Name: Derivação de Células-Tronco Hematopoéticas murino de Células-Tronco Embrionárias (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-02-25T00:00:00.000+00:00
Duration: 22 min 6 s
Description: Aprenda a derivar células-tronco hematopoéticas transplantáveis de células-tronco embrionárias murinas usando corpos embrioides e HoxB4. Este protocolo permite resgatar camundongos irradiados letalmente.

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Diferenciação de células-tronco embrionárias <ol><li> Coletar um frasco perto confluentes de células-tronco embrionárias (ESC), através de tratamento com tripsina ESC. </li><li> Ressuspender as células em 5 mL de mídia Diferenciação e transferir para um T25 não-revestido de gelatina. Incubar a 37 ° C por 45 minutos. Recuperar o sobrenadante e coletar células através de centrifugação. Nota: fibroblastos de rato embrionárias (MEFs) das culturas ESC anexar prontamente aos T25 não-revestido de gelatina e, portanto, estão esgotados a partir da cultura durante esta etapa de galvanização. Se você não é o seu cultivo em MEFs ESC, você pode pular a placa pré-. </li><li> Ressuspender MEF-esgotados ESC na mídia Diferenciação em 333.333 mL cells/50. Esta concentração resulta em 100 mL ESC/15. </li><li> Usando multi-canal de pipetador, placa ESC a 100 mL cells/15 queda em 15 cm 2 placas de petri. Com uma pipeta de 8 canais, você deve ser capaz de caber aproximadamente 18-22 fileiras de gotas por placa (cerca de 5 ml por placa). Nota: Para este protocolo, 2-5 15 cm 2 pratos de gotas será mais do que suficiente e deve render 2-5 x 10 6 de seis dias EB células derivadas. </li><li> Suavemente virar placas para inverter gotas. Incubar a 37 ° C 5% CO 2 por 48 horas. </li><li> Piscina cai rodando suavemente placas e transferir para tubo de 15 mL cônico. Enxaguar pratos com 4-6 mL de PBS e adicionar à mesma 15 mL cônico. Nota: Você pode piscina até cinco placas de gota em suspensão. O EBS vai crescer à medida que continuam a diferenciar e se eles são muito concentrados tendem a formar grumos grandes. </li><li> Permitir EBs agrupados para resolver pela força da gravidade (cerca de 10 minutos). Aspirar o sobrenadante sem perturbar EBs. Delicadamente ressuspender em 10 mL de mídia Diferenciação e transferência a 10 cm da placa de petri não-aderente. </li><li> Colocar a placa de petri na placa shaker a 50 rpm e incubar a 37 ° C 5% CO 2. </li><li> 24 horas depois (dia quatro de diferenciação), placas de turbulência para se concentrar EBs no centro da placa de Petri. Cuidadosamente troca de 50% dos meios de comunicação (5 mL) com 5 mL de mídia Diferenciação fresco. Retorno placa para incubadora por mais dois dias. </li></ol> EB dissociação e infecção com MSCV-HoxB4-IRES-GFP <ol><li> No dia seis de diferenciação, a transferência de EBs a 15 mL do tubo cônico. Deixa-se repousar por gravidade. </li><li> Aspirar mídia e ressuspender em 10 mL PBS. Permitir EBs para reassentar pela gravidade. Aspirar PBS. </li><li> Adicionar 250 mL mix enzima dissociação e 1 mL de PBS. Incubar em banho-maria 37 ° C por 20 minutos, ocasionalmente turbilhão tubo para misturar enzimas e EBs. </li><li> Adicionar 8 mL da enzima livre de buffer de dissociação. </li><li> Triturar a mistura usando pipeta de 5 ml até EBs são totalmente dissociados (cerca de 10 vezes; pipetagem excessiva aumentará a morte dentro do EB derivados preparação celular). <ol><li> Mistura será nublado com células como dissociar EBs. </li><li> Colocando a ponteira contra a parte inferior do tubo cônico durante a trituração vai criar uma força de cisalhamento que vai facilitar muito a dissociação. </li></ol></li><li> Coletar células através de centrifugação. </li><li> Ressuspender EB células derivadas em 5 mL de IMDM 10% e contagem usando trypan exclusão azul Nota: Entre quatro dias e seis dias de diferenciação, EBs cavitar o que resulta em uma grande quantidade de apoptose e death.Thus celular, no sexto dia, mais de 30% da EB células derivadas pode manchar com azul de tripano. </li><li> Ressuspender as células EB-derivados de 100.000 células / 2 mL de 10% IMDM + sobrenadante viral de tal forma que um MOI de 5-10 é achieved.Add sulfato de protamina para uma concentração final de 8 mg / mL. Nota: Prepare o suficiente EB / mix sobrenadante viral ao prato quatro chapas 6-bem (assumindo que 2 mL / poço). </li><li> Placa de 2 mL EB / mix sobrenadante viral por poço de quatro 6 placas bem pré-revestida com OP9 células do estroma (veja