Artigo de método

Regime de Exercícios Estruturados em Hipertensão Pulmonar - Falência Ventricular Direita em um Modelo Ovino

DOI:

10.3791/70664

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5 de maio de 2026

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1Department of Cardiac Surgery, Vanderbilt University Medical Center, 2Vanderbilt University, 3Department of Pulmonary Medicine, Vanderbilt University Medical Center, 4Department of Thoracic Surgery, Vanderbilt University Medical Center, 5Department of Biomedical Engineering, Vanderbilt University

Neste artigo

Resumo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este manuscrito descreve o regime estruturado de exercícios desenvolvido para estudar os efeitos do exercício na fisiopatologia da hipertensão pulmonar — insuficiência cardíaca ventricular direita em um modelo ovino.

Resumo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

A insuficiência cardíaca direita (RHF) é uma causa significativa de morbidade e mortalidade devido à hipertensão pulmonar (HP). Para compreender melhor a fisiopatologia e as implicações do estresse induzido pelo exercício, implementamos um regime de exercícios para caracterizar ainda mais essa doença, utilizando nosso modelo ovino previamente desenvolvido de hipertensão pulmonar crônica com insuficiência ventricular direita (PH-RVF). Para isso, oito ovelhas cruzadas de Dorset passaram pelo modelo PH-RVF por ligadura da artéria pulmonar esquerda (LPA) e oclusão progressiva da artéria pulmonar principal (MPA) com um manguito inflável. As linhas de pressão do manguito e do ventrículo direito (RV) foram tuneladas subcutâneamente até uma porta para acesso. Ao longo de oito semanas, cada ovelha passou por um regime semanal de exercícios e uma verificação de manguito (CC). O regime de exercícios consistia em velocidades de trabalho e de recuperação por 10 minutos cada. Durante o exercício, acessamos ambos os portos para transduzir a pressão do manguito, a hemodinâmica e coletar gases sanguíneos do RV. Ao término do exercício, o manguito PA foi inflado entre 150-200 mmHg para aumentar a pós-carga do RV. Um gasometria de sangue por CC e RV foram realizados alguns dias após a inflação para confirmar a pressão do manguito e garantir a compensação. Ao longo de oito semanas, o SvsO 2 permaneceu relativamente estável na intensidade máxima na semana 1 vs semana 8: 62,7 ± 4,5% contra 69,8 ± 4,0%, apesar do RVSP ter aumentado da semana 1 para a semana 8: 78 ± 8 mmHg contra 96 ± 8 mmHg. Além disso, a distância percorrida aumentou da semana 1 para a 8: 1390 ± 297 m contra 1834 ± 189 m, apesar da pressão do manguito PA na semana 8 ter aumentado para 777 ± 98 mmHg. Isso sugere que, apesar do aumento da pós-carga do RV, o exercício pode ajudar em uma resposta adaptativa e compensação ao exercício no contexto da PH-RVF. Esse regime de exercícios fornece informações inovadoras sobre os efeitos do exercício na PH-RVF e possibilita estudos complexos da fisiologia do exercício em um modelo animal grande da PH-RVF.

Introdução

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A hipertensão pulmonar (HP) é uma doença complexa que causa uma ampla variedade de sintomas. Os sintomas podem ser leves, como dispneia e intolerância ao exercício, até graves, como declínio respiratório e falência evidente do ventrículo direito (FRV)1. À medida que a pós-carga do coração direito aumenta, o ventrículo direito (VD) começa a se dilatar, causando disfunção sistólica e redução da fração de ejeção. Essa incompatibilidade na demanda e na produção cardíaca torna intoleráveis as atividades da vida diária e exercícios, levando tanto ao declínio físico quanto mental. Anteriormente, o exercício em situações de hipertensão pulmonar era considerado prejudicial2. Recentemente, muitos estudos demonstraram que um programa de reabilitação pulmonar com exercícios pode reduzir a dispneia e melhorar a qualidade de vida tanto física quanto mentalmente 2,3,4. No entanto, o estudo do exercício em pacientes com HP tem sido limitado àqueles com doença estável devido à possível descompensação cardiopulmonar.

