Name: Indução e Avaliação de recombinação mudança de classe em purificada Células B murino (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-08-13T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 49 s
Description: Aprenda a induzir e avaliar recombinação de troca de classe em células B murinas purificadas usando separação magnética e citometria de fluxo. Este método permite estudar proliferação e imunidade humoral in vitro.

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Somos gratos ao laboratório Martin para discussões úteis. Esta publicação é apoiada por uma bolsa do Instituto Canadense de Pesquisa em Saúde (MOP-89783). AM é apoiado por um presidente de Pesquisa do Canadá Nível II Prêmio.

Etapa I: Isolamento de células B do baço via de enriquecimento magnética <ol><li> Camundongos experimentais devem ser envelhecidos 8-12 semanas para garantir a plena maturação do sistema imunológico. </li><li> Euthanize o mouse por deslocamento cervical e mergulhar em etanol 70%. Remoção cirúrgica do baço por fazer uma incisão através da pele e do músculo do hipocôndrio esquerdo do abdômen e corte-o em três pedaços grandes em tampão fosfato salino (PBS). Assegurar que todas as ferramentas e os reagentes são estéreis. </li><li> Usando o final de borracha de uma seringa de 1 mL êmbolo, gentilmente amasse o baço através de um filtro de células 70 mM em PBS. Certifique-se de usar um movimento de empurrar ao invés de um movimento de moagem como a moagem pode levar à ruptura de maior (ou seja, proliferação) das células. </li><li> Girar as células, não superior a 350 g por 5 minutos e ressuspender o sedimento em PBS. Contar as células ressuspenso utilizando um hemocitômetro. </li><li> Prepare uma suspensão de 1x10 8 células / mL em PBS com soro de ratos normais 5% em um tubo estéril de poliestireno 5 mL com uma tampa (volume máximo de 2 mL por tubo). </li><li> Adicionar 50 mL de EasySep Seleção rato Negative B cocktail de Enriquecimento de células para cada mL de células. Pipeta a mistura, os tubos de tampa e coloque na geladeira por 15 minutos. </li><li> Adicionar 100 mL EasySep Cocktail Seleção Biotina para cada mL de células. Pipeta a mistura, os tubos de tampa e coloque na geladeira por 15 minutos. </li><li> Adicionar 100 mL de EasySep nanopartículas magnéticas (garantir nanopartículas são bem misturados ea solução é homogênea) para cada mL de células. Pipeta a mistura, os tubos de tampa e coloque na geladeira por 5 minutos. </li><li> A solução de cima para 2,5 ml com PBS e colocar em um ímã EasySep por 5 minutos. Inverter o ímã e tubo e despeje rapidamente em um tubo de poliestireno novo. Não agite o tubo como células negativamente selecionados serão magneticamente ligado às paredes do tubo. </li><li> Para aumentar ainda mais a pureza da suspensão de células, o tubo pode ser reinserido no ímã para um adicional de 5 minutos e colocada em um novo tubo. Isto pode reduzir a recuperação das células em geral. </li><li> B pureza celular pode ser avaliado por análise de citometria de fluxo de marcadores de superfície de células B. Após o enriquecimento, nós sempre ver uma pureza&gt; 95% B220 células positivas. </li></ol> Etapa II: A coloração celular CFSE <ol><li> Volte a suspender as células isoladas em PBS suplementado com calorosa 0,1% de soro albumina bovina a uma concentração final de 1 x 10 6 células por ml. </li><li> Prepare uma solução estoque de 5mM CFSE (diluída em dimetil sulfóxido estéril) e adicione 2μL para cada mL de células no tubo. A concentração final de 10μM é ideal para a coloração de células B primário. </li><li> Incubar a 37 ° C por 10 minutos no escuro (note: CFSE é sensível à luz e deve ser mantido no escuro, quando possível). </li><li> Saciar a mancha, adicionando um volume igual de soro bovino para suas células e incubar no gelo por 5 minutos. </li><li> Lave as células, completando-se os tubos com meio de cultura (veja a etapa III para a receita) e centrifugação a 350 g. Note-se que pelo menos 5 vezes o volume equivalente de mídia deve ser adicionado para neutralizar a viscosidade do soro bovino e para as células a produzir uma pelota. </li><li> Lave as células duas vezes mais em meio de cultura. As células estão agora prontos para a estimulação. </li></ol> Etapa III: estimulação celular com LPS <ol><li> Prepare o seu in vitro meio de cultura celular B, completando RPMI 1640 com soro