abaixo). </li><li> Centrífuga placas a 2500 rpm em temperatura ambiente por 90 minutos. Transferência de placas para incubadora a 37 ° C 5% CO 2. </li><li> 4-6 horas mais tarde, a colheita sobrenadante a partir de chapas e recolher as células potencial remanescente em suspensão através de centrifugação. </li><li> Ressuspender pellet (pode ser pequeno) em 48 mL IMDM 10% + citocinas. Dispense 2 mL / poço de ressuspensão de original de quatro bem-6 placas em que a infecção foi realizada e sobrenadante foi coletado. Nota: Sempre prepare 10% IMDM + citocinas fresco no tempo de uso. </li><li> Incubar as placas a 37 ° C 5% CO 2 por sete dias. Colônias deve ser aparente por dia após a infecção e quatro grandes e bem formado por sete dias. A expansão robusta deve render 40-60 colônias / bem no dia sete. </li><li> No sétimo dia pós-infecção, coletar e piscina todas as células (incluindo OP9 estroma) de todos os poços por tratamento com tripsina. Nota: NÃO descartar sobrenadante ou PBS lava empregados durante tripsina treatment.At neste ponto da cultura, algumas colônias podem ser apenas vagamente aderente e existem muitas células flutuar livrementing em suspension.Collect e piscina todos os lava e sobrenadante para garantir que nenhum células potencialmente valiosos são descartados. </li><li> Ressuspender as células em 8 mL IMDM fresca a 10% + citocinas. Distribuir 2 ml / frasco em quatro frascos T75. Adicionar um adicional de 13 mls citocinas + 10% IMDM em cada balão. Incubar a 37 ° C 5% CO 2 por três dias (um total de dez dias após a infecção). </li></ol> Cultura e chapeamento de OP9 estroma <ol><li> Manter OP9 estroma de acordo com protocolos padrão em 20% a-MEM. OP9 células vão alterar as propriedades quando cultivadas a confluência. Sempre dividido em 80% confluência em não mais de 1:03 dividido. </li><li> 24 horas antes da infecção do dia seis EB células derivadas com MSCV-HoxB4-IRES-GFP, placa OP9 25.000 células / poço de quatro bem-6 placas em 20% ao MEM. </li></ol> Fracionamento de recolha e transplante <ol><li> Coletar células expandidas em OP9 estroma de 10 dias através de tratamento com tripsina. Contagem de células. Nota: NÃO descartar sobrenadante ou PBS lava empregadas durante o tratamento de tripsina. Neste ponto, na cultura, algumas colônias podem ser apenas vagamente aderente e existem muitas células flutuando no suspension.Collect e piscina todos os lava e sobrenadante para garantir que nenhum células potencialmente valiosos são descartados. Nota: Uma boa expansão deve render entre 40-50 x 10 6 células / placa 6-bem original infectado, para um total de 160-200 x 10 6 células. </li><li> Células podem ser fracionados através da selecção do grânulo magnético ou FACS acordo com técnicas padronizadas neste ponto no protocolo. </li><li> Para o transplante, as células entregar via retro-orbital ou injeção veia da cauda para Rag-2/gc destinatários deficiente (pesando entre 15-22 gramas) submetido a uma dose fracionada de 9,25 Gy de radiação 2,5 horas. além. Nota: É importante que o peso dos animais cair entre 15-22 gramas no momento da irradiação. Se eles são maiores do que 22 gramas, 9,25 gy não será uma dose suficiente de radiação para garantir a ablação apropriado e células não podem mediar resgate de irradiação letal e / ou enxertar o compartimento hematopoiético. Se o transplante animais de maior porte, a dose de irradiação adequada deve ser determinada experimentalmente. </li><li> A dose mínima de 2-5 x 10 6 células / animal é necessário para garantir resgate de irradiação letal. Se fracionar as células, injetar 2-5 x 10 6 células equivalentes (por exemplo, se a população de interesse representa 10% do pool de células não fracionada, injetar 2-5 x 10 5 células / animal). Nota: Se injetar&gt; 2 x 10 6 células, SEMPRE injetar via veia da cauda para evitar a formação de teratomas em órbita, o que pode resultar quando os números elevados de células são entregues retro-orbital. </li><li> Manter Rag-2 - / - / gc - / - destinatários deficiente em gaiolas autoclavado. Dependendo da &quot;limpeza&quot; do estabelecimento animal, pós-transplante animais podem exigir a administração de água acidificada ou Trimethiprim-Sulfasoxazole (Septra) para a 5 semanas seguintes de radiação letal. </li><li> Esperar&gt; GFP 90% + ES-derivados de leucócitos no sangue periférico em três semanas pós-transplante. Enxerto deve ser multi-linhagem, embora os linfócitos são conhecidos por silêncio retroviral HoxB4-IRES-GFP. </li></ol>

