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Um método cirúrgico para estabelecer um modelo murino de osteoartrite no joelho usando um procedimento de casco modificado

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DOI:

10.3791/70379

15 de maio de 2026

* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

Este protocolo descreve as etapas cirúrgicas refinadas do modelo Hulth modificado, fornecendo um método padronizado e reproduzível para induzir osteoartrite experimental.

Resumo

A osteoartrite do joelho (KOA) é uma doença articular degenerativa crônica caracterizada por degeneração da cartilagem articular, remodelação óssea subcondral, formação de osteófitos e sinovite, que é o tipo mais comum de osteoartrite.

Este protocolo apresenta um método cirúrgico para estabelecer um modelo murino de osteoartrite no joelho usando um procedimento Hulth modificado. Comparado a modelos cirúrgicos induzidos por injeção ou convencionais, como a desestabilização do menisco medial (DMM) e a transseção do ligamento cruzado anterior (ACLT), o modelo Hulth modificado induz um início precoce da doença e uma inflamação articular mais grave. Ao seccionar o ligamento colateral medial, menisco medial e ligamento cruzado anterior, esse método interrompe o alinhamento mecânico da articulação do joelho, promovendo assim a progressão da OA. Esse modelo é particularmente adequado para estudar a patologia aguda da artrosis e avaliar possíveis intervenções terapêuticas. Para avaliar a gravidade da artrite, utilizamos ultrassom em pequenos animais combinado com reconstrução tridimensional (3D) da cavidade articular para quantificar seu volume e avaliar o acúmulo de líquido sinovial. Além disso, foi realizada coloração com safranina-O/verde rápido em seções histológicas para a pontuação da Osteoarthritis Research Society International (OARSI) para avaliar a destruição da cartilagem.

Introdução

A osteoartrite do joelho (OA) é uma doença articular crônica, crônica e degenerativa, caracterizada clinicamente por dor, rigidez, amplitude de movimento limitada e fraqueza muscular ao redor do joelho. Sua prevalência é maior em mulheres do que em homens. Se não for adequadamente controlada, a OA pode levar à perda progressiva da capacidade física, distúrbios do sono, fadiga crônica e, eventualmente, incapacidade. À medida que as populações globais envelhecem, a incidência de OA no joelho continua a aumentar, representando um desafio substancial para os sistemas de saúde e as economias emtodo o mundo.

Fisiopatologicamente, a perda de cartilagem representa a característica central da OA, acompanhada por comprometimento estrutural e funcional de toda a articulação e dos tecidos periarticulares. Para elucidar os mecanismos da doença e avaliar intervenções terapêuticas, uma variedade de modelos animais foi desenvolvida que recapitula aspectos-chave da artrite oteclótica humana. Entre esses, os modelos induzidos cirurgicamente são os mais frequentemente empregados. Como a desestabilização do menisco medial (DMM)3 e da transeção do ligamento cruzado anterior (ACLT)4, que perturbam a estrutura normal da articulação, resultando em degeneração da cartilagem e alterações semelhantes à OA. Alternativamente, modelos químicos dependem da injeção intraarticular de agentes que degradam a matriz extracelular (por exemplo, colagênase ou iodoacetato monosódico), levando à rápida morte dos condrócitos e erosãoda cartilagem 5,6. Enquanto modelos de injeção normalmente alcançam a patologia final em poucas semanas, modelos cirúrgicos geralmente exigem um período mais longo.

Entre as técnicas cirúrgicas disponíveis, selecionamos e refinamos ainda mais o modelo Hulth devido ao seu início acelerado daOA 7. Ao combinar a transeção dos ligamentos cruzado anterior e cruzado posterior com resseção do ligamento colateral medial e meniscectomia total medial, esse modelo induz de forma confiável danos graves e progressivos à cartilagem e alterações ósseas subcondrais. O curto período até a falha da articulação estrutural torna o modelo Hulth modificado particularmente adequado para estudos de artrite ardomia aguda ou subaguda, e propomos que nosso protocolo otimizado ofereça uma plataforma prática e reprodutível para futuras investigações pré-clínicas.