bovino fetal 10% e 50 mM β-mercaptoetanol /. </li><li> Prepare seu meio de estimulação, adicionando LPS numa concentração final de 50μg/mL. ML alíquota do meio de 125 a estimulação em cada poço de uma placa de cultura de fundo chato de 96 poços de tecido. </li><li> Prepare suas células CFSE manchada de B em meio de cultura sem LPS na concentração final de 3,2 x 10 6 células / mL. Adicionar 125 mL da suspensão de células para os poços contendo o seu meio de estimulação e misture delicadamente por pipetagem. </li><li> Cada poço contém agora 4 x 10 5 células em uma concentração de LPS final de 25 mcg / mL. Isto proporciona ótimos níveis de proliferação celular e mudança de classe, embora as alterações a estes valores podem ser feitas como desejado. </li><li> Incubar as células a 37 ° C e 5% CO 2 por 72 a 96 horas. Após 48 horas, clusters de grandes células B proliferam será claramente visível ao microscópio. </li></ol> Etapa IV: análise de citometria de fluxo de mudança de classe <ol><li> Quando estiver pronto para olhar para mudança de classe, remover as células de suas condições de cultura e lavá-los duas vezes em 1 mL de tampão de marcação (PBS com 2% de bovinos soro bovino). </li><li> Para evitar que a coloração não específica de anticorpos de suas células, as células pellet girando-os em 350 g e incubaçãote-los em 100μL de coloração de buffer com soro de rato normal e 5% de 1μg FcBlock per106 células por 15 minutos no gelo. Bloqueio de celular deve ser realizada no gelo. </li><li> Sem lavar as células, adicionar 1μg por 10 6 células de um anti-rato fluorescente etiquetado anticorpos IgG3 e permitir que as células a mancha por 30 minutos no gelo. </li><li> Lave as células duas vezes por centrifugação e ressuspender em 200-300 mL de tampão de coloração. As células estão agora prontos para a avaliação por citometria de fluxo. </li><li> CFSE é otimamente animado a 492 nm (por laser de argônio-ion) e emite a 517 nm. O espectro de excitação e emissão do anticorpo IgG3 é dependente de sua tintura conjugado fluorescente. </li></ol> Resultados representante Após o enriquecimento magnético, a suspensão celular deve ser semelhante a uma população homogênea de pequenas células indistinguíveis circular (Figura 1A). Após 48-72 horas de estimulação, núcleos isolados de células em proliferação alargada será claramente visível (Figura 1B). Uma grande parte das células não-proliferação aparecerá pequena e granular como eles sofrem apoptose. A RSE pode ser normalmente detectado nos níveis mais altos entre 72 e 96 horas após a estimulação antes da maioria das células começam a morrer 7. Nesta fase, as células devem ter sido submetidos a uma série de divisões celulares com células ligado aparecer na população mais tarde células filhas. Um gráfico de fluxo representante citometria de diluição CFSE e expressão de superfície de IgG3 após 96 horas de estimulação LPS pode ser visto na Figura 2. Tabela 1. Isotype comutação cocktails. Nota: Os valores de concentração de estimulantes são apenas recomendações. Titulações podem ser necessárias. <table border="1"><tbody><tr><td> Isotype desejado </td><td> Cocktail estimulação </td></tr><tr><td> IgG1and IgE </td><td> LPS (25μg/mL) e IL-4 (10 ng / mL) </td></tr><tr><td> IgG1and IgE </td><td> Anti-CD40 (10μg/mL) e IL-4 (10 ng / mL) </td></tr><tr><td> IgG2a </td><td> LPS (25μg/mL) e IFN-γ (10 ng / mL) </td></tr><tr><td> IgG2b e IgG3 </td><td> LPS (25μg/mL) </td></tr><tr><td> IgA </td><td> LPS (25μg/mL), TGF-β (2 ng / mL) e IL-5 (1,5 ng / mL) </td></tr></tbody></table><img src="/files/ftp_upload/2130/2130fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Isolamento e LPS estimulação das células B do baço. (A) magneticamente enriquecido células B esplênicas antes da estimulação LPS. (B) 48 horas após a estimulação com 25 mg / mL de LPS. As células em crescimento são vistos como clusters em um fundo de células apoptóticas e explodir. <img src="/files/ftp_upload/2130/2130fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Proliferação e recombinação mudança de classe após 96 horas. (A) diluição CFSE para LPS estimulou as células após 96 horas de cultura. Cada pico independente representa uma diluição de fluorescência CFSE correspondente a uma divisão celular independente. (B) a expressão IgG3 mostrando o surgimento de uma população IgG3 positivo após várias rodadas de divisão celular.

