16 de novembro de 2009
Apresentamos várias maneiras de monitorar a função cardíaca na larva de Drosophila Para avaliar questões relacionadas com a função de junções, mutações canal iônico, modulação da atividade de marcapasso e estudos farmacológicos.
Drosophila é geneticamente atrativa para investigações do desenvolvimento e da função do coração, bem como da atividade subjacente do marcapasso. Este procedimento mostra como preparar larvas intactas e dissecadas e como monitorar a frequência cardíaca. O preparo dissecado também permite a gravação de potenciais extracelulares ou intracelulares para investigar ainda mais a função dos canais iônicos.
Olá, sou Robin Cooper, membro do corpo docente do Departamento de Biologia da Universidade de Kentucky. Hoje, meus alunos, Ann Cooper, Kyla Ryman, Matt Ward e Easter Boku, mostrarão vários procedimentos para monitorar a frequência cardíaca em larvas de Drosophila. O seguinte método sem restrição é chamado de fazenda de formigas porque as larvas são visualizadas dentro de um único plano focal.
Para melhor visualização das larvas, utilize um microscópio estereoscópico com uma objetiva básica de 2x e uma objetiva de tubo de 0,5x para obter a melhor resolução espacial e ampliação em um retângulo de um centímetro por 0,5 centímetro. Fotografias e vídeos podem ser registrados por meio de uma câmera acoplada a uma montagem ocular. Para iniciar este método, coloque uma larva entre duas lâminas de vidro, com uma fina camada de alimento em meio delas.
As lâminas são mantidas a uma distância de um a 1,5 milímetros com espaçadores de plástico em todos os quatro lados. Incline o preparo entre 20 e 45 graus por alguns minutos para incentivar a larva a manter a cabeça voltada para baixo. Ajuste o espelho do microscópio para obter o melhor contraste do coração ou das duas traqueias, a fim de observar as batidas cardíacas.
O método da cola é uma montagem permanente para imobilizar larvas em uma lâmina de vidro. Para iniciar o método da cola, coloque uma lamínula limpa sobre uma lâmina de vidro. Coloque uma pequena gota de cola instantânea em um dos cantos da lamínula.
Em seguida, lave as larvas com água. Para remover o excesso de alimento, absorva o líquido com um tecido ou com a ponta de uma toalha de papel. Uma vez que a larva esteja completamente lavada, levante-a suavemente com pinças limpas e coloque-a sobre a lâmina, longe da lamínula, sob o microscópio, posicionando a larva de barriga para baixo.
O estômago apresentará sulcos horizontais tênues ao longo dele, com pelos pretos finos. O dorso das larvas deve ficar voltado para cima e apresenta duas listras paralelas, que são as traqueias. Usando um segundo par de pinças dedicado exclusivamente ao manuseio da cola, pegue uma pequena quantidade da gota na extremidade da lâmina e coloque-a no canto do lado oposto.
Use uma quantidade mínima, apenas o suficiente para cobrir a ponta da pinça. Pegue o animal e coloque-o sobre a cola, garantindo que ele permaneça com o lado ventral para baixo, com a boca preta voltada para baixo.
Os ganchos devem estar na borda ou próximo à borda da lamínula, alinhados com os ganchos bucais e a espiral marrom. Não devem tocar a cola. Pressione suavemente as larvas para achatá-las.
Para aplicar uma substância de teste, o ideal é dispensar pequenas gotas com uma seringa próxima à cabeça da larva. Observe a frequência cardíaca contando o número de vezes que as espirais pulsam em um minuto. Para observações mais longas, as larvas podem ser alimentadas no local e umedecidas para prevenir desidratação. Para preparar uma placa de dissecação utilizável sob o microscópio, use um bisturi para cortar um orifício de dois centímetros de diâmetro no centro de um pedaço de fita magnética e cole-o em uma lâmina de vidro.
Use alfinetes de dissecação que foram dobrados e colados em clipes de papel para facilitar a fixação. Durante a dissecação, coloque uma larva de estrela-do-mar intacta em terço no prato de dissecação. Com o lado dorsal voltado para cima, a traqueia deve ser visível através da cutícula.
Coloque dois alfinetes nas larvas em ambos os lados dos ganchos bucais e outros dois alfinetes em cada lado das espirais. Em seguida, adicione solução salina para manter as larvas úmidas. Depois, faça uma incisão horizontal próxima à extremidade caudal, seguida por um corte longitudinal que deve continuar ao lado das espirais em direção à cabeça do animal.
Levante um pino dorsal e passe-o por baixo da cutícula. Use o pino para abrir e expor a cavidade corporal.
Repita com os outros três alfinetes. Uma vez que o animal tenha sido fixado aberto, remova as vísceras tendo o cuidado de não danificar a traqueia ou o coração. Algumas estruturas, incluindo o cérebro e alguns corpos adiposos, estão ligadas ao coração e poderão danificá-lo quando forem removidas.