<table><tbody><tr><td>Camundongos deficientes em Rag-2/gamma-c C57Bl/6</td><td>Animal</td><td>Taconic Farm</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agitador de placas</td><td>Ferramenta</td><td>VWR international</td><td>33998-360</td><td>Agitador orbital da Ikaworks</td></tr><tr><td>Pipetador multicanal</td><td>Ferramenta</td><td>VWR international</td><td>15000-174</td><td>ePet da BioHit</td></tr><tr><td>Tripsina ES</td><td>Reagente</td><td>Invitrogen</td><td>15090-046</td><td>Tripsina 0,25% em PBS</td></tr><tr><td>Tripsina padrão</td><td>Reagente</td><td>Invitrogen</td><td>25300-062</td><td>Tripsina-EDTA 0,05%</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Tampão</td><td>Invitrogen</td><td>20012-027</td><td></td></tr><tr><td>Tampão de dissociação livre de enzimas</td><td>Tampão</td><td>Invitrogen</td><td>13151-014</td><td></td></tr><tr><td>Mistura enzimática de dissociação</td><td>Tampão</td><td>Invitrogen</td><td>17104-019</td><td>500 mg de Colagenase IV</td></tr><tr><td>Hialuronidase</td><td>Reagente</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H2126</td><td>congelar em alíquotas de 500 &amp;mu;L e evitar congelamentos e descongelamentos repetidos.</td></tr><tr><td>DNase</td><td>Reagente</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D4527</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td></td><td>Invitrogen</td><td>10-017CV</td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de protamina</td><td>Reagente</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3369</td><td>8 &amp;mu;g/mL</td></tr><tr><td>Meio de diferenciação EB</td><td>meio</td><td></td><td></td><td>Consulte a receita no Protocol.doc anexo</td></tr><tr><td>IMDM 10%</td><td>meio</td><td></td><td></td><td>Consulte a receita no Protocol.doc anexo</td></tr><tr><td>IMDM 10% + citocinas</td><td>meio</td><td></td><td></td><td>Consulte a receita no Protocol.doc anexo</td></tr><tr><td>anti-MEM 20%</td><td></td><td></td><td></td><td>Consulte a receita no Protocol.doc anexo</td></tr></tbody></table>

