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- Para começar, dilua as células tumorais circulantes isoladas ou CTCs até a concentração necessária usando uma solução anti-ligação que proteja as células do cisalhamento do fluido e danos causados pela pressão. Em seguida, monte uma lâmina de microscópio revestida de polilisina e um cartão de filtro de citocentrífuga em um conjunto de funil de citocentrífuga. Transferir a suspensão celular para a porta do funil do conjunto, seguida de citocentrifugação.
A força centrífuga concentra e deposita uma monocamada de células em uma área circular na lâmina. Isole a área depositada com células usando um isolador de silicone. Depois de seco, fixe as células usando paraformaldeído. Em seguida, incube as células com uma solução de bloqueio adequada contendo proteínas que se ligam prontamente a quaisquer locais de ligação não específicos na superfície celular.
Agora, rotule as células com uma solução de anticorpo marcada com fluorescência de interesse. Os anticorpos marcados com fluoróforo reconhecem e se ligam a moléculas-alvo específicas na superfície da célula. Lave a amostra para remover quaisquer anticorpos não ligados. Adicione uma solução de montagem para preparar a amostra para imagem.
Use um microscópio de fluorescência para detectar a luz emitida pelos conjugados anticorpo-fluoróforo ligados aos antígenos-alvo nas CTCs. Neste protocolo, realizaremos ensaio de imunofluorescência de CTCs em amostras de pacientes com câncer de pulmão de células não pequenas.
- Para coloração de imunofluorescência, conte as células em um hemocitômetro e dilua a amostra enriquecida para 1 vezes 10 elevado à quinta células por 100 microlitros de concentração de solução anti-ligação a 0,2%. Em seguida, use um cotonete embebido em 50 microlitros de solução anti-ligação para umedecer o contorno da câmara de amostra e coloque uma lâmina de vidro de polilisina na câmara de amostra.
Feche a câmara e pipete para cima e para baixo três vezes para revestir uma ponta de micropipeta com a solução de ligação antes de ressuspender a amostra nos últimos 100 microlitros do sobrenadante. Transfira a solução celular para a câmara de amostra e faça o citospin da amostra em uma centrífuga dedicada a 400 rotações por minuto por 4 minutos em baixa aceleração.
No final da centrifugação, colocar um isolador de silício à volta da área de deposição e deixar a lâmina secar sob uma cabina de segurança microbiológica durante dois minutos. Em seguida, fixe a amostra citofiada com 100 microlitros de paraformaldeído a 4% por 10 minutos em temperatura ambiente, seguido de três lavagens de 2 minutos com 200 microlitros de PBS por lavagem em temperatura ambiente.
Após a última lavagem, bloquear qualquer ligação não específica com uma incubação de 30 minutos em reagente bloqueador à temperatura ambiente, seguida de rotulagem com 100 microlitros da solução de anticorpos de interesse. Coloque a lâmina rotulada em uma placa de Petri de 100 por 15 mililitros sobre um pedaço de papel absorvente umedecido com 2 mililitros de água estéril e coloque a placa fechada a 4 graus Celsius durante a noite, protegida da luz.
Na manhã seguinte, lave a amostra três vezes com PBS conforme demonstrado e monte a amostra com 10 microlitros de uma solução de montagem apropriada e uma lamínula de vidro. Em seguida, sele a lamínula com esmalte transparente.