<ol><li>Hodgkin, P. D., Lee, J. H., Lyons, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B+cell+differentiation+and+isotype+switching+is+related+to+division+cycle+number%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">B cell differentiation and isotype switching is related to division cycle number.</a> J Exp Med. 184, 277-281 (1996).</li>
<li>McCall, M. N., Hodgkin, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Switch+recombination+and+germ-line+transcription+are+division-regulated+events+in+B+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim+Biophys+Acta%22%5BJournal%5D)">Switch recombination and germ-line transcription are division-regulated events in B lymphocytes.</a> Biochim Biophys Acta. 1447, 43-50 (1999).</li>
<li>Manis, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((53BP1+links+DNA+damage-response+pathways+to+immunoglobulin+heavy+chain+class-switch+recombination%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">53BP1 links DNA damage-response pathways to immunoglobulin heavy chain class-switch recombination.</a> Nat Immunol. 5, 481-487 (2004).</li>
<li>de Yebenes, V. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miR-181b+negatively+regulates+activation-induced+cytidine+deaminase+in+B+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">miR-181b negatively regulates activation-induced cytidine deaminase in B cells.</a> J Exp Med. 205, 2199-2206 (2008).</li>
<li>McBride, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+class+switch+recombination+and+somatic+mutation+by+AID+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Regulation of class switch recombination and somatic mutation by AID phosphorylation.</a> J Exp Med. 205, 2585-2594 (2008).</li>
<li>Ramachandran, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+RNF8%2FRNF168+ubiquitin+ligase+cascade+facilitates+class+switch+recombination%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">The RNF8/RNF168 ubiquitin ligase cascade facilitates class switch recombination.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 809-8014 (2010).</li>
<li>Zaheen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AID+constrains+germinal+center+size+by+rendering+B+cells+susceptible+to+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">AID constrains germinal center size by rendering B cells susceptible to apoptosis.</a> Blood. 114, 547-554 (2009).</li>
<li>Chaudhuri, J., Alt, F. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Class-switch+recombination%3A+interplay+of+transcription%2C+DNA+deamination+and+DNA+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Class-switch recombination: interplay of transcription, DNA deamination and DNA repair.</a> Nat Rev Immunol. 4, 541-552 (2004).</li>
<li>Kaminski, D. A., Stavnezer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimuli+that+enhance+IgA+class+switching+increase+histone+3+acetylation+at+S+alpha%2C+but+poorly+stimulate+sequential+switching+from+IgG2b%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Stimuli that enhance IgA class switching increase histone 3 acetylation at S alpha, but poorly stimulate sequential switching from IgG2b.</a> Eur J Immunol. 37, 240-251 (2007).</li>
<li>Kaminski, D. A., Stavnezer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibody+class+switching+differs+among+SJL%2C+C57BL%2F6+and+129+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Immunol%22%5BJournal%5D)">Antibody class switching differs among SJL, C57BL/6 and 129 mice.</a> Int Immunol. 19, 545-556 (2007).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

O protocolo descrito acima fornece um ensaio padrão para analisar a expressão de AID e função durante a mudança de classe de células primárias de B murinos. Este protocolo usa LPS bacteriano para induzir a mudança de IgM para IgG3, apesar de modificações para a mídia estimulação pode ser feita para induzir a mudança para outros isotipos (resumidos na Tabela 1 8, 9). Temos notado que, por razões ainda desconhecidas, soro fetal bovino pode afetar o nível de classe de comutação obser...