A descompensação rápida é uma complicação temida da PH-RVF. Algumas pessoas com HP podem ter um período de compensação adequada e apresentar apenas sintomas leves, com a descompensação ocorrendo lentamente ao longo de meses a anos. Outros, infelizmente, podem ter um HP mais severo e podem se descompensar rapidamente com qualquer tipo de esforço. O exercício pode agravar a doença e causar colapso cardiopulmonar rápido devido a um ciclo de aumento da demanda metabólica do VD, fração de ejeção reduzida e isquemia contínua do VD. Essa é uma complicação muito séria porque pacientes que desenvolvem FRVF descompensada precisam de internação hospitalar e têm taxas de mortalidade de até 40%. A HP pode afetar pessoas de qualquer idade, com a maioria dos casos desenvolvendo doença cardíaca esquerda (Grupo 2) e doença pulmonar (Grupo 3). Em casos raros, a HP pode se desenvolver por causas idiopáticas e é mais comum em mulheres na quarta década de vida (Grupo 1)6. Embora a progressão da doença possa ser temperada com o manejo médico, não existe uma cura farmacológica definitiva. Uma vez que os pacientes atingem a RVF em estágio terminal, o único tratamento definitivo é o transplante de pulmão ou coração epulmão 7.

Devido à morbidade e mortalidade da HP e da subsequente FRV, anteriormente criamos um modelo clinicamente relevante de PH-RVF em ovelhas para desenvolver novasterapias 8. Neste modelo, ligamos a artéria pulmonar esquerda (LPA) e colocamos um manguito inflável que servia como oclusor vascular ao redor da artéria pulmonar principal (MPA). Ao longo de 8 semanas, aumentamos a pressão dentro desse braço para diminuir o fluxo pela artéria pulmonar principal, aumentar a pós-carga do RV e induzir a remodelação do RV. Esse modelo foi desenvolvido ainda mais ao incorporar um regime de exercícios para estudar melhor a interação entre HP e exercício. Esse protocolo é único porque captura mudanças nos parâmetros hemodinâmicos, como pressão sistólica do ventrículo direito (RVSP) e frequência cardíaca (FC), em tempo real. O sangue de RV foi usado como substituto para sangue venoso misto para analisar mudanças em SvsO 2 e comparar a extração de oxigênio em diferentes velocidades de exercício. O regime de exercícios e os métodos de aquisição de dados são descritos abaixo como um recurso para que os pesquisadores desenvolvam melhor compreensão da complexa fisiopatologia da PH-RVF.

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Protocolo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

O Comitê Institucional de Cuidado e Uso de Animais do Vanderbilt University Medical Center aprovou o seguinte protocolo. Os procedimentos descritos foram realizados de acordo com o Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório do Conselho Nacional de Pesquisados EUA 9. Todas as ovelhas eram de espécies cruzadas de Dorset, fêmeas, pesavam entre 55 e 65 kg e tinham entre 1 e 2 anos de idade. Veja a Figura 1 para a linha do tempo completa do regime e o protocolo das sessões de exercícios.

1. Aclimatação na esteira

  1. Após a quarentena adequada dentro do local e antes da cirurgia, comece a aclimatação na esteira.
  2. Transfira as ovelhas para a sala de exercícios por meio da gaiola de transporte.
  3. Coloque a cabeira na ovelha e conduza suavemente a ovelha até a esteira.
  4. Depois que a ovelha estiver confortável, peça para ela colocar as patas dianteiras na caixa da esteira e amarrar o cabresto na frente da esteira.
  5. Ligue a esteira, ajuste o botão de velocidade para a posição mais baixa de 10 e incentive as ovelhas com comida aprovada para animais.
  6. Enquanto a esteira funciona, apenas as patas traseiras da ovelha devem se mover, pois as patas dianteiras estão apoiadas na caixa da esteira (Vídeo Suplementar 1).
  7. Depois de um minuto caminhando, desligue a esteira. Repita ligar a esteira e passear com a ovelha por um minuto, aumentando a velocidade para 30.
  8. Repita os passos 1.2–1.7 duas a três vezes antes da cirurgia.

