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- Coloque duas fêmeas e dois machos em um tanque de reprodução dividido uma noite antes da injeção. Na manhã seguinte, remova a divisória e deixe os peixes se reproduzirem até observar os ovos no fundo do tanque. Recolha os ovos e lave-os com meio E3 contendo azul de metileno, um fungicida. Observe os ovos ao microscópio e remova os ovos não fertilizados. Os ovos não fertilizados têm uma membrana vitelina clara, enquanto os ovos fertilizados têm uma membrana vitelina escura.
Mantenha 10 embriões em uma placa de Petri separada como controles não injetados. Usando uma pipeta de transferência, alinhe os embriões na calha de uma placa de microinjeção à temperatura ambiente e coloque-a sob o microscópio. Empurre suavemente a agulha de microinjeção através do córion para a gema e injete lentamente um composto de interesse contendo um marcador como o vermelho de fenol. O fluxo citoplasmático permite que o composto se difunda nas células embrionárias.
Após a injeção, cultive os embriões em meio E3 com azul de metileno a 28 graus Celsius. Continue verificando a saúde dos embriões. Remova quaisquer embriões mortos ou em desenvolvimento anormal e troque o meio diariamente. No protocolo a seguir, usaremos microinjeção para entregar uma ribonucleoproteína, ou complexo RNP, em embriões de peixe-zebra.
- Primeiro, prepare os peixes-zebra para reprodução na noite anterior à realização das injeções, conforme descrito no protocolo de texto. Em seguida, combine a proteína Cas9 e o sgRNA em uma proporção de dois para um. Incube a solução à temperatura ambiente por cinco minutos enquanto o Cas9 e o sgRNA formam um complexo de ribonucleoproteínas. Em seguida, adicione 0,5 microlitros de soluções de vermelho de fenol a 2,5% em água livre de RNase suficiente para atingir um volume final de cinco microlitros.
Para preparar a agulha de injeção, use um extrator de micropipeta para puxar um capilar de vidro de um milímetro. Em seguida, corte a ponta da agulha de vidro resultante com uma lâmina de barbear para obter uma abertura angular. Coloque a agulha em um micromanipulador conectado a um microinjetor. Usando um microscópio de luz, ajuste a pressão de injeção até que a agulha injete consistentemente um nanolitro de solução na placa de Petri.
- Antes de realizar a microinjeção de embriões, pratique a preparação de agulhas e a injeção de embriões de controle usando uma solução somente de corante e registre a sobrevivência após 24 horas de desenvolvimento. Você deve ser capaz de obter mais de 90% de sobrevivência em comparação com um controle não injetado.
- Em seguida, selecione de 10 a 15 embriões como uma população de controle e coloque-os em uma placa de Petri rotulada separada. Usando uma pipeta de transferência, alinhe cuidadosamente os embriões restantes em uma placa de injeção em temperatura ambiente. Sob um microscópio de dissecação, injete um nanolitro da solução no saco vitelino de cada embrião. Em seguida, retorne os embriões injetados a uma placa de Petri rotulada e cubra-os com meio 1X E3 com azul de metileno. Coloque os embriões injetados em uma incubadora a 28 graus Celsius por 24 horas. Em seguida, inspecione os embriões injetados para remover indivíduos mortos ou com desenvolvimento anormal.