Name: Muscular órgãos receptores no abdômen Crayfish: Um Exercício em Laboratório Student Propriocepção (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-11-18T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 50 s
Description: Aprenda a dissecar e registrar neurônios sensoriais primários em lagostins para estudar propriocepção e fisiologia sensorial. Este método demonstra a correlação entre movimentos articulares e atividade neural em preparações de Procambarus clarkii.

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Apoiada pela Universidade de Kentucky, Departamento de Biologia, Instituto de Estudos de Graduação e Faculdade de Artes e Ciências.

<ol><li>Alexandrowicz, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+receptor+organs+in+the+abdomen+of+Homarus+vulgaris+and+Palinurus+vulgaris%5BTitle%5D)+AND+%22Q.+J.+Microsc.+Sci%22%5BJournal%5D)">Muscle receptor organs in the abdomen of Homarus vulgaris and Palinurus vulgaris.</a> Q. J. Microsc. Sci. 92, 163-199 (1951).</li>
<li>Brown, H. M., Ottoson, D., Rydqvist, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crayfish+stretch+receptor%3A+An+investigation+with+voltage-clamp+and+ion-sensitive+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Crayfish stretch receptor: An investigation with voltage-clamp and ion-sensitive electrodes.</a> J. Physiol. 284, 155-179 (1978).</li>
<li>Burgess, P. R., Wei, J. Y., Clark, F. J., Simon, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signaling+of+kinesthetic+information+by+peripheral+sensory+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Signaling of kinesthetic information by peripheral sensory receptors.</a> Ann. Rev. Neurosci. 5, 171-187 (1982).</li>
<li>Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proprioceptive+neurons+of+chordotonal+organs+in+the+crab%2C+Cancer+magister+Dana+Decapoda%2C+Brachyura%29%5BTitle%5D)+AND+%22Crustaceana%22%5BJournal%5D)">Proprioceptive neurons of chordotonal organs in the crab, Cancer magister Dana Decapoda, Brachyura).</a> Crustaceana. 81, 447-475 (2008).</li>
<li>Cooper, R. L., Govind, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axon+composition+of+the+proprioceptive+PD+nerve+during+growth+and+regeneration+of+lobster+claws%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Zool%22%5BJournal%5D)">Axon composition of the proprioceptive PD nerve during growth and regeneration of lobster claws.</a> J. Exp. Zool. 260, 181-193 (1991).</li>
<li>Cooper, R. L., Ward, E., Braxton, R., Li, H., Warren, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+serotonin+and+ecdysone+on+primary+sensory+neurons+in+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Microscopy+Res.+Technique%22%5BJournal%5D)">The effects of serotonin and ecdysone on primary sensory neurons in crayfish.</a> Microscopy Res. Technique. 60, 336-345 (2003).</li>
<li>Donelan, J. M., McVea, D. A., Pearson, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Force+regulation+of+ankle+extensor+muscle+activity+in+freely+walking+cats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Force regulation of ankle extensor muscle activity in freely walking cats.</a> J. Neurophysiol. 101, 360-371 (2009).</li>
<li>Eckert, R. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reflex+relationships+of+the+abdominal+stretch+receptors+of+the+crayfish.+I.+Feedback+inhibition+of+the+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Reflex relationships of the abdominal stretch receptors of the crayfish. I. Feedback inhibition of the receptors.</a> J. Cell. Comp. Physiol. 57, 149-162 (1961).</li>
<li>Eckert, R. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reflex+relationships+of+the+abdominal+stretch+receptors+of+the+crayfish.+II.+Stretch+receptor+involvement+during+the+swimming+reflex%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Reflex relationships of the abdominal stretch receptors of the crayfish. II. Stretch receptor involvement during the swimming reflex.</a> J. Cell. Comp. Physiol. 57, 163-174 (1961).</li>
<li>Edwards, C., Ottoson, D., Rydqvist, B., Swerup, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+permeability+of+the+transducer+membrane+of+the+crayfish+stretch+receptor+to+calcium+and+other+divalent+cations%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci%22%5BJournal%5D)">The permeability of the transducer membrane of the crayfish stretch receptor to calcium and other divalent cations.</a> Neurosci. 6, 1455-1460 (1981).</li>