<table><tbody><tr><td>Solução Salina Tamponada com Fosfato</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>14190</td><td></td></tr><tr><td>Kit de Enriquecimento de Células B de Camundongo EasySep</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>19754</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de Poliestireno</td><td>BD Biosciences</td><td>352058</td><td></td></tr><tr><td>Albumina Sérica Bovina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7030</td><td></td></tr><tr><td>Kit de Proliferação Celular CellTrace CFSE</td><td>Invitrogen</td><td>C34554</td><td></td></tr><tr><td>Soro de Bezerro Bovino</td><td>Hyclone</td><td>SH30072.03</td><td></td></tr><tr><td>Meio de Cultura RPMI 1640</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>11875</td><td></td></tr><tr><td>Lipopolissacarídeos de &lt;em&gt;Escherichia coli&lt;/em&gt;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L6529</td><td></td></tr><tr><td>&amp;#946;-mercapto&amp;#8211;etanol</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>21985</td><td></td></tr><tr><td>Soro Fetal Bovino</td><td>Hyclone</td><td>SH30396.03</td><td></td></tr><tr><td>Soro de Camundongo Normal</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>011-000</td><td></td></tr><tr><td>Rato Purificado Anti-Mouse CD16/CD32 (Bloqueador de Fc da BD para Camundongo)</td><td>BD Biosciences</td><td>553141</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo Rato Anti-Mouse IgG3</td><td>BD Biosciences</td><td>553401</td><td></td></tr></tbody></table>

indução e avaliação de recombinação mudança de classe em purificada células b murino

Induction and Assessment of Class Switch Recombination in Purified Murine B Cells

Imunidade humoral é o ramo do sistema imunológico mantido por células B e mediada através da secreção de anticorpos. Após a ativação de células B, o locus da imunoglobulina sofre uma série de modificações genéticas para alterar a capacidade de ligação e função efetora de anticorpos secretados. Este processo é destacado por um evento de recombinação do genoma conhecido como recombinação classe switch (CSR), no qual o padrão isotipo de anticorpos IgM é substituído por um de IgG, IgA ou IgE. Cada isotipo possui diferentes funções efetoras tornando CSR crucial para a manutenção da imunidade. Diversificação do lócus imunoglobulina é mediada pela enzima citidina desaminase ativação induzida (AID). Um vídeo esquemáticos descrevendo esse processo em detalhes está disponível online (http://video.med.utoronto.ca/videoprojects/immunology/aam.html). Atividade da AID e na via de RSE são comumente estudados na avaliação da função das células B e imunidade humoral em camundongos. O protocolo apresentado neste relatório apresenta um método de isolamento de células B do baço de camundongos e estimulação subseqüente com lipopolissacarídeo bacteriano (LPS) para induzir a mudança para classe IgG3 (para isotipos outro anticorpo ver Tabela 1). Além disso, a coloração fluorescente de células corante carboxifluoresceína succinimidyl éster (CFSE) é usado para monitorar a divisão celular de células estimuladas, um processo crucial para a mudança isotipo 1, 2. A regulamentação da AID e do mecanismo pelo qual ocorre RSE ainda não estão claros e, portanto, em ensaios in vitro interruptor classe fornecem um método confiável para testar esses processos em vários modelos de mouse. Estes testes têm sido utilizados anteriormente no contexto da deficiência do gene usando camundongos knockout 3. Além disso, in vitro comutação de células B pode ser precedida por transdução viral para modular a expressão gênica por RNA knockdown ou expressão do transgene 4-6. Os dados desses tipos de experimentos têm impactado a nossa compreensão da atividade AID, a resolução da reação de RSE, e mediada por anticorpos de imunidade no mouse.

Após a exposição de antígenos, subpopulações de células ativadas B passam por um processo conhecido como recombinação mudança de classe (CSR) para produzir isotipos de anticorpos com diferentes funções efetoras. O protocolo apresentado neste relatório explica como a RSE pode ser induzido e analisados<em&gt; In vitro</em&gt; Para efeitos de estudo B a função celular.

Indução e Avaliação de recombinação mudança de classe em purificada Células B murino

A imunidade humoral é o ramo do sistema imunológico mantido pelas células B e mediado por meio da secreção de anticorpos. Após a ativação da célula B, o...