derivação de células-tronco hematopoéticas murino de células-tronco embrionárias

Derivation of Hematopoietic Stem Cells from Murine Embryonic Stem Cells

Uma célula-tronco é definida como uma célula com capacidade para tanto se auto-renovar e gerar descendência diferenciada múltiplas. Células-tronco embrionárias (ESC) são derivadas do blastocisto do embrião e são pluripotentes na capacidade differentiative. Seu potencial differentiative vasta fez-lhes o foco de muita pesquisa centrada na deduzir como persuadi-los para gerar tipos de células clinicamente útil. A derivação bem-sucedida de células-tronco hematopoiéticas (HSC) de rato ESC foi recentemente realizado e pode ser visualizado neste protocolo de vídeo. HSC, sem dúvida, a população de células clinicamente mais explorados, são usados ​​para tratar uma miríade de malignidades hematopoiéticas e distúrbios. No entanto, muitos pacientes que poderiam se beneficiar da terapia HSC não tem acesso a doadores compatíveis. ESC poderiam fornecer uma fonte alternativa de HSC para estes pacientes. O protocolo a seguir estabelece uma linha de base a partir da qual ESC-HSC podem ser estudados e informar os esforços para isolar HSC da ESC humana. Neste protocolo, ESC são diferenciados como corpos embrióides (EBs) por 6 dias disponíveis comercialmente soro pré-selecionados para a diferenciação ótima hematopoiéticas. EBs são, então, dissociado e infectados com HoxB4 retroviral. Infectados EB células derivadas são semeadas em OP9 estroma, uma linhagem de células de medula óssea estromal derivado da calvária de /-M-CSF - ratos, e co-cultivados na presença de hematopoiese promover citocinas por dez dias. Durante este co-cultura, as células infectadas expandir muito, resultando na geração de uma piscina heterogêneo de 100s de milhões de células. Estas células podem então ser usados ​​para resgatar e reconstituir camundongos letalmente irradiados.

Este protocolo detalhes a derivação de células-tronco hematopoéticas para transplante de células-tronco embrionárias de rato (ESC) e sua posterior injeção em camundongos letalmente irradiados destinatário. Brevemente, ESC são diferenciados como corpos embrióides, que depois são infectadas com HoxB4 retroviral e co-cultivados com células do estroma OP9 e citocinas hematopoiéticas.

Derivação de Células-Tronco Hematopoéticas murino de Células-Tronco Embrionárias

Uma célula-tronco é definida como uma célula com a capacidade de se autorrenovar e de gerar múltiplos descendentes diferenciados. As células-tronco embrionárias (ESC) são ...

