Ensaio de formação de colônias: avaliando a eficácia de agentes anticancerígenos em células de câncer de pulmão formadoras de colônias

0 vistas4:11 min • April 30th, 2023

- O ensaio de formação de colônias é uma análise in vitro de um medicamento anticancerígeno no crescimento da célula cancerígena, proliferando e diferenciando-se em colônias em meio semissólido. Para começar, semeie células cancerígenas no meio RPMI com suplemento de crescimento - soro fetal bovino, ou FBS, e antibiótico. Incube as células pelo tempo necessário.

Em seguida, colete a concentração desejada de células em um tubo de microcentrífuga e centrifugue. Suspenda novamente o pellet em PBS. Prepare o meio à base de metilcelulose e distribua-o em diferentes tubos com FBS para promover o crescimento ideal.

Adicione uma quantidade apropriada de suspensão celular em tubos e vórtice-os para misturar as células com o meio. Em seguida, adicione compostos anticancerígenos em tubos e prepare um controle adicionando DMSO. Tubos de vórtice.

Adicione esta mistura de células à placa de cultura e incube durante o período desejado. Após a incubação, adicione brometo de metiltiazol difeniltetrazólio, ou MTT, e incube por algum tempo. O MTT reduz o sal de tetrazólio amarelo em células viáveis a cristais de formazan roxo. As colônias viáveis tornam-se violetas. Capture as imagens usando uma câmera digital e analise as colônias viáveis. No protocolo a seguir, estudaremos o ensaio de formação de colônias para avaliar a atividade dos miméticos de hidroxicumarina OT48 e BH3 no câncer de pulmão.

- Para começar, coloque 20.000 células A549 por centímetro quadrado em 15 mililitros de meio de cultura de células RPMI 1640, suplementado com 10% de FBS e 1% de antibióticos em um frasco de 75 centímetros quadrados. Incubar a cultura a 37 graus Celsius e 5% de CO2. No dia do experimento, use um hemocitômetro para determinar a concentração celular.

Colete 50.000 células em um tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitro por centrifugação a 400 G por sete minutos. E ressuspenda as células em 100 microlitros de PBS 1X estéril. Usando uma pipeta múltipla, dispense 1,1 mililitros de meio semissólido à base de metilcelulose, ou MCBM, em tubos, preparando um tubo para cada condição. Em seguida, adicione 110 microlitros de FBS a cada tubo.

Em seguida, semeie 1.000 células por mililitro. Em seguida, pipete 2,4 microlitros da solução de célula estoque nos tubos de MCBM e FBS. Depois de adicionar as células, segure os tubos verticalmente e os vortex na velocidade mais alta por um minuto para misturar completamente o MCBM e as células.

Agora, adicione o composto de teste OT48 sozinho ou em combinação com A1210477 às amostras. Prepare um tubo separado como controle para o solvente usado, como DMSO. Em seguida, vórtice as amostras por um minuto.

Para cada ensaio, pipete um mililitro da mistura para o poço central de uma placa de cultura de células de 12 poços. Em seguida, use um mililitro de água estéril ou PBS para encher os poços vazios. Incubar as placas a 37 graus Celsius e 5% de CO2 por 10 dias. Em seguida, adicione 200 microlitros de uma solução de estoque de MTT de cinco miligramas por mililitro a cada poço. Depois de incubar as placas por 10 minutos, verifique se há colônias viáveis, que ficarão violetas.

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Última atualização: 22 agosto 2026