,99 × 10cópias de 3 mL, e um exame sanguíneo periférico revelou 38% de linfócitos, consistente com diagnóstico de CAEBV (atendendo aos critérios diagnósticos: sintomas infecciosos persistentes por mais de 6 meses, elevação sustentada do EBV-DNA). Apesar do tratamento com ganciclovir, antipiréticos e substituição de líquidos, seus sintomas persistiram. Em fevereiro de 2023, o paciente apresentava febre alta persistente, com temperaturas consistentemente acima de 40°C, além de dor no peito do lado direito e aperto no peito. A tomografia por emissão de pósitrons — tomografia computadorizada (PET-CT) revelou espessamento do tecido mole subcutâneo com aumento da atividade metabólica nas regiões frontal, temporal e parietal esquerda. Além disso, foram observados espessamentos difusos da pleura direita com aumento da atividade metabólica, múltiplos linfonodos hipermetabólicos e aumentados até os diafragmas bilaterais, e focos hipermetabólicos no arco costal direito e no osso púbico esquerdo, sugerindo alta probabilidade de envolvimento multissistémico por um tumor linfohematopoiético maligno (Figura 1A).
Uma biópsia da massa do couro cabeludo revelou patologia compatível com ENKTL. A maior parte do tecido da biópsia apresentou alterações necróticas, incluindo necrose do tecido muscular estriado. Células atípicas com núcleos grandes e de mancha escura foram observadas infiltrando-se nas áreas ao redor dos vasos sanguíneos residuais, com abundante detrito nuclear ao fundo. Os achados da imunohistoquímica foram os seguintes: CK (-), CD3 (+), CD5 (-), CD10 (-), CD4 (-), CD8 (+), CD2 (+), CD7 (-), CD43 (+), CD20 (-), CD56 (+), Granzyme B (+), TIA-1 (+), Ki-67 (alto índice de proliferação, ~90%), CD79a (-), CD34 (-), CD117 (-), TdT (-) e EBER (+) (Figura 2). A patologia molecular confirmou a positividade do RNA codificado pelo vírus Epstein-Barr. Os achados de esfregaços de medula óssea, patologia e citometria de fluxo foram pouco notáveis. O paciente teve linfadenopatia no estágio inicial, mas nenhuma biópsia linfonodal foi realizada, tornando impossível determinar o momento inicial de início do ENKTL. Diagnóstico final: ENKTL transformado a partir do CAEBV.
Ciclo de quimioterapia
A paciente iniciou a quimioterapia com o regime VDLP em 8 de março de 2023, que incluiu vincristina (2 mg nos dias 1, 8, 15 e 22), lipossomo de doxorrubicina (20 mg nos dias 1, 8, 15 e 22), pegaspargase (nos dias 2 e 16) e prednisona (80 mg nos dias 1 a 21). Simultaneamente, tratamentos sintomáticos e de suporte foram aprimorados. Após a quimioterapia, o paciente desenvolveu neutropenia com febre e função de coagulação anormal. Essas complicações foram tratadas com terapia anti-infecciosa usando cefoperazona-sulbactam, meropenem e caspofungina. Transfusões de produtos sanguíneos, incluindo crioprecipitado, plasma e plaquetas, também foram aplicadas. Após o primeiro ciclo de quimioterapia, houve uma leve redução dos linfonodos do paciente, mas a febre reapareceu intermitentemente. O paciente atendeu a 6 dos 8 critérios diagnósticos para HLH conforme as diretrizes HLH-2004: (1) febre persistente; (2) CD25 solúvel elevado (4213 U/mL); (3) diminuição da atividade das células NK (13,8%); (4) ferritina sérica 742,5 ng/mL (normal: 13–150 ng/mL); (5) esplenomegalia; (6) hemofagocitose em esfregaço de medula óssea, atendendo aos critérios diagnósticosde HLH 17. Em 7 de abril de 2023, o regime de quimioterapia foi alterado para MEAD (motivo: O regime MEAD contém agentes antitumorais e anti-inflamatórios mais potentes, como lipossomo de mitoxantrona e