A primeira coisa que fazemos é pegar um T-25 confluente de UMSL. Então, vou apenas lavar com PBS e adicionar algumas gotas de TR e deixar repousar por alguns minutos. Posso ver que as células estão se destacando da placa. Portanto, está praticamente pronto.Ok, agora vou coletar as células oculares com tripsina e é uma boa ideia agitar suavemente as células oculares com tripsina por um momento para dissociar as colônias antes de colocá-las na placa UN. Em seguida, essa placa permanecerá na incubadora por cerca de 30 a 45 minutos. Agora vou centrifugar essas células para coletá-las e vou apenas aspirar.Então, eu vou apenas ressuspender daqui a alguns minutos para poder fazer a contagem. Então, eu ressuspendi e agora já contei; agora estou retirando uma alíquota e vou diluir essa alíquota até 50 mililitros, o que me dará a concentração apropriada para obter cem células por gota, apenas para verificar se as células estão boas. Então, agora temos um reservatório.Apenas mexa um pouco novamente, despejamos isso em nosso reservatório. Ok, então já está programado. Pronto.Agora está bem reto. Vire-o e deixe de lado. A cada duas ou três placas, eu simplesmente inclino um pouco, apenas para que o conteúdo balançe um pouco.Ok, então são cinco placas. Vou agora colocá-las na estufa. Essas são as gotas suspensas que preparamos dois dias atrás.Para coletar, basta agitar as placas para reunir as gotas. Vou coletar tudo e tento fazer isso com cuidado para não perturbar muito as EVs; vou pegar cinco ou seis porções de PBS e lavar as placas. Em seguida, deixamos essas placas por pelo menos 10 minutos, tempo durante o qual as EBS sedimentarão por gravidade.Uma vez que você tenha confirmado visualmente que seus EBS se acomodaram, remova a maior parte do sobrenadante, mas não todo, porque você não quer perturbar seus, Ok. Ok, então agora e depois agite até o sexto dia. Estes são corpos embrionários que foram preparados há seis dias a partir de células-tronco embrionárias murinas e, normalmente, para coletá-los, agitamos levemente as placas.Quando você agita suavemente as placas, os EDS tendem a se agrupar no centro do recipiente, o que facilita um pouco o seu manuseio. Agora, deixe os EDS sedimentarem por gravidade até o fundo do tubo e, em seguida, remova o meio e lave uma vez com 10 mililitros, de 10 a 12 mililitros de PBS. Ok, agora vamos deixar esses repouso, espere um momento.Agora vou apenas remover o P. Então, adicionamos 250 microlitros da nossa mistura enzimática e adicionamos um mili, e depois colocamos simplesmente em um banho-maria a 37 graus. E de vez em quando, talvez duas vezes, passarei apenas para agitar levemente para misturar, porque os Eds sedimentaram. Agora temos este tampão de dissociação celular que é livre de enzimas, que acabamos de obter da gpro.E vamos adicionar cerca de oito mililitros disso a cada tubo. Em seguida, vamos apenas realizar iterações com uma pipeta de cinco mililitros para dissociar; à medida que você repete essa operação, a solução ficará muito turva. Isso é apenas uma indicação visual de que as células estão sendo dispersas no meio, deixando-o bem turvo. Agora vou contar as células pelo método de exclusão com tripano; se você estiver tentando realizar uma infecção ou calcular um MOI, é muito importante fazer a contagem.Então, vou apenas preparar um grande lote de vírus mais meio mais células na concentração apropriada mais sulfato de proteína. E, então, verifico sempre as células, novamente sou paranóico quanto às células saindo da suspensão. Por isso, estou sempre atento, e também uso um tubo pequeno, tentando ter cuidado para não provocar muitas salpicadas durante a centrifugação a 2.500 rpm.Então, estou coletando nossas células do dia 10, que foram, guardo todas as lavagens. Eu costumava usar PI para iodeto de propídio, mas o sete não é tão brilhante. E, portanto, não apresenta vazamento em tantos canais, sendo muito mais limpo do que.Agora nós apenas obtemos a variável, e essa é uma boa maneira de evitar perda na agulha devido ao volume. Então, eu sou Shannon McKinney Freeman. Sou pesquisadora pós-doutoranda no Laboratório de George Families, no Hospital Infantil de Boston.Hoje vamos abordar como obter uma população de células transplantáveis a partir de células-tronco embrionárias de camundongo, transplantáveis e do sistema hematopoético. Por que realizamos este experimento? Bem, sabemos que, utilizando este sistema, podemos obter — primeiramente, o protocolo definitivo foi desenvolvido para derivar uma população de células a partir de células-tronco embrionárias que apresentassem atividade de células-tronco hematopoéticas, no sentido de serem capazes de resgatar camundongos submetidos a radiação letal, reconstituindo seu sistema hematopoético por longo período, durante toda a vida do organismo e em todas as linhagens do sangue periférico.Por isso o protocolo foi desenvolvido. Agora estamos realizando experimentos adicionais para compreender o fenótipo da população de células dentro dessa população expandida que derivamos