Durante a resposta imune humoral, as células B ativadas pelo antígeno proliferam e secretam anticorpos à medida que a resposta progride. O isotipo padrão de I GM é substituído pelos isotipos mais diversos IgG, IgA ou IgE para avaliar a proliferação e a troca de classe. Células B esplênicas são isoladas in vitro de um camundongo experimental utilizando separação magnética de células.As células são coradas com o corante fluorescente CFSE para monitorar a proliferação, que é estimulada pelo tratamento com LPS bacteriano. O LPS também induz a troca de classe para o isotipo IgG3, que, juntamente com a proliferação, pode ser monitorada por citometria de fluxo. Hoje vou demonstrar uma técnica para o isolamento e ativação de linfócitos B esplênicos puros. Esta técnica pode ser utilizada para analisar a recombinação de troca de classe e a proliferação in vitro, além de poder responder a questões fundamentais no campo da imunidade de células B, incluindo a função e regulação da citidina desaminase induzida por ativação.Comece por imergir um camundongo eutanasiado em etanol a 70%. O camundongo deve ter entre oito e 12 semanas de idade. Para garantir a completa maturação do sistema imunológico, utilize tesoura estéril para fazer uma incisão através da pele e do músculo da região hipocôndria esquerda do abdômen. Use tesoura ou pinça para remover o baço dos tecidos adjacentes.Em seguida, corte-o em três partes grandes em PBS. Depois, usando a extremidade de borracha do êmbolo de uma seringa de um mililitro, esmague suavemente o baço através de uma peneira celular de 70 micrômetros para dentro do PBS. Certifique-se de usar um movimento de empurrar, e não de moer.Como a moagem pode levar à ruptura de células proliferativas maiores, centrifugue as células a no máximo 350 G durante cinco minutos. Em seguida, re-suspenda o pellet em PBS.Conte as células ressuspensas utilizando um hemocitômetro em um tubo estéril de cinco mililitros de poliestireno. Prepare uma suspensão de um vezes 10 à oitava potência de células por mililitro em PBS com 5% de soro normal de rato. Um máximo de dois mililitros pode ser adicionado a cada tubo.A seguir, adicione 50 microlitros do coquetel de enriquecimento de linfócitos B negativos EP para cada mililitro de células. Em seguida, tampe os tubos e coloque-os na geladeira por 15 minutos.Adicione 100 microlitros do coquetel de seleção EP biotinado por cada mililitro de células. Tampe os tubos e coloque-os na geladeira por 15 minutos após a incubação com a mistura de nanopartículas magnéticas EP do coquetel de seleção biotinado e adicione 100 microlitros por cada mililitro de células. Pipete a mistura, tampe os tubos e coloque-os na geladeira por cinco minutos.Complete a solução até 2,5 mililitros com PBS e coloque em um ímã cept por cinco minutos. Inverta o ímã no tubo e despeje rapidamente em um novo tubo de poliestireno. Não agite o tubo, pois as células negativamente selecionadas estarão ligadas magneticamente às paredes do tubo. Para aumentar ainda mais a pureza da suspensão celular, coloque o novo tubo de células no ímã por cinco minutos, depois despeje novamente em um novo tubo.Esta etapa pode reduzir a recuperação celular total. A pureza das células B pode ser avaliada por análise citométrica de fluxo de marcadores de superfície de células B. Após o enriquecimento, mais de 95% das células devem ser positivas para B dois 20.Re-suspenda as células isoladas em PBS aquecido suplementado com BSA a 0,1%, numa concentração final de um milhão de células por mililitro, a partir de uma solução estoque de cinco milimolar do corante CFSE diluído em sulfóxido de dimetila estéril. Adicione dois microlitros para cada mililitro de células no tubo. O CFSE é utilizado para monitorar a divisão celular de células estimuladas.Um processo essencial para a troca de isotipos. Uma concentração final de 10 micromolar é ideal para a coloração de linfócitos B primários. Incubar a 37 graus Celsius por 10 minutos no escuro.Observe que o CFSE é sensível à luz e deve ser mantido ao abrigo da luz sempre que possível. Após a incubação, inative a coloração adicionando um volume igual de soro de bezerro bovino às suas células e incubando no gelo por cinco minutos. Para lavar as células, complete os tubos com meio de cultura, adicionando pelo menos cinco vezes o volume equivalente de meio para contrabalançar a viscosidade do soro de bezerro bovino e permitir que as células formem um pellet; em seguida, centrifugue a 350 × g. Lave as células mais duas vezes com meio de cultura; as células estão agora prontas para estimulação.Prepare o meio de cultura de linfócitos B in vitro suplementando o RPMI 1640 com 10% de soro bovino fetal e 50 micromolar de etanol beta-metacapta. Em seguida, prepare o meio de estimulação adicionando LPS numa concentração final de 50 microgramas por mililitro. Aliquote 125 microlitros do meio de estimulação em cada poço de uma placa de cultura de tecidos de fundo plano com 96 poços.Prepare as células B coradas com E CFS em meio de cultura sem LPS numa concentração final de 3,2 vezes 10 elevado a seis células por mililitro. Adicione 125 microlitros da suspensão celular aos poços contendo o meio de estimulação e misture pipetando suavemente. Cada poço contém agora 400.000 células numa concentração final de LPS de 25 microgramas por mililitro.Isso fornece níveis ideais de proliferação celular e troca de classe. Embora alterações nesses valores possam ser feitas conforme desejado, incubar as células a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono por 72 a 96 horas. Após 48 horas, aglomerados de grandes células B em proliferação serão claramente visíveis sob microscópio para observar a troca de classe.Remova as células do incubador e lave-as duas vezes em um mililitro de tampão de marcação para evitar marcação não específica de anticorpos. Pelize as células centrifugando-as a 350 G. Em seguida, reconstitua as células em 100 microlitros de tampão de marcação com 5% de soro normal de camundongo e um micrograma de bloqueador FC por milhão de células e incube por 15 minutos no gelo sem lavar. Adicione um anticorpo secundário anti-IgG de US marcado com fluoróforo a uma concentração de um micrograma por milhão de células, incube por 30 minutos no gelo, lave as células duas vezes e reconstitua-as em dois a 300 microlitros de tampão de marcação.As células estão agora prontas para avaliação por citometria de fluxo. O CFSE é idealmente excitado a 492 nanômetros por um laser de íon argônio e emite em 517 nanômetros. O espectro de excitação e emissão do anticorpo IgG três depende do corante fluorescente ao qual está conjugado.Após o enriquecimento magnético, a suspensão celular deve apresentar uma população homogênea de células pequenas e circulares, indistinguíveis entre si. Após 48 a 72 horas de estimulação, aglomerados isolados de células proliferantes aumentadas serão claramente visíveis. Uma grande parte das células não proliferantes parecerá pequena e granular, à medida que sofrerem apoptose.A RSC normalmente pode ser detectada nos níveis mais altos entre 72 e 96 horas após a estimulação, antes de a maioria das células começar a morrer. Nesta fase, as células já deverão ter passado por várias divisões celulares, com células comutadas surgindo na população mais tardia das células-filhas. Após esses protocolos, outras técnicas, como RNA e silenciamento gênico mediado por IA, podem ser usadas para estudar o efeito de qualquer gene na função de um ID e no processo de recombinação de comutação de classe.