<li>Elekes, K., Florey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+types+of+synaptic+connections+in+crayfish+stretch+receptor+organs%3A+an+electron+microscopic+study%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurocytol%22%5BJournal%5D)">New types of synaptic connections in crayfish stretch receptor organs: an electron microscopic study.</a> J. Neurocytol. 16, 613-626 (1987).</li>
<li>Elekes, K., Florey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunocytochemical+evidence+for+the+GABAergic+innervation+of+the+stretch+receptor+neurons+in+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci%22%5BJournal%5D)">Immunocytochemical evidence for the GABAergic innervation of the stretch receptor neurons in crayfish.</a> Neurosci. 22, 1111-1122 (1987).</li>
<li>Erxleben, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stretch-activated+current+through+single+ion+channels+in+the+abdominal+stretch+receptor+organ+of+the+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Stretch-activated current through single ion channels in the abdominal stretch receptor organ of the crayfish.</a> J. Gen. Physiol. 94, 1071-1083 (1989).</li>
<li>Mill, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crustacean+abdominal+and+thoracic+muscle+receptor+organs%5BTitle%5D)+AND+%22Structure+and+function+of+proprioceptors+in+the+invertebrates%22%5BJournal%5D)">Crustacean abdominal and thoracic muscle receptor organs.</a> Structure and function of proprioceptors in the invertebrates. , Chapman & Hall. New York. 65-114 (1976).</li>
<li>Florey, E., Florey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microanatomy+of+the+abdominal+stretch+receptors+of+the+crayfish+Astacus+fluviatilis+L%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Microanatomy of the abdominal stretch receptors of the crayfish Astacus fluviatilis L.</a> J. Gen. Physiol. 39, 69-85 (1955).</li>
<li>Hartman, H. B., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+and+molting+effects+on+the+proprioceptor+organ+in+the+Dungeness+crab%2C+Cancer+magister%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Regeneration and molting effects on the proprioceptor organ in the Dungeness crab, Cancer magister.</a> J. Neurobiol. 25, 461-471 (1994).</li>
<li>Hunt, C. C., Wilkerson, R. S., Fukami, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ionic+basis+of+the+receptor+potential+in+primary+endings+of+mammalian+muscle+spindles%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Ionic basis of the receptor potential in primary endings of mammalian muscle spindles.</a> J. Gen. Physiol. 71, 683-698 (1978).</li>
<li>Kuffler, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+activation+and+motor+control+of+stretch+receptors+in+lobster+and+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of activation and motor control of stretch receptors in lobster and crayfish.</a> J. Neurophysiol. 17, 558-574 (1954).</li>
<li>Kuffler, S. W., Eyzaguirre, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+inhibition+in+an+isolated+nerve+cell%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Synaptic inhibition in an isolated nerve cell.</a> J. Gen. Physiol. 39, 155-184 (1955).</li>
<li>Macmillan, D. L., Patullo, B. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+for+robotic+design+from+studies+of+the+control+of+abdominal+position+in+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Bull%22%5BJournal%5D)">Insights for robotic design from studies of the control of abdominal position in crayfish.</a> Biol. Bull. 200, 201-205 (2001).</li>
<li>Marino, B. F., Stucchi, N., Nava, E., Haggard, P., Maravita, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distorting+the+visual+size+of+the+hand+affects+hand+pre-shaping+during+grasping%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Distorting the visual size of the hand affects hand pre-shaping during grasping.</a> Exp. Brain Res. , 202-202 (2010).</li>
<li>McCarthy, B. J., MacMillian, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+the+muscle+receptor+organ+in+the+control+of+the+abdominal+extension+in+the+crayfish+Cherax%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Biol%22%5BJournal%5D)">The role of the muscle receptor organ in the control of the abdominal extension in the crayfish Cherax.</a> J. Exp. Biol. 198, 2253-2259 (1995).</li>
<li>Mill, P. J., Lowe, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+fine+structure+of+the+PD+proprioceptor+of+Cancer+pagurus.I.+The+receptor+strand+and+the+movement+sensitive+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+R.+Soc.+Lond.+B%22%5BJournal%5D)">The fine structure of the PD proprioceptor of Cancer pagurus.I. The receptor strand and the movement sensitive cells.</a> Proc. R. Soc. Lond. B. 184, 179-197 (1973).</li>