2. Modelo cirúrgico para iniciar o modelo PH-RVF

  1. Consulte nossa publicação anterior que fornece detalhes sobre essa cirurgia, bem como a manutenção regular e titulação do manguitoPA 8. No entanto, esse protocolo inclui os passos principais dessa primeira cirurgia para que o leitor possa melhor contextualizá-los durante o exercício.
  2. Exposição cirúrgica
    1. Realize uma mini toracotomia anterior esquerda.
    2. Retrair o pulmão esquerdo e incisar longitudinalmente o pericárdio para expor as estruturas-chave: o ventrículo direito e a artéria pulmonar.
  3. Ligação da LPA e colocação do ocludor da MPA
    1. Dissecar ao redor do PA principal e isolá-lo.
    2. Siga a PA principal até a bifurcação para expor a LPA. Depois, isole e liga a LPA com fita umbilical.
    3. Coloque o ocludor vascular de silício resistente e as sondas de fluxo perivascular ao redor da AMP. Esse oclusor também é chamado de manguito PA.
  4. Linha de pressão para RV
    1. Siga a artéria da MPA pela parede livre do trato de saída do RV para localizar o RV.
    2. Selecione um local onde uma linha de pressão possa ser fixada no meio do motorhome. Essa linha será usada para transduzir pressões de RV e coletar amostras de gases sanguíneos.
      NOTA: O gasosangue coletado do motorhome servirá como um gás venoso misto substituto. Enquanto o sangue do PA é sangue venoso misto verdadeiro, o sangue do RV também é uma mistura de sangue da circulação sistêmica e do seio coronário. Na ausência de derivação intracardíaca, a diferença entre SvsO 2 em relação a uma fonte de PA ou RV é desprezívelde 10,11.
  5. Tunelamento no porto
    1. Passe a pressão do VD e as linhas oclusoras do PA através de um espaço intercostal abaixo da incisão e faça um túnel na camada subcutânea até o dorso esquerdo da ovelha.
    2. Conecte ambas as linhas a duas portas separadas e fixe as portas sob uma camada de tecido subcutâneo. A porta de som ficará mais próxima da cabeça e a porta do motorhome mais próxima da cauda.

3. Recuperação pós-operatória

  1. Permita que a ovelha se recupere por 1 semana após a cirurgia, com controle adequado da dor e antibióticos conforme o protocolo.
  2. Quando a ovelha se recuperar adequadamente, prossiga com a primeira sessão de exercícios.