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Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Um sistema eficiente de estrutura e análise da função de um gene em...

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Neste trabalho, descrevemos um protocolo para caracterizar T-dependentes e T-independentes respostas do isotipo de imunoglobulina (Ig) em camundongos usando ELISA. Este método usado sozinho ou em combinação com fluxo cytometry permitirá que os investigadores a identificar diferenças nas respostas de isotipo Ig mediada por células B em camundongos após imunização de antígenos T-dependentes e T-independentes.

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Aqui descrevemos um método de superexpressão retroviral e transferência adotiva de células murine B-1a para examinar a migração e localização celular in vivo B-1a. Este protocolo pode ser estendido para diversos ensaios funcionais a jusante, incluindo quantificação da localização celular do doador B-1a ou análise de fatores secretos derivados de células doadoras pós-transferência adotiva.

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Apresentado aqui é um ensaio para quantificar a hipermutação somática dentro do lócus genético da cadeia pesada da imunoglobulina usando células germinais do centro B das manchas do rato Peyer.

Análise da Hipermutação Somática no JH4 intron de células do Centro Germinal B das Patches de Mouse Peyer

Descrevemos aqui uma simples análise da heterogeneidade do compartimento de células B imunes da murina nos tecidos peritônio, baço e medula óssea por citometria de fluxo. O protocolo pode ser adaptado e estendido a outros tecidos do mouse.

Caracterização citométrica de fluxo do desenvolvimento de células B murinas

Neste protocolo, é descrito um modelo de colite de transferência de células T específica de microbiota intestinal. As células T CD4+ são isoladas de camundongos transgênicos CBir1 TCR. Estes são específicos para um antígeno de microbiota intestinal imunodominante CBir1 flagellin, que é transferido para camundongos Rag1-/- receptores, levando à inflamação intestinal.

Indução da Inflamação Intestinal por Transferência Adotiva de Células CD4+ T Transgênicas CBir1 T para camundongos imunodeficientes

Aprenda a induzir e avaliar recombinação de troca de classe em células B murinas purificadas usando separação magnética e citometria de fluxo. Este método permite estudar proliferação e imunidade humoral in vitro.

Indução e Avaliação de recombinação mudança de classe em purificada Células B murino

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