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Protocolo

Todos os procedimentos experimentais foram aprovados pelo Comitê de Ética Animal da Universidade de Medicina Tradicional Chinesa de Xangai. Machos C57BL/6 camundongos com idades entre 6 e 8 semanas e pesando aproximadamente 20 g foram adquiridos de fornecedores comerciais (ver Tabela de Materiais) (número de aprovação ética: PZSHUTCM2312210005).

1. Cuidados pré-operatórios

  1. Permita que os camundongos se aclimatem por pelo menos 1 semana antes da cirurgia.
  2. Esterilize todos os instrumentos cirúrgicos antes da cirurgia e desinfete o espaço de trabalho cirúrgico.
  3. Ligue a máquina de anestesia gasosa e coloque o rato em uma câmara de indução por 5 minutos usando isoflurano a 2-3% para iniciar a anestesia geral.
    NOTA: Certifique-se de que a taxa de fluxo de oxigênio seja mantida entre 0,5 NL/min e 1 NL/min.
  4. Após a anestesia, transfira o camundongo para a plataforma cirúrgica e mantenha a anestesia usando isoflurano 1-1,5% via máscara anestésica até a conclusão da cirurgia (isoflurano 1-1,5%).
  5. Posicione o rato em posição supina com as articulações do joelho voltadas para cima, garantindo estabilidade e acesso adequado ao local cirúrgico.
  6. Confirme a profundidade da anestesia verificando a ausência de reflexos, depois aplique creme depilatório para remover completamente os pelos ao redor da articulação do joelho.
  7. Remova cuidadosamente o creme residual usando gaze ou cotonetes, depois desinfete a pele exposta primeiro com etanol 75%, seguido de tintura de iodo para garantir condições assépticas.

2. Procedimento cirúrgico (Figura 1)

  1. Estenda o membro traseiro do rato e aplique tração para apertar a pele. Faça uma incisão longitudinal de 0,5 a 1 cm ao longo da face medial da articulação do joelho direito usando uma lâmina cirúrgica estéril.
    NOTA: Todos os procedimentos cirúrgicos descritos abaixo foram realizados sob um microscópio cirúrgico.
  2. Retrair a pele e realizar uma dissecação romba da fáscia subjacente para expor totalmente a cápsula articular e visualizar o ligamento patelar.
  3. Sonde e incisa a fáscia sobre o ligamento colateral medial (LCM), usando uma agulha fina de injeção.
  4. Transecte o LCM usando microtesouras sob ampliação.
  5. Deslocar o ligamento patelar usando uma agulha para expor o espaço intraarticular e identificar o menisco medial.
  6. Transecte o ligamento meniscotibial medial (MMTL) com microtesoura após o corte e sonde suavemente o tecido com uma agulha para confirmar o descolamento completo e a mobilidade do menisco.
  7. Identifique e transeite o ligamento cruzado anterior (LCA), tomando cuidado para evitar danos ao ligamento cruzado posterior (LCP) ou ao menisco lateral. Isso normalmente resulta em um sinal positivo da gaveta anterior após a cirurgia, confirmando instabilidade articular.
    NOTA: Teste da gaveta: Antes do fechamento da ferida, o fêmur era estabilizado com uma mão enquanto o tornozelo era segurado com a outra, mantendo a tíbia e o fêmur em orientação perpendicular. O deslocamento anteroposterior relativo entre tíbia e fêmur foi aplicado manualmente; Movimento translacional observável indicou sinal positivo de Drawer, confirmando a ruptura do ligamento cruzado.
  8. Para induzir osteoartrite mais grave, alternativamente, realiza-se a transseção simultânea tanto do ligamento cruzado anterior (LCA) quanto do ligamento cruzado posterior (LCP), combinada com meniscectomia medial (TMM) (como no modelo clássico de Hulth).
    NOTA: Esta etapa é opcional e pode ser realizada conforme necessário; se selecionado, isso constitui a abordagem de modelagem do modelo clássico Hulth.