4. Prepare-se para sessão de exercícios e checagem de punho

  1. Faça lavagens de heparina que serão necessárias para a lavagem elétrica da linha do motorhome.
    1. Faça 3 flushings normais de soro.
    2. Remova 1 mL de soro fisiológico normal das lavagens.
    3. Adicione 1 mL de heparina (1000 unidades) às seringas.
    4. Repita esse processo para fazer 3 flushs.
  2. Reúna suprimentos para amostras de gases sanguíneos, uma máquina para coleta de dados e amostras de laboratório.
    1. Prepare duas seringas de 10 mL: uma será usada para resíduos e a outra para remover 10 mL de sangue para análises (hemograma completo, CMP).
    2. Prepare cinco seringas de 1 mL para amostras de gases sanguíneos a serem analisadas na máquina arterial de gases de sua escolha.
  3. Administre heparina e alteplase.
    1. Use uma seringa de 5 mL para extrair 5 mL de heparina (5000 unidades) que serão usadas para travar a linha do motorhome ao final do exercício ou para a verificação do manguito para evitar coagulação.
    2. Alteplase só será necessária se a linha do RV estiver coagulada ou se a forma de onda estiver amortecida.
    3. Se for necessário alteplase, será necessário reconstituí-lo com 2,2 mL de água estéril para produzir 2 mg de alteplase.
  4. Configure o acesso à linha do PA cuff (Figura 2).
    1. Adquira uma seringa de 1 mL e uma de 5 mL.
    2. Usando uma agulha pequena (20–22 G), encha ambas as seringas com soro fisiológico hipertônico. Use a seringa de 1 mL para inflar o manguito e a seringa de 5 mL para preparar a linha.
    3. Adquira um transdutor de pressão e conecte a extremidade Luer fêmea do tubo de pressão (pelo menos 36 polegadas) à extremidade Luer macho do transdutor.
    4. Certifique-se de que a extremidade inferior Luer do transdutor esteja tapada (Figura 2A).
    5. Conecte a extremidade macho do tubo de pressão à conexão Luer fêmea, que possui a tampa branca em uma torneira de três vias.
    6. Conecte uma agulha Huber 22-G na extremidade macho da torneira de três vias.
    7. Usando a seringa de 5 mL de soro fisiológico hipertônico, acesse a porta do transdutor de pressão e abra-a no conjunto de agulhas Huber.
    8. Lave a linha de pressão e a agulha de Huber até que o soro fisiológico hipertônico saia da agulha.
    9. Gire a torneira de três vias em direção à agulha Huber para travar a torneira e garantir que nenhum ar entre na linha de acesso ao punho do PA (Figura 2B). Gire a torneira de registro de três vias em direção à tampa azul para abrir o acesso ao punho (Figura 2C).
  5. Configure o acesso à linha de trailers.
    1. Retire 2 mL de soro fisiológico normal de um saco de 1 L de soro fisiológico normal e adicione 2 mL de heparina (2000 unidades) para uma concentração total de 2 unidades/mL.
    2. Coloque a bolsa de soro fisiológico normal em uma bolsa de pressão e uma bolsa de acesso com um espigão intravenoso.
    3. Gire a torneira de registro de três vias do saco de pressão para que o cabo fique perpendicular ao tubo, depois infle o saco usando a bomba manual até que o indicador de pressão fique verde em aproximadamente 250 mmHg.
    4. Gire a torneira de três vias em direção ao saco para manter a pressão e coloque o saco no poste do soro a cerca de 2 m do chão.
    5. Conecte a extremidade macho da linha IV na bolsa de pressão à extremidade fêmea do transdutor de pressão.
    6. Conecte a extremidade Luer fêmea do tubo de pressão (pelo menos 36 polegadas) à extremidade macho do transdutor.
    7. Conecte a extremidade macho do tubo de pressão à conexão Luer fêmea em uma torneira de parada de três vias.
    8. Conecte uma agulha Huber de 22 G na extremidade macho da torneira de registro de três vias.
    9. Abra a linha do saquinho de heparina e lave toda a linha até que o soro fisiológico heparinizado saia da agulha Huber. Trave a torneira de três vias conectada à agulha Huber girando-a em direção à agulha Huber para garantir que nenhum ar entre na linha de acesso ao porto do RV.
  6. Transfira as ovelhas.
    1. Transfira as ovelhas para a sala de exercícios por meio da gaiola de transporte.
    2. Leve delicadamente a ovelha até a esteira e coloque uma cabeira sobre ela.
    3. Use uma cabrestante para manter as ovelhas na frente da esteira, com as patas dianteiras em uma pequena caixa.
  7. Acesse as portas da Pensilvânia e RV.
    1. Palpe os portos e encontre o centro do porto, limpando bem a pele superior com lenços alcoólicos.
    2. Acesse a porta de PA com uma agulha Huber.
    3. Repita os passos 4.7.1 e 4.7.2 para acesso à porta de RV.
  8. Configuração final do computador.
    1. Ligue o computador, abra o LabChart e use as especificações nos métodos suplementares (Arquivo Suplementar 1, Figura Suplementar 1, Figura Suplementar 2 e Figura Suplementar 3) para configurar os seguintes canais: Manguito PA, Pressão VD, Pressão Sistólica Vd e Frequência Cardíaca (Figura 3A).
    2. Certifique-se de que tudo seja acessado corretamente com a porta PA mais próxima da cabeça e a porta RV mais próxima da cauda (Figura 3B).
    3. Os transdutores devem estar entre o computador e a ovelha, com os transdutores no nível do coração da ovelha (Figura 3C).
    4. Conecte ambos os transdutores de pressão ao cabo de interface e zeroe/calibre os transdutores conforme especificado nos métodos suplementares (Arquivo Suplementar 1, Figura Suplementar 1, Figura Suplementar 2 e Figura Suplementar 3).

