Injeção intraperitoneal: um método de administração de solução na cavidade abdominal de um peixe-zebra adulto

0 views • 2:53 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Jejue um peixe adulto por 24 horas antes da injeção para esvaziar o trato gastrointestinal e criar espaço adicional no abdômen. No dia do procedimento, anestesie o peixe com tricaína e coloque-o em uma fenda em uma esponja úmida com o lado ventral voltado para cima.

Em seguida, pipete a quantidade desejada de solução injetável em um pedaço de filme de laboratório e puxe-o para uma agulha de insulina. Posicione a agulha entre as nadadeiras pélvicas em um ângulo de 45 graus em relação ao eixo ântero-posterior do corpo e empurre-a suavemente na linha média. Avance a agulha aproximadamente 1 a 2 milímetros na cavidade abdominal, o espaço entre a parede abdominal e os órgãos internos, e injete lentamente a solução de interesse. Aguarde cinco segundos antes de retirar a agulha para evitar qualquer derramamento. Agora, remova cuidadosamente a agulha.

Após a injeção, transfira rapidamente o peixe para um tanque de recuperação contendo água fresca do tanque. Se o peixe não começar a nadar imediatamente, gire a água perto das guelras para ajudá-lo a se recuperar da anestesia. No protocolo de exemplo, injetaremos uma solução de mycobacterium marinum em peixes mutantes RAG1 para estudar a infecção.

- Primeiro, canalize uma gota de 5 microlitros da solução bacteriana diluída para um pedaço de filme de parafina. Em seguida, puxe a gota para uma agulha de insulina de calibre 30. Use um peixe de cinco a oito meses de idade para este experimento, sendo um peixe do tipo selvagem e o outro um peixe mutante RAG.

Posicione esses peixes com o lado ventral para cima nas fendas de um pedaço de espuma de plástico úmido. Injete a agulha de insulina entre as nadadeiras pélvicas em um ângulo de 45 graus. Mantenha a abertura da agulha para cima para garantir que toda a abertura esteja dentro da cavidade abdominal. Em seguida, injete lentamente a solução bacteriana. Depois disso, remova cuidadosamente a agulha e transfira imediatamente o peixe para um tanque de recuperação cheio de água fresca do tanque.

Colher amostras da alíquota bacteriana utilizada de 15 em 15 minutos em placas 7H10. Incube essas amostras a 29 graus Celsius por cinco dias para verificar a dose de infecção. Verifique o bem-estar dos peixes regularmente, certificando-se de sacrificar qualquer peixe com sintomas de infecção, incubando-os em água com mais de 0,02% de éster etílico de ácido 3-aminobenzóico.

08:53

Análise de Composição Nephron e função no rim adulto Zebrafish

Related Videos

0 Views

07:45

Um manual de tela pequena molécula Aproximando de alta capacidade Usando embriões Zebrafish

Related Videos

0 Views

07:00

Modelagem de tuberculose no Zebrafish adulto infectado de Mycobacterium marinum

Related Videos

0 Views

04:50

Retro-orbital de injeção no Zebrafish Adulto

Related Videos

0 Views

09:19

Injeção intraperitoneal em Zebrafish Adulto

Related Videos

0 Views

02:47

Injeção intramuscular (IM): entrega composta no músculo dorsal de um peixe-zebra adulto

Related Videos

0 Views

02:56

Injeção intratorácica: entrega composta ao coração do peixe-zebra adulto

Related Videos

0 Views

07:22

Injeção intratorácica para o estudo do coração de zebrafish adulto

Related Videos

0 Views

02:32

Uma técnica de injeção intraperitoneal em peixe-zebra adulto que minimiza os danos corporais e a mortalidade associada

Related Videos

0 Views

05:17

Injeção intravenosa otimizada em peixe-zebra adulto

Related Videos

0 Views

Last updated: 11 July 2026