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- Comece colocando uma câmara de gravação contendo uma amostra em uma solução de banho, cuja composição corresponde ao ambiente extracelular fisiológico ou ao citoplasma, em um estágio de microscópio. Avance a micropipeta de registro, uma pipeta contendo um eletrodo de prata banhado em uma solução eletrolítica, que imita as condições intracelulares, em direção ao neurônio aplicando pressão positiva e faça contato com a membrana celular.
Mude suavemente da pressão positiva para a negativa para formar uma vedação firme entre a membrana e a pipeta. Defina um potencial de retenção no amplificador para manter a célula em uma tensão constantetage. Em seguida, rompa a membrana celular dentro da micropipeta aplicando sucção.
Uma vez que a membrana celular se rompe, o potencial de retenção causa o fluxo de íons através de canais iônicos dependentes de voltagem, criando um potencial de membrana, que é registrado pelo eletrodo de registro. Registre imediatamente o potencial de membrana. O eletrodo de gravação transmite o sinal para o amplificador de feedback, que subtrai o potencial de membrana do potencial de retenção - um osciloscópio, que apresenta uma exibição visual do potencial de membrana, e um computador. No protocolo a seguir, realizaremos uma medição de patch clamp na célula de Mauthner em um embrião de peixe-zebra.
- Para se preparar para o patch clamping, comece puxando algumas pipetas de patch clamp com vidro de borossilicato de paredes finas em um extrator horizontal. Os diâmetros da ponta da pipeta são de cerca de 0,2 a 0,4 micrômetros após o polimento a fogo para uma borda lisa, e o cone da haste tem cerca de 4 milímetros de comprimento.
Encha a ponteira da pipeta com solução intracelular, mergulhando-a no líquido intracelular. Em seguida, insira uma agulha de seringa na pipeta e expulse suavemente a solução intracelular da seringa para terminar de encher a pipeta. Conecte a pipeta ao ampcabeça do amplificador stage na configuração de eletrofisiologia. É importante manter o estágio principal em um ângulo de aproximadamente 45 graus em relação ao eixo horizontal, pois isso garante um ângulo de entrada para a pipeta adequado para a formação de vedações de alta resistência com a célula de Mauthner.
Logo antes de a pipeta descer na solução do banho, aplique uma pequena quantidade de pressão positiva na pipeta para reduzir a chance de bloqueio da ponteira. Continue a se aproximar da célula M com uma pequena quantidade de pressão positiva na pipeta. A pressão positiva empurra suavemente a célula de um lado para o outro e, quando posicionada imediatamente sobre a célula, forma uma pequena covinha na membrana celular.
Agora, deixe a pipeta no lugar por alguns segundos para limpar suavemente a superfície da célula para que uma vedação forte entre a pipeta e a membrana possa ser formada. Em seguida, libere a pressão positiva na pipeta para iniciar a vedação. Uma pequena quantidade de pressão negativa, juntamente com potencial de pipeta negativo, resulta na formação de vedações de giga-ohm em poucos segundos.
Em seguida, altere o potencial de retenção no amplificador para menos 60 milivolts. Rompa a membrana celular com uma série de pulsos curtos de sucção. Em seguida, registre imediatamente os potenciais de membrana e minimize os artefatos de capacitância. Compense a capacitância da célula e a resistência de acesso em 70% a 85%.
A resistência de acesso deve ser monitorada a cada 30 segundos a um minuto e, se houver uma mudança de 20% ou mais, aborte o experimento. Uma vez que o experimento tenha terminado e dados suficientes tenham sido adquiridos, sacrifique o embrião removendo o rombencéfalo com um par de fórceps.