3. Cuidados pós-operatórios

  1. Feche a incisão com pontos de nylon 4-0 e desinfete o local cirúrgico com tintura de iodo.
  2. Coloque o mouse em uma almofada térmica controlada até que ele recupere a consciência e apresente respiração e atividade motora normais. Quando estiver totalmente recuperado e sem sinais de sofrimento, devolva-o à gaiola de origem.
  3. Monitore a integridade dos pontos continuamente por 3 a 5 dias após a cirurgia. Se houver quebra do ponto, reanestesie o rato e realize a sutura novamente
  4. Administre antibióticos intramusculares por até 3 dias após a cirurgia para prevenir infecções pós-operatórias.
    NOTA: A administração de antibióticos é empregada para profilaxia contra infecção pós-operatória. A analgesia pós-operatória é determinada por objetivos experimentais; Na pesquisa com osteoartrite, os analgésicos geralmente são retidos durante a fase aguda para evitar avaliações de eficácia terapêutica confusas.
  5. Monitore diariamente o local cirúrgico em busca de sinais de inchaço, corrimento ou inflamação local.
  6. Eutanasie o camundongo no ponto final do estudo, seguindo protocolos aprovados, e disseque a articulação do joelho para análise histológica ou de imagem.
    NOTA: Nesta etapa, adotamos o protocolo de eutanasia dos animais experimentais por overdose de anestesia. Isso foi alcançado por injeção intraperitoneal de solução de sódio pentobarbital em uma dosagem de >100 mg/kg em camundongos.

4. Avaliação do desenvolvimento do AO

  1. Antes da eutanásia, avalie o inchaço da articulação e realize ultrassonografia para avaliar as alterações estruturais na articulação do joelho. Avalie o desempenho motor do mouse realizando o teste rotativo.
    NOTA: Anestesia com isoflurano é necessária para exame ultrassonológico em camundongos.
  2. Após a eutanásia, disseque a articulação do joelho e remova cuidadosamente o músculo e a fáscia ao redor, preservando a tíbia, fíbula e fêmur.
    Fixe as articulações e descalcifique-as em solução de ácido etilenediaminêtico (EDTA) a 10% por pelo menos 30 dias, substituindo a solução duas vezes por semana para garantir a descalcificação completa.
  3. Embutida as articulações descalcificadas do joelho em parafina e prepare seções sagitais com espessura de 4μm 8.
  4. Comece a coletar seções assim que o menisco estiver claramente visível. Tinga as seções com safranina O e verde rápido para visualizar a morfologia da cartilagem e do osso subcondral. Avalie a degradação da cartilagem usando o sistema de pontuaçãoOARSI 9 .
  5. Procedimento de coloração Safranin O-Fast Green (Kit comercial utilizado, veja Tabela de Materiais)
    1. Desparafinização e reidratação
      1. Desparafinize seções em xileno por 3 minutos, repita 3 vezes.
      2. Reidrate por uma série graduada de etanol (100%, 90%, 80%) para remover o xileno residual, 2 minutos cada.
        NOTA: Séries de etanol devem ser usadas em ordem decrescente de concentração.
      3. Enxágue em água destilada por 1 minuto e escorra brevemente.
    2. Coloração de Hematoxilina de Ferro de Weigert
      1. Aplique a solução de trabalho da Weigert nas seções, tinga por 5 minutos.
      2. Enxágue em água destilada por 1 minuto e escorra brevemente.
    3. Diferenciação ácida
      1. Aplique a solução diferenciadora de ácido em seções por 15 segundos.
      2. Lave com água por 10 minutos e drene o excesso de água.
        NOTA: O tempo de diferenciação é crítico — diferenciação prolongada impede uma mancha rápida de verde, enquanto diferenciação insuficiente resulta em coloração verde profunda e rápida com pouca absorção de safranina
    4. Coloração Fast Green
      1. Aplique solução verde rápida nas seções por 5 minutos, escorra brevemente.
      2. Aplique uma solução ácida fraca para remover a mancha verde rápida residual por 15 segundos e drene brevemente.
    5. Coloração Safranin O
      1. Aplique solução de Safranin O nas seções por 4,5 min.
      2. Transfira rapidamente as seções para etanol 90% para remover o excesso de safranina O, 2-3 s.
        NOTA: Esta etapa pode ser estendida adequadamente dependendo da intensidade da coloração de safranina.
    6. Desidratação e limpeza
      1. Desidrate as seções em etanol 100% por 1 minuto.
      2. Limpe as seções em xileno para desidratação completa, 2 minutos, repita 3 vezes.
        NOTA: O xileno usado nesta etapa não deve ser misturado com o usado na Seção 4.5.1; A contaminação cruzada pode comprometer a qualidade da seção.
    7. Montagem com balsâmico neutro
      1. Coloque seções em uma exaustão para permitir a evaporação do xileno excessivo.
      2. Remova as seções, aplique a quantidade adequada de bálsamo neutro ao espécime e cubra cuidadosamente com uma capa de cobertura.
      3. Examine as seções sob um microscópio óptico em busca de bolhas de ar e elimine cuidadosamente qualquer uma disponível.
      4. Guarde as seções em uma caixa de slides e coloque em um forno a 60 °C por 24 horas para garantir a cura completa do bálsamo neutro.