etopóside, que são mais adequados para linfomas complicados por HLH), incluindo liposomo de mitoxantrona (30 mg no dia 1), etopósido (100 mg nos dias 2–4 e 15–16), dexametasona (10 mg nos dias 2–4 e 15–16), e citarabina (100 mg nos dias 2–5). Em 10 de abril de 2023, a febre do paciente melhorou (máximo 37,5 °C), indicando uma resposta inicial. A febre reapareceu em 17 de abril de 2023, complicada pela infecção. Inibidores de checkpoint imunológico foram adicionados em 26 de abril de 2023, após o que a febre desapareceu completamente. Em 4 de maio de 2023, o paciente recebeu o regime de quimioterapia Gemox combinado com pegaspargase (motivo: O regime Gemox é um regime de quimioterapia de primeira linha para ENKTL, e a adição de pegaspargase pode aumentar ainda mais a eficácia antitumoral para consolidar a RC). Isso incluiu gemcitabina (1,5 g nos dias 1 e 8), pegaspargase (3750 UI no segundo dia) e oxaliplatina (150 mg no primeiro dia). Além disso, foi implementado um regime de curto prazo com HLH04 (etopósido 100 mg nos dias 1–2 e dexametasona, 10 mg nos dias 1–7) para tratar a HLH. Durante a fase subsequente de supressão da medula óssea, o paciente desenvolveu uma infecção abdominal, que foi gradualmente controlada com tratamento, incluindo tigeciclina, cefoperazona-sulbactam e caspofungina para terapia antifúngica. Uma repetição da tomografia PET-CT em 27 de maio de 2023 mostrou resolução completa das lesões, e o paciente foi avaliado como tendo alcançado remissão completa (Figura 1B). Em 5 de junho de 2023, a quimioterapia de consolidação foi iniciada novamente com gemcitabina (1,5 g no primeiro dia), oxaliplatina (150 mg no primeiro dia), pegaspargase (3750 UI no segundo dia), VP-16 (etopósia, 100 mg nos dias 1–2) e dexametasona (10 mg nos dias 1–7). Injeções intratecais de citarabina e metotrexato também foram aplicadas por punção lombar para prevenir o envolvimento do sistema nervoso central pelo linfoma. Com um doador totalmente compatível com HLA identificado, o paciente prosseguiu para a cirurgia allo-HSCT.
Coleta e teste de implantação de células-tronco
O paciente tinha um doador irmão totalmente pareado, com compatibilidade HLA de 10/10. A doadora era a irmã do paciente, de 25 anos, ambas compartilhando o tipo sanguíneo A+. Para mobilizar células-tronco, o doador foi injetado subcutâneamente com fator estimulante de colônias de granulócitos a 5 μg/kg duas vezes ao dia por quatro dias. Na manhã do5º dia, 200 mL de suspensão de células-tronco do sangue periférico foram coletados usando um separador de células sanguíneas. No dia do transplante, 170 mL da suspensão coletada foram transfundidos de volta ao paciente. As células infundidas incluíam uma contagem de CD34+ de 2,94 × 106/kg e uma contagem de células nucleadas de 5,7 × 108/kg. Além disso, três sacos de células-tronco foram reservados, cada um contendo 10 mL, com contagem de CD34+ de 0,17 × 106/kg e contagem de células nucleadas de 0,34 × 108/kg. Após o transplante, foi realizada infusão de linfócitos com doador como medida preventiva contra recidiva. O status de transplante do paciente será monitorado em 1, 2, 3, 6 e 12 meses após o transplante. Como o doador e o receptor são do mesmo sexo, a impressão digital de DNA via tecnologia PCR será usada para monitorar o quimerismo. O período de acompanhamento continuará até setembro de 2024, permitindo a análise da reconstituição hematopoiética, a ocorrência de GVHD aguda e crônica ou outras complicações, bem como o acompanhamento dos resultados de imagens, níveis de EBV-DNA e a taxa de quimerismo.