5. Acesso ao porto

  1. Certifique-se de que o passo 4.8 esteja concluído e clique em Start no canto superior direito da janela do software para começar a gravar o software de aquisição de dados para capturar formas de pressão de manguito de RV e PA a 400 Hz.
  2. Abra a manguita do PA girando a torneira para cima para transducir a forma de onda de pressão do manguito do PA (Figura 4A) e então desligue a torneira em direção à ovelha para fechar a forma de onda (Figura 4B).
    1. Mantenha a torneira de registro para pressão do punho do PA desligada na maior parte do tempo para garantir que a manguita não desinche devido a altas pressões.
  3. Coloque um dos flushes de heparina na torneira de registro de três vias para a linha do RV e encha a linha com toda a descarga na porta do RV.
  4. Puxe suavemente a seringa até o retorno do sangue escuro.
    1. Se for difícil retirar sangue, faça um lavagem rápida com mais 5–10 mL de soro fisiológico heparinizado e depois retire com uma seringa grande e vazia, como 20 mL ou 30 mL.
    2. Se a obstrução persistir, injete 1–2 mg de alteplase na linha e espere cerca de 10 minutos.
  5. Abra a torneira de três caminhos conectada à linha do RV para transducir a pressão e a forma de onda do RV. As formas de onda variam em repouso, exercício e velocidade de recuperação (Figura 4C).

6. Rotina de exercícios

  1. Colete sangue para o gasometria base em velocidade inicial 0 fechando a torneira de registro em direção ao transdutor e use uma seringa vazia de 10 mL para retirar 10 mL de sangue do RV para resíduos, e depois 0,2–0,4 mL de sangue do RV com uma seringa de 1 mL para a amostra de sangue.
  2. Use a amostra de 1 mL de sangue do VD para análise de gasometria e depois devolva 10 mL de sangue para o carneiro.
  3. Gire a torneira para a posição para cima. Lave a linha do RV puxando a aba azul do transdutor de pressão do RV para abrir a válvula até que todo o sangue tenha saído da linha de pressão.
  4. Comece a velocidade do primeiro exercício no botão 30 da esteira, que é 0,46 m/s por 10 minutos.
  5. Durante os 10 minutos, abra periodicamente a linha do manguito do PA para transduzir as pressões do punhal.
  6. Perto do final dos 10 minutos, obtenha gasometria realizando os passos 6.1–6.3.
  7. Repita os passos 6.1–6.6 para configurações de esteira de 40 (0,78 m/s), 50 (1,1 m/s), 30 e 0.
  8. Ao final da sessão de exercícios, use 1 mL de soro fisiológico hipertônico para inflar o manguito em 150–200 mmHg.
  9. Transduza a pressão do motorhome por alguns minutos após a inflação para garantir que a ovelha tolere a inflação.

7. Desconexão das portas

  1. Remova rapidamente a agulha Huber da porta do manguito do PA para evitar vazamento de pressão no manguito.
  2. Injete 5 mL de heparina na linha do RV, mas não lave a linha para que a heparina fique na linha e na porta do RV.
  3. Remova o acesso ao porto do RV rapidamente e limpe ambos os portos com lenços alcoólicos.