<li>Nakajima, Y., Onodera, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+properties+of+the+stretch+receptor+neurons+of+crayfish+with+particular+reference+to+mechanisms+of+sensory+adaptation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Membrane properties of the stretch receptor neurons of crayfish with particular reference to mechanisms of sensory adaptation.</a> J. Physiol. 200, 161-185 (1969).</li>
<li>Nakajima, Y., Takahashi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Post-tetanic+hyperpolarization+and+electrogenic+Na+pump+in+stretch+receptor+neurone+of+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Post-tetanic hyperpolarization and electrogenic Na pump in stretch receptor neurone of crayfish.</a> J. Physiol. 187, 105-127 (1966).</li>
<li>Pasztor, V. M., MacMillan, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+actions+of+proctolin%2C+octopamine+and+serotonin+on+the+crustacean+proprioceptors+show+species+and+neurone+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Biol%22%5BJournal%5D)">The actions of proctolin, octopamine and serotonin on the crustacean proprioceptors show species and neurone specificity.</a> J. Exp. Biol. 152, 485-504 (1990).</li>
<li>Patel, M., Fransson, P. A., Karlberg, M., Malmstrom, E. M., Magnusson, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Change+of+body+movement+coordination+during+cervical+proprioceptive+disturbances+with+increased+age%5BTitle%5D)+AND+%22Gerontol%22%5BJournal%5D)">Change of body movement coordination during cervical proprioceptive disturbances with increased age.</a> Gerontol. 56, 284-290 (2010).</li>
<li>Patullo, B., Faulkes, Z., Macmillan, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+receptor+organs+do+not+mediate+load+compensation+during+body+roll+and+defense+response+extensions+in+the+crayfish+Cherax+destructor%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Zool%22%5BJournal%5D)">Muscle receptor organs do not mediate load compensation during body roll and defense response extensions in the crayfish Cherax destructor.</a> J. Exp. Zool. 290, 783-790 (2001).</li>
<li>Purali, N. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Mechanisms+of+adaptation+in+a+mechanoreceptor.+A+study+of+mechanical+and+ionic+factors+in+the+crayfish+stretch+receptors+%5B%5D%22">Mechanisms of adaptation in a mechanoreceptor. A study of mechanical and ionic factors in the crayfish stretch receptors [dissertation]</a>. , Karolinska Institutet. Stockholm, Sweden. (1988).</li>
<li>Purali, N., Rydqvist, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Block+of+potassium+outward+currents+in+the+crayfish+stretch+receptor+neurons+by+4-aminopyridine%2C+tetraethylammonium+chloride+and+some+other+chemical+substances%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+Scand%22%5BJournal%5D)">Block of potassium outward currents in the crayfish stretch receptor neurons by 4-aminopyridine, tetraethylammonium chloride and some other chemical substances.</a> Acta Physiol. Scand. 146, 67-77 (1992).</li>
<li>Rabin, E., Muratori, L., Svokos, K., Gordon, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tactile%2Fproprioceptive+integration+during+arm+localization+is+intact+in+individuals+with+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci.+Lett%22%5BJournal%5D)">Tactile/proprioceptive integration during arm localization is intact in individuals with Parkinson's disease.</a> Neurosci. Lett. 470, 38-42 (2010).</li>
<li>Rydqvist, B., Purali, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potential-dependent+potassium+currents+in+the+rapidly+adapting+stretch+receptor+neuron+of+the+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+Scand%22%5BJournal%5D)">Potential-dependent potassium currents in the rapidly adapting stretch receptor neuron of the crayfish.</a> Acta Physiol. Scand. 142, 67-76 (1991).</li>
<li>Rydqvist, B., Swerup, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulus-response+properties+of+the+slowly+adapting+stretch+receptor+neuron+of+the+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+Scand%22%5BJournal%5D)">Stimulus-response properties of the slowly adapting stretch receptor neuron of the crayfish.</a> Acta Physiol. Scand. 143, 11-19 (1991).</li>
<li>Rossignol, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Locomotion+and+its+recovery+after+spinal+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Locomotion and its recovery after spinal injury.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 10, 708-716 (2000).</li>