Deixe o preparo repousar em um banho de solução salina HL três por três a cinco minutos após a dissecação; os registros intracelulares e de campo são realizados neste preparo enquanto agentes farmacológicos são aplicados diretamente no coração. O tempo total para esta etapa de dissecação é de três a seis minutos. Para realizar o estímulo elétrico, é necessário primeiro confeccionar eletrodos focais; para fazer um eletrodo focal, passe um eletrodo de vidro sobre um elemento aquecedor para polir por aquecimento e criar uma curvatura gradual de aproximadamente 45 graus. Monte um eletrodo focal preenchido com solução salina HL três à temperatura ambiente no manipulador, com a ponta voltada para baixo.
Certifique-se de que o fio do estimulador está tocando o salino dentro do eletrodo e de que o estimulador está desligado. Prenda uma preparação fresca de dissecação de coração no microscópio. Coloque o fio de aterramento no salino.
Tendo o cuidado de não tocar os pinos nem perturbar a preparação. Mantenha o foco no eletrodo enquanto usa o manipulador para movê-lo para baixo, dentro da solução salina. Uma vez na solução salina, posicione a ponta do eletrodo com a luz voltada para baixo contra o coração, tocando-o levemente.
Uma vez posicionado o eletrodo, ajuste a frequência do estimulador em dois hertz com a voltagem no nível mais baixo. Ligue o estimulador. Ajuste a frequência para aproximadamente três hertz e aumente lentamente a voltagem até que a frequência cardíaca acelere, acompanhando o ritmo do estimulador.
O ritmo pode agora ser manipulado por meio do estimulador. Podem-se adicionar compostos para verificar se eles afetam a contração ou a condução elétrica. Para realizar gravações de potenciais de campo, preencha um eletrodo de gravação macro do tipo patch com o meio de banho e fixe-o em um manipulador sobre um microscópio composto.
Conecte o eletrodo a um amplificador e ao sistema de gravação. Use o manipulador para posicionar suavemente a luz do eletrodo sobre o coração de uma preparação de dissecação fixada ao microscópio. Toque levemente o coração com a ponta do eletrodo.
As gravações de campo podem agora ser realizadas para registrar potenciais de campo de outra região do coração. Levante suavemente a ponta do eletrodo e mova-a para uma nova área com o manipulador, depois abaixe novamente a ponta para realizar as gravações de potenciais de campo. Permite o monitoramento preciso da frequência e duração dos sinais elétricos no coração para medir os potenciais transmembrana de miócitos larvais.
Primeiro, certifique-se de que o lúmen de um eletrodo agulhado preenchido com cloreto de potássio 3 molar esteja plano contra o coração em um ângulo de aproximadamente 45 graus em relação à vertical. Uma vez adequadamente posicionado, toque suavemente o coração com a ponta do eletrodo e introduza a ponta em uma célula. O eletrodo pode ser reutilizado se não estiver quebrado.
Os registros intracelulares permitem medir a base iônica do potencial de ação e as formas características dos potenciais para examinar os efeitos de mutações nos canais iônicos ou de moduladores de canais. Assim, acabamos de mostrar como realizar registros cardíacos, bem como como obter potenciais intracelulares e de campo. Você pode usar essas técnicas para analisar alterações cardíacas, manipulações farmacológicas e alterações genéticas.
Ao realizar este procedimento, é importante não puxar uma estrutura relacionada que esteja presa ao coração nem pressionar com muita força com o eletrodo focal. Também com o método da cola, tenha cuidado para não colar a boca ou a esfera. Assim sendo, é isso.
Obrigado por assistir e boa sorte com seus experimentos.
Este artigo apresenta métodos para monitorar a função cardíaca em larvas de Drosophila, com foco na avaliação de junções comunicantes, mutações em canais iônicos e atividade de marcapasso. As técnicas incluem preparações intactas e dissecadas para análise detalhada.
Modelos do coração de larvas de Drosophila permitem a redução mecanicista de riscos relacionados à função de canais iônicos e marcapassos na fase inicial de descoberta, apoiando a validação de alvos em vias relacionadas ao coração. O preparo fornece leituras quantitativas e reprodutíveis da frequência cardíaca e da atividade elétrica, facilitando o desenvolvimento de ensaios para triagem de compostos. Este sistema oferece um modelo geneticamente manipulável e relevante para doenças, capaz de avaliar o potencial de biomarcadores tradutíveis e a confiabilidade preditiva na identificação de compostos líderes.
O método se insere no continuum de descoberta, desde a validação do alvo até a identificação de compostos iniciais, fornecendo insights mecanicistas que orientam a avaliação pré-clínica de riscos.