8. Verificação de algemas

  1. Transfira as ovelhas para um pequeno recinto.
  2. Repita os passos 4.1–4.8, omitindo os 10 mL extras da seringa do passo 4.2.1, pois os exames só são obtidos durante as sessões de exercício.
  3. Repita os passos 5.1–5.5 e transduza a pressão do manguito PA e a forma de onda do RV.
  4. Colete sangue da porta do RV conforme descrito nos passos 6.1–6.3.
  5. Abra a linha do braço do PA para garantir que o manguito PA esteja mantendo a pressão do enchimento da sessão anterior, girando a torneira perpendicular à linha de pressão.
  6. Infle o braço PA conforme necessário seguindo o passo 6.8 para reinflar até a pressão do manguito obtida na sessão de exercícios daquela semana.
  7. Transduza a pressão do motorhome por alguns minutos após a inflação para garantir que a ovelha tolere a inflação dos punhos.
  8. Siga os passos 7.1–7.3 para concluir a verificação do punho.

9. Completar todo o regime

  1. Repita os exercícios e as verificações do manguito semanalmente ao longo de 8 semanas (Figuras 1A,B).

10. Terminar a sessão de exercícios mais cedo

  1. Se durante o exercícioS vO 2 cair abaixo de 30% ou se o SvO 2 de base estiver abaixo de 50%, encerre imediatamente a sessão e desinche o braço para mitigar o risco de descompensação aguda e irreversível da ovelha.
  2. Além disso, se o animal apresentar sintomas de palidez, taquipneia, grunhidos, rangido de dentes ou respiração pela boca, encerre a sessão de exercícios e desinche o manguito. Esses podem ser sinais iniciais de descompensação.

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Resultados

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Todos os dados são representados como media±SEM. Ao longo de oito semanas, o SvsO 2 permaneceu relativamente estável na velocidade máxima na esteira na semana 1 vs semana 8: 62,7 ± 4,5% contra 69,8 ± 4,0% (Figura 5A), apesar do RVSP ter aumentado da semana 1 para a semana 8: 78 ± 8 mmHg contra 96 ± 8 mmHg (Figura 5B). A distância percorrida durante o exercício aumentou da semana 1 para a semana 8: 1390 ± 29...

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Discussão

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

O modelo PH-RVF apresentado para ovelhas foi atualizado em relação à versão anterior, combinando-o com uma plataforma de exercícios na esteira para estudar a interação entre exercício e desenvolvimento de doenças8. Como cada animal pode responder de forma diferente à inflação dos punhos, para um condicionamento consistente entre os animais, as velocidades da esteira durante a sessão de exercício foram ajustadas para incluir velocidades de trabalho e de recuperação...

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Divulgações

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Os autores não têm conflitos de interesse a revelar.

