Declaração ética
Todos os protocolos experimentais foram revisados e aprovados pelo Comitê de Cuidado e Uso Experimental de Animais do Fuzong Clinical Medical College da Universidade Médica de Fujian e realizados em estrita conformidade com a Declaração da Associação para Pesquisa em Visão e Oftalmologia (ARVO) para o Uso de Animais em Pesquisa Oftalmológica e Visual.
Animais e alocação de grupos
Um total de 72 machos C57BL/6 camundongos (8–10 semanas de idade, peso corporal de 20–25 g) foram obtidos do fornecedor certificado, atendendo aos padrões nacionais para criação de animais de laboratório. Os camundongos foram alojados em gaiolas ventiladas individualmente sob condições ambientais padronizadas, incluindo um ciclo de 12 horas luz/escuro, temperatura controlada (22 ± 2 °C) e umidade relativa (50% ± 10%), com acesso ad libitum a comida e água. Para investigar os efeitos moduladores das vias ALDH2, SIRT1 e ERS no dano retiniano induzido pelo MNU, os camundongos foram alocados aleatoriamente em oito grupos experimentais (n = 9 por grupo; n = 5 para o grupo do segundo dia; n = 4 para o grupo do quarto dia) usando uma sequência de randomização gerada por computador para minimizar o viés de seleção. O resumo gráfico do estudo foi mostrado na Figura 1.
Preparação e regime de tratamento de reagentes
Os reagentes experimentais usados neste estudo foram listados na Tabela de Materiais, com informações detalhadas sobre preparação e dosagem conforme segue. (1) MNU (50 mg/kg): 100 mg de MNU foram dissolvidos em 2 mL de soro fisiológico normal para preparar uma solução de 50 mg/mL. Em seguida, 1,4 mL dessa solução foi diluído com 5,6 mL de soro fisiológico normal até uma concentração final de 10 mg/mL para administração animal. (2) Alda-1 (10 mg/kg): 50 mg de pó de Alda-1 foram dissolvidos em 1 mL de dimetil sulfóxido (DMSO) para preparar uma solução de 50 mg/mL, que foi diluída com 24 mL de soro fisiológico normal até uma concentração final de 2 mg/mL. (3) Daidzin (10 mg/kg): 50 mg de pó de Daidzin foram dissolvidos em 1 mL de DMSO para preparar uma solução de 50 mg/mL, que foi então diluída com 24 mL de soro fisiológico normal até uma concentração final de 2 mg/mL. (4) EX-527 (10 mg/kg): 5 mg de pó de EX-527 foram dissolvidos em 0,1 mL de DMSO para preparar uma solução de 50 mg/mL, que foi diluída com 2,4 mL de soro fisiológico normal até uma concentração final de 2 mg/mL. (5) SRT1720 (10 mg/kg): 5 mg de SRT1720 pó foram dissolvidos em 0,1 mL de DMSO e bem misturados. Em seguida, 400 μL de PEG300, 50 μL de Tween-80 e 450 μL de soro fisiológico normal foram adicionados para preparar uma solução de trabalho de 2 mg/mL. (6) TUN (10 mg/kg): 5 mg de pó de TUN foram dissolvidos em 0,1 mL de DMSO para preparar uma solução de 50 mg/mL, que foi então diluída com 2,4 mL de soro fisiológico normal até uma concentração final de 2 mg/mL. (7) 4-Fenilbutirato (4-PBA; 10 mg/kg): 2 mg de pó de 4-PBA foram dissolvidos em 1 mL de soro fisiológico normal para preparar uma solução de 2 mg/mL. Todos os volumes de administração acima foram de 5 × mililitros M (onde M = peso corporal animal em kg). Depois disso, os camundongos foram divididos em oito grupos com os seguintes protocolos de tratamento:
Grupo controle: Uma única injeção intraperitoneal de soro fisiológico normal.
Grupo MNU: Uma única injeção intraperitoneal de MNU.
Grupo MNU + Alda-1: Injeção intraperitoneal de Alda-1, seguida por uma única administração de MNU 2 horas depois. Alda-1 foi então administrado intraperitonealmente uma vez ao dia.
Grupo MNU + Daidzin: Injeção intraperitoneal de Daidzin, seguida por uma única aplicação de injeção de MNU 2 horas depois. Daidzin foi então administrado intraperitonealmente uma vez ao dia.
Grupo MNU + Alda-1 + EX-527: Injeção intraperitoneal de Alda-1, seguida pela injeção de EX-527 1 hora depois, e injeção de MNU 1 hora depois (administração única). Alda-1 foi então administrado intraperitonealmente uma vez ao dia.
MNU + Alda-1 + grupo TUN: Injeção intraperitoneal de Alda-1, seguida por injeção TUN 1 hora depois, e injeção MNU 1 hora depois. Alda-1 foi então administrado intraperitonealmente uma vez ao dia.
MNU + Daidzin + grupo SRT1720: Injeção intraperitoneal de Daidzin, seguida por SRT1720 injeção 1 hora depois e injeção MNU 1 hora depois. Daidzin foi então administrado intraperitonealmente uma vez ao dia.
Grupo MNU + Daidzin + 4-PBA: Injeção intraperitoneal de Daidzin, seguida pela injeção de 4-PBA 1 hora depois, e injeção de MNU 1 hora depois. Daidzin foi então administrado intraperitonealmente uma vez ao dia.
Monitoramento do peso corporal
A toxicidade sistêmica e os efeitos fisiológicos relacionados ao tratamento foram monitorados registrando o peso corporal de cada camundongo diariamente por quatro dias consecutivos após a administração do MNU. Os pesos foram medidos usando uma balança digital de precisão com precisão de ±0,1 g, e os dados foram documentados para acompanhar tendências de perda ou ganho de peso entre grupos, que serviram como indicadores indiretos de tolerância ao tratamento e estresse sistêmico.