e que estão realmente mediando essa atividade de células-tronco hematopoiéticas. Pois não sabemos; sabemos que a população é muito heterogênea e sabemos que a célula que está realmente resgatando os camundongos é extremamente rara dentro dessa população de células.E então estamos tentando basicamente definir seu fenótipo para que possamos purificá-lo a partir dessas células muito heterogêneas. Em seguida, estamos principalmente interessados em compreender como ele se compara funcionalmente a uma célula-tronco hematopoiética autêntica, que alguém poderia derivar da medula óssea total. Será que ele possui capacidade de reconstituição equivalente no desenvolvimento? Será que ele parece refletir uma HSC da medula óssea adulta?Ou talvez possa ser mais semelhante a uma célula-tronco hematopoiética. Pode-se encontrar o desenvolvimento inicial, por exemplo, na medula óssea ou no fígado fetal. E, portanto, é isso que estamos tentando compreender, e queremos entender essas questões porque, em última instância, gostaríamos que este protocolo servisse como base para trabalhos semelhantes nos quais estamos interessados em realizar com células-tronco embrionárias humanas.E acreditamos que as informações que obtemos com o sistema matemático, você sabe, beneficiarão grandemente aqueles experimentos futuros. Acho que há algumas coisas. Primeiramente, há apenas isso: é um bom modelo in vitro, é um bom modelo de características do desenvolvimento.Portanto, estamos tentando compreender, antes de tudo, o desenvolvimento das células-tronco hematopoiéticas. Assim, trata-se de um sistema interessante que é muito simples para a expressão gênica ectópica e para observar como esses fatores influenciam o desenvolvimento das células-tronco hematopoiéticas. Isso é muito útil do ponto de vista da ciência básica.Mas, em última instância, queremos desenvolver algum tipo de terapia baseada em células que possa ser usada clinicamente para obter, você sabe, células-tronco metabólicas transplantáveis a partir de células humanas. Mas isso provavelmente está ainda distante no futuro. Na verdade, descobrimos que a parte mais difícil não é tanto a obtenção das próprias células, mas, por meio de experimentos cuidadosos, identificamos um período em que tivemos dificuldade em fazer com que as células reconstituíssem nossos animais receptores.E o que acabamos descobrindo foi que precisávamos prestar muita atenção à ablação dos receptores, porque essas células não são capazes. Assim, normalmente, quando se realiza um transplante em camundongos com idade avançada a partir da medula óssea, aplica-se uma radiação de 10 ou 11 Gy para a ablação dos camundongos, e as células hematopoiéticas da medula óssea são bastante capazes de resgatar os animais desse procedimento. No entanto, verifica-se que essa população de células que expandimos não é capaz de resgatar os animais de uma dose tão alta de radiação ionizante.Então, o que precisamos fazer é ajustar com muito cuidado a dose de irradiação, prestando atenção ao tamanho dos animais, pois descobrimos que, se os animais forem muito grandes e tentarmos usar a mesma dose, eles não são efetivamente ablatados. Mas, novamente, se você não irradiar os animais o suficiente, as células não serão capazes de competir com hospedeiros mais resistentes.Na verdade, assim que descobrimos que essa era uma variável importante, o que dificultava a observação da atividade ab dessas células, passamos a titular a dose de irradiação e também percebemos que a idade e o peso do animal são fatores muito significativos; foi então que nossos experimentos começaram a funcionar de maneira altamente reprodutível. O que descobrimos é que, se você utilizar animais com cerca de 20 gramas, entre 15 e 20 gramas, e os ablar com 9,25 gray, essa parece ser a dose ideal, que confere a essas células a vantagem necessária para reconstituir os camundongos. Sim, e acho que essa foi uma das variáveis mais importantes.O outro, outro, outro aspecto significativo seria o número de células que você está injetando. Também realizamos titulações utilizando essas condições específicas para irradiar nosso organismo modelo. Também titulamos o número dessas células não fracionadas, desse pool heterogêneo de células que estávamos injetando em camundongos.E descobrimos basicamente que é necessária uma dose mínima, cerca de 2 a 5 milhões de células, para resgatar os animais. Se você injetar menos que isso, os animais não são resgatados. E acho que isso indica, provavelmente, a raridade da célula que, na verdade, está mediando o resgate dentro desse compartimento heterogêneo.Portanto, acho que as variáveis mais importantes são o número de células que você injeta e ter certeza de que, independentemente do modelo de transplante que estiver usando, você está aplicando o tubo ou uma lâmina com intensidade suficiente para dar às células a vantagem necessária para se reconstituírem, mas não tanto a ponto de elas se tornarem incapazes de promover o resgate. Essas são as variáveis principais, as grandes variáveis.