Agradecimentos

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este trabalho foi financiado pelas seguintes instituições e prêmios: National Institutes of Health R01HL171577, National Institute of General Medical Sciences da bolsa NIH T32 GM007347, bolsa T3 HL160508 2 dos National Institutes of Health, Prêmio Vanderbilt Faculty Research Scholar, Prêmio de Independência Docente Inicial do Segundo Século da American Heart Association 24SCEFIA1255079, Fundo de Pesquisa Cardiotorácica do Centro Médico da Universidade Vanderbilt, Centro Médico da Universidade Vanderbilt: Fundo Sra. Shelley F. Kleiner e Dr. Fredric Kleiner, Centro Médico da Universidade Vanderbilt, Fundo de Pesquisa Sra. Dorothy Thomas e Fundo Memorial de Transplante de Pulmão David M. Livingston do Centro Médico da Universidade Vanderbilt. Além disso, esse trabalho não teria sido possível sem o Programa de Cuidados e Uso de Animais da Universidade Vanderbilt e a equipe do Laboratório S.R. Light: Jamie Adcock, Susan Fultz, Azia Tanks e Eiman Barsoum para seu suporte técnico.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
0.9% Normal Saline, 1000 mLBaxter Healthcare Corp0338-0049-04Medicação, PH Crônico
16 mm Heavy Duty Occluder with actuating tubingAccess TechnologiesOC-16HDDescartável, PH Crônico
70% isopropyl alcohol prep padsMedlineMDS090670Descartável, PH Crônico
Aluminum Lamb and Goat TreadmillLivestock Performance Products DC314Equipamento
Bags, Infusion: Nonsterile Novaplus Infusion Bag, 500 mLMedlineTCV4005HDescartável, PH Crônico
Blue ClaveMedlineBOPC1000Descartável, PH Crônico
Cathflo Activase (alteplase) 2 mgCathfloNDC 50242004164Medicação, PH Crônico
Computer Dell Lattitude 7400Equipamento
Data acquisition hardwareADInstrumentsPowerLab 16/30Equipamento
EPOC Point-of-care blood gas analyzerSiemens HealthineersSiemens-Epoc-REquipamento
Flow MeterTransonichttps://www.transonic.com/tubing-flow-meters-manufacturers
Gauze Sponges: Sterile X-ray Compatible Gauze Sponges, 16-Ply, 4” × 4”MedlinePRM21430LFHDescartável, PH Crônico
GEM 7000 with iQM3Werfen6000228442Equipamento
HeparinFresenius Kabi63323-540-31Medicação, PH Crônico
Hospira Primary IV Sets, 80”Patterson Veterinary07-835-0123Descartável, PH Crônico
Hypertonic saline 3%Baxter Healthcare Corp.0338-0054-03Medicação, PH Crônico
Hypodermic Needle with Bevel and Regular Wall, 20 G × 1”MedlineB-D305175ZDescartável, PH Crônico
Interface Cable, Edwards LifeScience Transducer to ADInstruments Bridge AmplifierFogg System0395-2434Equipamento
Labchart softwareADInstrumentsLabchart 8Equipamento
Needles: Hypodermic Needle with Regular Bevel, Sterile, 18 G × 1.5”MedlineB-D305185ZDescartável, PH Crônico
Octal Bridge AmplifierADInstrumentsFE228Equipamento
Port-A-Cath Huber Needle, Straight, 22 G × 1-1/2”MedlineAAKM21200724Descartável, PH Crônico
Sheep HalterWeaver Livestock 35-7840-S20Equipamento
Sterile Leur-Lock Syringe, 1 mLFisher ScientificBD309628Descartável, PH Crônico
Sterile Luer-Lock Syringe, 10 mLMedlineSYR110010ZDescartável, PH Crônico
Sterile Luer-Lock Syringe, 3 mLMedlineSYR103010ZDescartável, PH Crônico
Sterile Luer-Lock Syringe, 5 mLMedlineSYR105010ZDescartável, PH Crônico
Sterile WaterFresenius Kabi918550Medicação
Stopcock: 3-Way Stopcock with Handle in OFF Position, Rotating Adaptor Male Collar Fitting, 45 PSIMedlineDYNJSC301Descartável, PH Crônico
Transducer clipEdwards LifeScienceTCLIP05Equipamento
Transonic Perivascular Flow Probe (PAU Series)ADInstrumentshttps://www.adinstruments.com/products/perivascular-flowprobes
Transport Cage/ Large Animal CagingAncare ANAT305660SSEquipamento
Trigger Aneroid Gauge (Sphygmomanometer)Patterson Veterinary07-815-0464Equipamento
TruWave Disposable Pressure Transducer Kits by Edwards LifesciencesMedlineVSYPX260Descartável, PH Crônico
Tubing: Pressure Monitoring Tubing with Fixed Male Luer Lock and Female Fitting, Low Pressure, 72” LMedlineDYNJPMTBG72MFDescartável, PH Crônico
Umbilical Tape, Cotton, 3-Strand, 1/8 x 36"MedlineDYNJPMTBG72MFDescartável, PH Crônico

Referências

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Mocumbi, A., et al. Pulmonary hypertension. Nat Rev Dis Primers. 10 (1), 1(2024).
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