Exame de histopatologia retiniana
Nos períodos do segundo e quarto dias após o experimento, camundongos foram eutanasiados por luxação cervical após anestesia com injeção intraperitoneal (i.p.) de pentobarbital de sódio em uma dose de 50–60 mg/kg de peso corporal, seguindo rigorosamente as diretrizes institucionais de eutanásia. Os olhos, especificamente o esquerdo, foram imediatamente enucleados. Antes da enucleação, foi feita uma pequena incisão no limbo nasal para marcar a orientação. Os globos foram então imersos em 4% de paraformaldeído (PFA) em soro tampão fosfatado (PBS, pH 7,4) por 24 horas a 4 °C para fixação. Os olhos fixos foram então desidratados por uma série graduada de etanol (70%, 80%, 95% e 100%), eliminados em xileno e incorporados em blocos de parafina para processamento histológico. Durante a incorporação, a orientação foi padronizada posicionando o lado nasal marcado para baixo.
Seções seriadas (5 μm de espessura) foram preparadas usando um micrótomo rotativo através da cabeça do nervo óptico (ONH) para garantir amostragem representativa da região central da retina. Especificamente, as seções foram cortadas do lado superior em direção ao ponto nasal marcado, garantindo que todas as seções passassem pelo ONH. As seções eram então montadas em trilhas de vidro carregadas positivamente. A coloração com hematoxilina e eosina (HE) foi realizada de acordo com protocolos padrão. A morfologia retiniana foi avaliada por microscopia óptica com ampliação de 400×. As medições foram feitas sistematicamente da retina temporal a distâncias predeterminadas do ONH: 200, 400, 600, 800, 1000 e 1200 μm. Em cada local, foram medidas a espessura total da retina, o comprimento dos segmentos interno e externo (IS/OS), a espessura da camada nuclear externa (ONL), a espessura da camada plexiforme externa (OPL) e a camada nuclear interna (INL).
Para garantir objetividade e minimizar o viés de medição, foi implementado um rigoroso protocolo de controle de qualidade. Especificamente, cada um dos oito grupos experimentais foi subdividido em cinco ou quatro subgrupos (por exemplo, Subgrupos 1, 2, 3, 4, 5). Cinco ou quatro observadores independentes, cegos para atribuições de grupo, foram designados para medir o mesmo subgrupo correspondente em todos os grupos experimentais (por exemplo, o Observador A sempre mediu o Subgrupo 1 de cada grupo). Em cada ponto de medição, três leituras foram feitas dentro de uma faixa de ~5 μm (por exemplo, a 200 μm, 195 μm e 205 μm) e médias para minimizar erros técnicos. Medições quantitativas foram realizadas usando o software ImageJ (versão 1.54g), e o valor médio da espessura para cada ponto foi calculado para garantir a reprodutibilidade.
Marcadores do metabolismo dos aldeídos
Para avaliar o estresse oxidativo e o metabolismo dos aldeídos, amostras séricas foram analisadas para níveis de MDA e 4-HNE, que são biomarcadores-chave da peroxidação lipídica e do estresse aldeído. Especificamente, todos os camundongos foram anestesiados por injeção intraperitoneal (p) de pentobarbital de sódio em uma dose de 50–60 mg/kg de peso corporal. Após a anestesia profunda dos camundongos, a eutanásia foi realizada por luxação cervical. Imediatamente após a eutanásia, os globos oculares foram enucleados e o sangue retrobulbar foi rapidamente coletado. As amostras foram deixadas coagular em temperatura ambiente por 30 minutos, seguidas por centrifugação a 3.000 × g por 10 minutos. A fração sérica foi cuidadosamente transferida para tubos de microcentrífuga sem enzimas e armazenada a -80 °C até análise subsequente. Os níveis séricos de MDA foram medidos usando kits comerciais de ensaio imunossorvente ligado a enzimas (ELISA) seguindo os protocolos do fabricante. Em resumo, padrões e amostras foram adicionados às microplacas pré-revestidas, incubados com anticorpos primários específicos, lavados para remover materiais não ligados e reagidos com anticorpos secundários conjugados com peroxidase de raiz-forte (HRP). O substrato de tetrametilbenzidina (TMB) foi então adicionado, e a reação foi terminada com ácido sulfúrico. Os valores de densidade óptica (OD) foram lidos a 450 nm usando um leitor de microplacas, e as concentrações de MDA/4-HNE foram determinadas comparando os valores de OD com curvas padrão geradas usando concentrações conhecidas dos analitos.
Análise estatística
Todos os dados foram apresentados como erro médio ± padrão (SE). Dado o pequeno tamanho da amostra (n = 5 para o segundo grupo do dia; n = 4 para o quarto dia), foram empregados os métodos estatísticos do teste Bootstrap. Especificamente, o método de reamostragem Bootstrap (1.000 iterações com substituição) foi usado para estimar intervalos de confiança (IC) de 95% para médias de grupos e para comparar diferenças entre grupos. Para cada desfecho (por exemplo, peso, espessura da retina, níveis de MDA/4-HNE), amostras Bootstrap foram retiradas do conjunto de dados original, e a média foi calculada para cada reamostra. O IC de 95% foi derivado dos percentis 2,5e 97,5 da distribuição bootstrap. A importância foi avaliada indiretamente pela seguinte abordagem, examinando o intervalo de confiança. Se o IC dos resultados do Bootstrap não incluía zero, isso normalmente indicava que a diferença era significativa (assumindo uma comparação de médias entre dois ou mais grupos). As figuras eram geradas usando o software Graphpad (versão 5.01).