19 de agosto de 2009
Ubiquitinação é uma modificação fundamental posttranslational realizado por um conjunto de três enzimas. Mutações dos genes envolvidos nesta modificação estão associadas com diferentes tipos de doenças humanas. Aqui, descrevemos os protocolos para detectar ubiquitinação de proteínas em células cultivadas In vivo e testar In vitro.
Olá, sou Chu do laboratório de Jo no Instituto de Pesquisa Médica de Birmingham. Hoje vamos mostrar um procedimento para detectar a nova uação proteica. Utilizamos este procedimento em nosso laboratório para estudar o parkin ou os ligantes UBI três e seu substrato.
Então vamos começar. Para iniciar este protocolo, transfecte as células com plasmídeos expressando tanto a proteína-alvo quanto uma versão da ubiquitina marcada com um epítopo. Deixe as células crescerem por aproximadamente 40 horas, depois leve-as para a bancada do laboratório; na bancada, aspire o meio líquido e lave as células duas vezes com PBS.
Em seguida, lise as células adicionando 100 microlitros de tampão de lise celular, que contém 2% de SDS por placa de seis centímetros. Agite suavemente cada placa para que o tampão cubra completamente as células. Em seguida, use um espátula celular para coletar as células lisadas e transfira-as para um tubo eppendorf de 1,5 mililitro.
Coloque imediatamente o tubo em um bloco térmico e aqueça as células lisadas por 10 minutos para desnaturar e dissolver ainda mais as proteínas. Após a fervura, utilize um dispositivo de sonicação para fragmentar as células e seu DNA. Este passo torna os lisados celulares menos viscosos.
Após a sonicação, adicione 900 microlitros de tampão de diluição e deixe as amostras em rotação a quatro graus Celsius por 30 a 60 minutos. Após a incubação, centrifugue as amostras diluídas a 20.000 Gs por 30 minutos a quatro graus Celsius para obter as proteínas solúveis. Em seguida, tomando cuidado para não perturbar o precipitado, transfira o sobrenadante para um novo einor.
Por último, meça a concentração de proteína no sobrenadante por um método como o ensaio de Lowry modificado que estamos utilizando aqui. Agora você está pronto para usar uma imunoprecipitação para isolar sua proteína de interesse das demais no sobrenadante. O primeiro passo na imunoprecipitação é preparar as microesferas conjugadas com anticorpos contra a sua proteína de interesse.
Você pode usar esferas conjugadas com anticorpos disponíveis comercialmente ou preparar seu próprio anticorpo imobilizado utilizando ligantes cruzados. Como fizemos aqui, prepare o anticorpo imobilizado em um tampão compatível para obter uma suspensão a 50% para montar a reação de precipitação de aminoácidos. Corte a extremidade fina de uma ponteira de pipeta P200 e transfira de 14 a 20 microlitros de resina para 500 a 1500 microgramas de lisados celulares preparados.
Ajuste a quantidade de lisado celular utilizada de acordo com a eficiência de transfeção das suas células. Deixe a mistura de lisado celular e microesferas girando a quatro graus Celsius durante a noite. Durante esse período, o anticorpo conjugado à microesfera ligar-se-á especificamente à sua proteína alvo.
No dia seguinte, centrifugue as esferas a 5.000 Gs durante cinco minutos a quatro graus Celsius para obter o pellet da sua proteína. Agora ligada às esferas, aspire o sobrenadante e lave a resina duas vezes com o tampão de lavagem de alta salinidade, centrifugando a 5.000 Gs durante cinco minutos. A quatro graus Celsius, centrifugue as esferas pela última vez a 20.000 GS durante 30 segundos e aspire o tampão de lavagem residual.
Agora que você purificou sua proteína de interesse, é hora de realizar a eletroforese em gel de SDS-PAGE. Primeiro, aqueça em banho-maria o resina com duas vezes o volume de tampão de carga SDS para desnaturar as proteínas e conferir-lhes uma carga negativa. Carregue as amostras preparadas em um gel de SDS-PAGE.
Transfira as proteínas do gel para uma membrana utilizando o protocolo do seu laboratório para western blotting. Em seguida, revele o blot com anticorpos contra ubiquitina ou contra a proteína alvo e desenvolva a membrana em filme para visualizar as proteínas ubiquitinadas. Acabamos de mostrar como detectar a ubiquitinação de proteínas em células cultivadas.
Este mesmo experimento pode ser realizado in vitro em um tubo de ensaio. Esta reação tem um volume total de 40 e pode ser realizada em um tubo de PCR. Prepare cada reação da seguinte maneira.
Primeiro, adicione cinco vezes o tampão de UBIQUITINAÇÃO, que contém um TP e o agente redutor DIO três etol, DTT. Em seguida, adicione as enzimas de ubiquitinação E1 e E2. Adicione os substratos, ubiquitina e proteína alvo.
Complete o volume total da reação até 40 microlitros com água como controles. Prepare reações semelhantes na ausência de ubiquitina, E1, E2 ou da proteína alvo. Incube a mistura a 37 graus Celsius por uma hora ou mais.
Interrompa a reação adicionando tampão de amostra para eletroforese em gel de poliacrilamida-SDS. Ferva a amostra por 10 minutos. Carregue as amostras em um gel de poliacrilamida-SDS e prossiga com a análise por blotting imunológico como feito para o experimento in vivo.
Aqui está um exemplo de resultado deste protocolo. Parkinson. Uma proteína associada à doença de Parkinson é a proteína de interesse neste caso. E a faixa quatro mostra parina ubiquitinada.
As manchas fortes típicas ou escadas são mostradas acima do peso molecular da parina não modificada para comparar várias condições experimentais, os níveis celulares de expressão da proteína-alvo não modificada, parina e ubiquitina, que também devem ser considerados para cada condição. Este é um exemplo de ubiquitinação in vitro de parina: a parina purificada por afinidade foi ensaiada para ubiquitinação in vitro na presença de E1 recombinante, E2 e ubiquitina marcada com biotina; a parina ubiquitinada com biotina foi detectada por estreptavidina HRP. A parina ubiquitinada aparece como escadas acima do peso molecular da parina não modificada; as linhas um, dois e quatro são controles que não contêm ubiquitina, E1, E2 e parina, respectivamente.
Nós acabamos de mostrar como detectar proteínas de nova vacinação em células cultivadas. Ao realizar este procedimento, é importante lembrar-se de preparar o lisado celular em condições altamente tamponadas e de diluir o lisado celular antes de adicionar os anticorpos mobilizados. É isso aí.
Obrigado por assistir e boa sorte com seu experimento.
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Este artigo discute o processo de detecção da ubiquitinação de proteínas, uma modificação pós-traducional crucial associada a diversas doenças. Os protocolos descritos são aplicáveis tanto em células cultivadas quanto em condições in vitro.
A detecção robusta da ubiquitinação de proteínas é essencial para elucidar mecanismos regulatórios pós-traducionais que sustentam vias relevantes para doenças em oncologia, neurodegeneração e distúrbios metabólicos. Essa capacidade permite que equipes biofarmacêuticas investiguem a estabilidade, localização e atividade de proteínas-alvo, informando diretamente a validação de alvos e a redução de riscos mecanicistas. A integração da detecção de ubiquitinação em fluxos de trabalho de descoberta precoce aumenta a confiança preditiva e apoia decisões de portfólio ajustadas a riscos.
A detecção da ubiquitinação de proteínas situa-se no cruzamento entre descoberta inicial, validação de alvo e estudos mecanicistas pré-clínicos, oferecendo uma capacidade analítica reutilizável ao longo do continuum de P&D.