Análise do ciclo celular: uma abordagem para estudar a regulação do ciclo celular de células de câncer de pulmão transfectadas com miRNA

0 vistas3:34 min • April 30th, 2023

- Um microRNA ou miRNA é um RNA pequeno e não codificante. Após a transfecção ou introdução de mRNA em uma célula, ele forma um complexo de proteínas de miRNA. O complexo tem como alvo e se liga a mRNA específico e regula negativamente sua expressão, interrompendo a progressão do ciclo celular.

Para iniciar a análise, adicione um fixador desidratante adequado a uma cultura colhida de células de câncer de pulmão transfectadas com miRNA. O fixador preserva as células e também permeia a membrana celular. Trate as células com uma mistura de iodeto de propídio, um corante de ácido nucleico fluorescente e enzima ribonuclease.

O corante entra nas células e cora o DNA e o RNA. As enzimas degradam especificamente o RNA, permitindo a quantificação ideal do DNA. Use um citômetro de fluxo para determinar a proporção de células interrompidas em diferentes fases do ciclo celular com base na intensidade de fluorescência de células individuais.

As células nas fases de repouso e crescimento têm menor conteúdo de DNA e, portanto, menor intensidade de fluorescência. As células na fase Gap 2 com o dobro da quantidade de DNA produzem o dobro da intensidade de fluorescência. As células na fase de síntese de DNA induzem um valor de fluorescência entre as outras duas populações. O protocolo a seguir analisará a regulação do ciclo celular de células de câncer de pulmão tratadas com miRNA, medindo seu conteúdo de DNA usando coloração PI e citometria de fluxo.

- Transfecte as células conforme descrito na seção anterior deste vídeo. Colha células de cada amostra em tubos estéreis separados de 15 mililitros por tripsinização. Em seguida, lave as células duas vezes com PBS 1X por centrifugação a 751 g por 5 minutos e depois remova o sobrenadante. Ressuspenda e quebre o pellet adicionando 200 microlitros de PBS 1X gelados por meio de pipetagem.

Adicione 2 mililitros de etanol gelado a 70% gota a gota ao tubo enquanto agita o tubo suavemente para fixar as células. Incube os tubos por 30 minutos em temperatura ambiente e coloque-os a 4 graus Celsius por 1 hora. Remova os tubos de 4 graus Celsius e centrifugue.

Adicione 2 mL de PBS gelado e vórtice e, em seguida, remova o sobrenadante por centrifugação. Adicione 500 microlitros de PBS 1X contendo iodeto de propídio e ribonuclease A com concentrações de 50 e 200 microgramas por mililitro, respectivamente, em cada amostra e incube por 30 minutos em temperatura ambiente. Transfira as amostras para tubos apropriados que protejam da luz e funcionem com citômetro de fluxo.

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Última atualização: 29 agosto 2026