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Research

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Biology

Biologia

A capacidade de células estaminais embrionárias humanas para a auto-renovar e diferenciar em todos os tipos de células do corpo sugere que eles são uma grande promessa para aplicações médicas e como ferramenta de pesquisa para abordar questões fundamentais no desenvolvimento e na doença. Aqui, fornecemos uma concisa, protocolo passo a passo para a derivação de células estaminais embrionárias humanas a partir de embriões pelo isolamento immunosurgical da massa celular interna.

Derivação de células estaminais embrionárias humanas por Immunosurgery

Um método para analisar a distribuição de células progenitoras hematopoiéticas da medula óssea em citometria de fluxo, bem como para isolar eficazmente altamente purificados de células estaminais hematopoiéticas (HSCs) é descrito. O processo de isolamento é essencialmente baseado no enriquecimento de células magnética c-kit + e classificação celular para purificar HSCs para estudos celulares e moleculares.

Análise fenotípica e Isolamento de Células-Tronco Hematopoéticas Murino e Lineage comprometidos Progenitores

A manipulação da expressão gênica temporal na diferenciação de células-tronco embrionárias (ESCs) pode ser alcançada usando sistemas gênicos induzíveis. No entanto, a geração dessas linhagens celulares é cara e demorada. Este protocolo alcança a expressão rápida de um transgene na diferenciação de células derivadas de ES e subsequente análise da diferenciação hematopoiética a jusante.

Retroviral Infecção murina Embryonic Stem Cell Derived Cells embrioides corpo de Análise da diferenciação hematopoética

Neste protocolo, será ilustrada a derivação de células progenitoras cardíacas de células-tronco embrionárias de camundongos e humanos. Uma estratégia importante neste protocolo é enriquecer as células progenitoras cardíacas com citometria de fluxo usando repórteres fluorescentes projetados nas linhagens de células-tronco embrionárias.

Derivação de Cardiac células progenitoras de células estaminais embrionárias

As células-tronco embrionárias de camundongos podem ser diferenciadas em células T in vitro usando o sistema de co-cultura OP9-DL1. O sucesso neste procedimento requer atenção cuidadosa à manutenção do reagente/célula e às principais etapas sensíveis à técnica. Aqui, discutimos esses parâmetros críticos e fornecemos um protocolo detalhado para incentivar a adoção dessa tecnologia.

Derivação de células T In Vitro De Mouse Células-Tronco Embrionárias

células-tronco e progenitoras hematopoiéticas (HSPC) derivam de células endoteliais especializadas (hegemônicos) durante o desenvolvimento, mas pouco se sabe sobre o processo pelo qual algumas células endoteliais especificar a tornar-se sangue formando. Nós demonstramos um método baseado citometria de fluxo que permite o isolamento de células endoteliais em simultâneo hegemônicos e HSPC de tecidos embrionários de murídeo.

Isolamento de células embrionárias de murino hegemônicos endoteliais

O protocolo descrito aqui detalha a indução de um programa hemogênico em fibroblastos embrionários de camundongos por meio da superexpressão de um conjunto mínimo de fatores de transcrição. Essa tecnologia pode ser traduzida para o sistema humano para fornecer plataformas para estudos futuros de hematopoiese, doenças hematológicas e transplante de células-tronco hematopoiéticas.

Reprogramação do rato embrionárias fibroblastos com Fatores de transcrição para induzir um Programa hegemônicos

Aqui, apresentamos pluripotentes humanas de protocolos de cultura de células-tronco (hPSC), usados para diferenciar hPSCs em CD34+ progenitores hematopoiéticos. Este método usa a manipulação de estágio específico de WNT canônico sinalização para especificar células exclusivamente para ambos o programa hematopoiética definitivo ou primitivo.

Dirigido a diferenciação de progenitores hematopoiéticos primitivo e definitiva de células pluripotentes humanas

Este artigo descreve um protocolo para eficientemente derivar e cultura linhas de células-tronco pluripotentes de embriões de rato no estágio de blastocisto.

Derivação das linhas de células-tronco de embriões pré-implantação do rato

Aqui apresentamos a metodologia para a análise clonal de precursores de células-tronco hematopoéticas durante o desenvolvimento embrionário murino. Combinamos que o índice de classificação de células únicas da região de aorta-gônada-mesonephros embrionária com co-cultura de células endoteliais e transplante para caracterizar as propriedades fenotípicas e potencial de enxertia de precursores hematopoiéticos único.

Análise clonal de precursores embrionárias células-tronco hematopoiéticas usando índice de célula única classificação combinada com células endoteliais nicho co-cultura

Apresenta-se aqui um protocolo simples para a diferenciação direcionada de células endoteliais hemogênicas de células-tronco pluripotentes humanas em aproximadamente 1 semana.

Diferenciação Dirigida de Células Endoteliais Hemogênicas de Células-Tronco Pluripotentes Humanas

Aprenda a derivar células-tronco hematopoéticas transplantáveis de células-tronco embrionárias murinas usando corpos embrioides e HoxB4. Este protocolo permite resgatar camundongos irradiados letalmente.

Derivação de Células-Tronco Hematopoéticas murino de Células-Tronco Embrionárias

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