Modelagem animal
Este estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética do Segundo Hospital Afiliado da Universidade de Medicina Tradicional Chinesa de Fujian (Aprovação nº FJPSPH-IAEC2024114) e conduzidas em conformidade com as diretrizes de bem-estar animal. Ratos machos de Sprague-Dawley pesando entre 180 e 200 g foram alojados sob condições controladas a 22-26°C e umidade de 40-70%. A LME foi induzida pelo método Allen de quedade peso 10: anestesia por inalação de isoflurano 3-4%, incisão na linha média em T10, exposição dos segmentos T9-T11, laminectomia (dura-máter intacta) e impacto (ponta de 2 mm, velocidade de 0,5 m/s, profundidade de 1,3 mm, duração de 1 s). Ratos falsos passaram por laminectomia sem impacto. Critérios de inclusão: Pontuação BBB < 8 às 24 horas após a cirurgia; Critérios de exclusão: infecção, transeção da medula espinhal. Cuidados pós-operatórios: analgesia (buprenorfina, 0,1 mg/kg de c., a cada 12h por 3 dias), expressão da bexiga (a cada 6h por 1 semana) e cuidados estériles da ferida. Os ratos-modelo bem-sucedidos foram aleatoriamente designados para um grupo-modelo, e grupos de GLGZ de alto (2,32 g/kg, n = 10), médio (1,16 g/kg, n = 10), de baixa dose (0,58 g/kg, n = 10).
Análise da função motora
A pontuação de Basso, Beattie e Bresnahan (BBB) foi feita às cegas. Os ratos foram observados em campo aberto por 5 minutos, avaliando o movimento das articulações dos membros posteriores, sustentação de peso, marcha e coordenação.
Elastografia por onda de cisalhamento para medir rigidez do reto femoral
Foi utilizado um sistema de ultrassom Doppler com uma sonda de matriz linear (18L6). Ratos eram colocados em reclinação lateral (músculo relaxado). A SWE foi realizada com a sonda posicionada em um ângulo de 90° em relação ao músculo, a uma profundidade de 1-2 cm. A região de interesse (ROI) foi definida para 0,5 × 0,5 cm, e dez quadros foram adquiridos por medição. O valor final de rigidez representou a média de três medições válidas. a velocidade de onda de cisalhamento (SWV) foi registrada; O controle de qualidade verde indicou imagensválidas 11.
Exame de ressonância magnética
A ressonância magnética foi realizada usando um scanner 7.0T com sequência de gordura supressa ponderada T2 e uma bobina animalespecífica para animais. Os parâmetros de aquisição foram os seguintes: tempo de repetição (TR) 3.800 ms, tempo de eco (TE) 72 ms, espessura do corte 1 mm, tamanho do voxel 0,1 × 0,1 × 1 mm, matriz 256 × 256, campo de visão (FOV) 25,6 × 25,6 mm, médias de quatro sinais e controle respiratório. A área da lesão foi medida com software de processamento de imagem.
Coloração histológica
A coloração com HE foi realizada por meio de deparafinização sequencial, reidratação, coloração por hematoxilina por 5 minutos, enxágue em água corrente, diferenciação em ácido clorídrico-etanol a 1% por 30 segundos, coloração com eosina por 2 minutos, desidratação, limpeza e montagem. Como ponto de verificação visual, seções coloridas mostraram núcleos azuis e citoplasma vermelho.
A coloração com Nissl foi realizada por desparafinização, reidratação, incubação em azul de toluidina a 0,1% a 50-60 °C por 30 minutos, seguida de enxaguamento com água destilada, diferenciação de etanol, desidratação, limpeza e montagem. Como ponto de verificação visual, corpos de Nissl azul-escuro foram claramente observados no grupo simulado.
A coloração rápida de Luxol azul com violeta cresil foi realizada por desparafinização, reidratação, incubação em azul rápido Luxol a 60 °C por 2 horas, enxaguamento com etanol 95%, diferenciação em carbonato de lítio por 30 segundos, seguida por diferenciação de etanol com 70%, contracoloração com violeta cresil por 10 minutos, desidratação, limpeza e montagem. A concentração ativa de violeta cresil foi de 0,1%. Como ponto de verificação visual, foi observada mielina azul-escura no grupo simulado.
A coloração multiplex por imunofluorescência foi realizada começando com desparafinização, reidratação e coleta de antígenos usando tampão de citrato (pH 6,0) a 95 °C por 20 minutos. As seções foram tratadas com peróxido de hidrogênio a 3% por 10 minutos, seguidas de bloqueio com 5% de BSA a 37 °C por 1 hora. Os anticorpos primários foram incubados durante a noite a 4 °C (ASC: 1:500; Caspase-8: 1:400; RIPK3: 1:500). Após lavagem com PBS-T (0,1% pré-adolescente-20, 3 x 5 min), as seções foram incubadas com anticorpos secundários marcados com HRP (1:1000) a 37 °C por 1 hora. A marcação com fluorocromo foi então aplicada: YTR520 Plus para ASC, TYR570 Plus para Caspase8 e TYR690 Plus para RIPK3 (30 min), seguida por coloração nuclear DAPI por 5 min. As lâminas foram montadas e a imagem foi realizada usando um microscópio de fluorescência com exposição de 500 ms, ganho 1,0, ampliação ×200, com conjuntos de filtros correspondentes aos fluorocromos.
Para xileno e etanol, todas as operações eram realizadas em uma exaustão de fumaça, e luvas e óculos eram usados durante o uso. Para reagentes de coloração, o contato direto com a pele era estritamente evitado. Todos os reagentes de resíduos foram descartados em recipientes designados para resíduos perigosos. Para materiais de risco biológico, uma esterilização completa por autoclave foi realizada antes do descarte final para evitar possível contaminação biológica.
Análise estatística
ANOVA unidirecional com teste pós-hoc de LSD foi usada para comparações de grupos. P < 0,05 foi considerado estatisticamente significativo.