Processo de transplante e resultados
O paciente completou a preparação pré-transplante e recebeu o regime de condicionamento BUCY aprimorado com lipossomo de mitoxantrona (justificativa para a adição do lipossomo mitoxantrona: possui forte atividade antitumoral, pode potencializar a eliminação de células tumorais residuais e células infectadas por EBV, e se sinergiza com busulfano e ciclofosfamida para melhorar a eficácia do transplante; administrado no dia -8, com intervalo de 8 dias antes da infusão de células-tronco, permitindo tempo suficiente para o metabolismo dos medicamentos (meia-vida de aproximadamente 40 horas) sem afetar o enxerto de células-tronco doadoras). Em 7 de julho de 2023, a infusão de células-tronco foi concluída com sucesso, seguida por cuidados de suporte como anti-infecção, profilaxia para GVHD e promoção da recuperação hematopoiética. Noquarto dia após o transplante, o paciente apresentou dor abdominal, febre e neutropenia, o que foi complicado por uma infecção abdominal. Após o tratamento com meropenema e tigeciclina para infecção bacteriana e caspofungina para terapia antifúngica, os sintomas da paciente melhoraram e sua temperatura corporal normalizou-se. O enxerto de neutrófilos e plaquetas ocorreu no 12º dia pós-transplante e, um mês depois, a contagem sanguínea total dela se normalizou. A biópsia da medula óssea mostrou proliferação ativa de células nucleadas, e a impressão digital de DNA revelou uma taxa de enfrate de células doadoras de 100%. O paciente foi monitorado por mais de 1 ano após o transplante, e não foram observadas complicações como GVHD aguda ou crônica, nem infecções. O acompanhamento está em andamento até setembro de 2024. Exames de PET-CT realizados aos 3 e 12 meses após o transplante mostraram que o paciente permaneceu em remissão completa. O EBV-DNA no plasma foi indetectável após o transplante, e ocasionalmente baixos níveis de EBV-DNA em células sanguíneas foram considerados normais (Figura 3). A impressão digital de DNA em 1 mês e 6 meses após o transplante confirmou 100% de enxerto de doador, demonstrando hematopoiese total do doador (Figura 4). A análise do subconjunto de linfócitos mostrou que as células CD3+CD8+ e as células CD56+ infectadas por EBV eram indetectáveis após o transplante (Figura 4).

Figura 1: Resultados da imagem PET-CT durante o tratamento e acompanhamento. (A) Quimioterapia pré-indução (PET-CT) imagem mostrando o envolvimento do linfoma nos tecidos moles subcutâneos da região frontotemporal-parietal esquerda, pleura direita e linfonodos abaixo dos diafragmas bilaterais com aumento da atividade metabólica. (B) Imagem pós-indução da quimioterapia PET-CT mostrando resolução completa de todas as lesões, consistente com remissão completa. (C,D) Imagens de acompanhamento PET-CT obtidas aos 3 meses (C) e 12 meses (D) após o transplante, demonstrando remissão completa e sustentada. Por favor, clique aqui para ver uma versão ampliada desta figura.

Figura 2: Achados patológicos e imunohistoquímicos da massa do couro cabeludo. O tecido da biópsia mostrou alterações necróticas; células hipercromáticas atípicas infiltraram-se ao redor dos vasos sanguíneos residuais com abundante detrito nuclear ao fundo. Imunohistoquímica: CK(-), CD3(+), CD5(-), CD10(-), CD4(-), CD8(+), CD2(+), CD7(-), CD43(+), CD20(-), CD56(+), Granzima B(+), TIA-1(+), Ki-67 (índice de proliferação ~90%), CD79a(-), CD34(-), CD117(-), TdT(-), EBER(+), consistente com linfoma extranodal NK/T associado ao EBV. Barras de escala: 100 μm. Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 3: Monitoramento dinâmico dos níveis de DNA do vírus Epstein–Barr. (A) Níveis plasmáticos do vírus Epstein–Barr (EBV)-DNA ao longo do tempo. O EBV-DNA plasmático permaneceu indetectável em todos os momentos pós-transplante, indicando a ausência de reativação do EBV. (B) Níveis celulares de EBV-DNA ao longo do tempo. Ocasionalmente, DNA celular de baixo nível de EBV foi detectado após o transplante, sem aparente significância clínica. Por favor, clique aqui para ver uma versão ampliada desta figura.

Figura 4: Análise de quimerismo pós-transplante e detecção de subconjuntos de linfócitos infectados pelo vírus Epstein–Barr. (A) Perfil de impressão digital de DNA pré-transplante do receptor. (B) Análise de impressão digital de DNA 1 mês após o transplante, demonstrando quimerismo de doador 100% e hematopoiese completa derivada do doador. (C) Análise pré-transplante de subconjunto de linfócitos mostrando infecção pelo vírus Epstein–Barr (EBV) em células CD3+CD8+ e CD56+. (D) Análise pós-transplante do subconjunto de linfócitos que não mostra células detectáveis infectadas por EBV CD3+CD8+ ou CD56+, indicando a eliminação completa da infecção por EBV. Por favor, clique aqui para ver uma versão ampliada desta figura.