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Resultados

Escaneamentos longitudinais da articulação do joelho foram realizados usando um sistema demicro-ultrassom 8 com passo de varredura de 4 mm e resolução axial de 0,04 mm. No dia pós-operatório 7, a reconstrução 3D revelou um aumento significativo no volume da cavidade articular no grupo modelo em comparação com o grupo simulado (Figura 2A,B). Testes de fadiga rotativa 10,11

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Discussão

Comparando com outros métodos de modelagem cirúrgica, como a desestabilização do menisco medial (DMM) e a transeção do ligamento cruzado anterior (ACLT), o modelo Hulth modificado induz osteoartrite por lesão ligamentar e meniscal combinada. A ruptura estrutural específica determina alterações na biomecânica articular em diferentes planos. OACLT 4 compromete a estabilidade rotacional (rotação interna e externa) e reduz a estabilidade anteroposterior, resultando em...

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Divulgações

Os autores declaram não haver interesses concorrentes.

Agradecimentos

Este estudo foi financiado pelo Plano de Ação para Inovação em Ciência e Tecnologia em Xangai (23YF1447900 para CJM), pelo Programa Chenguang da Fundação de Desenvolvimento Educacional de Xangai e pela Comissão Municipal de Educação de Xangai (23CGA53 para CJM), e pela Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (U24A6013 a XH).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Seringa de injeção de 1 mL//Especificações: 30 G e vezes; 0,13 mm
Sistema de Imagem de Ultrassom 3D Vevo 3100ÓpticaVevo 2100Um sistema de imagem por ultrassom de alta frequência integrado ao software Vevo LAB para análise de dados.
Sutura de nylon 4-0//
75% de etanolShanghai Titan Scientific Co., Ltd.G73537O
C57BL/6J camundongos machos (6-8 semanas de idade)Shanghai Jiesijie Laboratory Animal Co., Ltd./
Creme depilatórioVeetLote: C021123001
Tintura de iodo//
IsofluranoRWD R650-IE
Micro pinçasRWD F12013-10
Micro tesourasRWD S11035-08
Safranin O modificado e kit de mancha verde rápidaSolarbioG1371
Suporte de agulhaRWD F21001-12
Lâminas cirúrgicas (10#)RWD S31010-01
Microscópio cirúrgicoOlympusSZ61

Referências

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  2. Chen, D., et al. Osteoarthritis: toward a comprehensive understanding of pathological mechanism. Bone Res. 5, 16044(2017).
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  9. Glasson, S. S., Chambers, M. G., Van Den Berg, W. B., Little, C. B. The OARSI histopathology initiative - recommendations for histological assessments of osteoarthritis in the mouse. Osteoarthritis Cartilage. 18 (Suppl 3), S17-S23 (2010).
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