<li>Rossignol, S., Giroux, N., Chau, C., Marcoux, J., Brustein, J., Reader, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacological+aids+to+locomotor+training+after+spinal+injury+in+the+cat%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Pharmacological aids to locomotor training after spinal injury in the cat.</a> J. Physiol. 533, 65-74 (2001).</li>
<li>Rossignol, S., Bouyer, L., Barthelemy, D., Langlet, C., Leblond, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recovery+of+locomotion+in+the+cat+following+spinal+cord+lesions%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res.+Rev%22%5BJournal%5D)">Recovery of locomotion in the cat following spinal cord lesions.</a> Brain Res. Rev. 40, 257-266 (2002).</li>
<li>Sohn, J., Mykles, D. L., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+anatomical%2C+physiological+and+biochemical+characterization+of+muscles+associated+with+the+articulating+membrane+in+the+dorsal+surface+of+the+crayfish+abdomen%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Zool%22%5BJournal%5D)">The anatomical, physiological and biochemical characterization of muscles associated with the articulating membrane in the dorsal surface of the crayfish abdomen.</a> J. Exp. Zool. 287, 353-377 (2000).</li>
<li>Svensson, E., Woolley, J., Wikström, M., Grillner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endogenous+dopaminergic+modulation+of+the+lamprey+spinal+locomotor+network%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Endogenous dopaminergic modulation of the lamprey spinal locomotor network.</a> Brain Res. 970, 1-8 (2003).</li>
<li>Swerup, C., Rydqvist, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+abdominal+stretch+receptor+organ+of+the+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Comp.+Biochem.+Physiol.+A%22%5BJournal%5D)">The abdominal stretch receptor organ of the crayfish.</a> Comp. Biochem. Physiol. A. 103, 433-431 (1992).</li>
<li>Vargas, J. G., Yu, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Audio+aided+electro-tactile+perception+training+for+finger+posture+biofeedback%5BTitle%5D)+AND+%22Conf.+Proc.+IEEE+Eng.+Med.+Biol.+Soc%22%5BJournal%5D)">Audio aided electro-tactile perception training for finger posture biofeedback.</a> Conf. Proc. IEEE Eng. Med. Biol. Soc. 2008, 4230-4233 (2008).</li>
<li>Vedel, J. P., Clarac, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+reflex+actions+by+several+proprioceptive+inputs+in+the+rock+lobster+legs%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Combined reflex actions by several proprioceptive inputs in the rock lobster legs.</a> J. Comp. Physiol. 130, 251-258 (1979).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Os detalhes fornecidos no filme e texto associados deram passos fundamentais para suficientemente registrar a atividade no MRO do crustáceo in situ. Um dos objetivos do nosso relatório é aumentar a consciência do potencial de elaboração no aluno executar laboratórios de investigação para ensinar conceitos fundamentais na fisiologia sensorial. Os preparativos são muito robustas da viabilidade ao ser banhado em uma solução salina mínimo. O controle motor dos músculos MRO foi identificado, mas a regulação da transmissão e do potencial de plasticidade sináptica, bem como a eficácia da transmissão para os neurônios excitatórios e inibitórios continua a ser um espaço aberto para a investigação (Elekes e Florey, 1987a, b; Florey e Florey, 1955; Kuffler, 1954; Kuffler e Eyzaguirre, 1955). Esta preparação pode ser usado para investigar uma série de condições experimentais, bem como a área natural de locomoção dentro do animal para melhor compreender a biologia do MRO para pesquisa primária, bem como fins de demonstração. As propriedades biofísicas destes neurônios sensoriais foi em parte abordado em sua natureza de adaptação na atividade neural com um estímulo mantido (Brown et al, 1978; Edwards et al, 1981;. Purali, 1997; Rydqvist e Purali, 1991; Rydqvist e Swerup, 1991). No entanto, apenas um endereço de neuromodulação alguns relatórios sobre esses receptores sensoriais e fibras musculares associados (Cooper et al, 2003;. Pasztor e Macmillan, 1990). Os relatórios de lidar com apenas alguns dos muitos compostos que são conhecidos para estar presente na hemolinfa. Moduladores muitos e cocktails de moduladores ainda precisam ser examinados no complexo MRO (músculos e neurônios). Pasztor e Macmillan (1990) fez examinar os neuromoduladores 5-HT e octopamine sobre a actividade da OPR entre várias espécies de crustáceos e observou que existem diferenças de espécies. Eles não examinar em detalhe as influências de longo prazo desses neuromoduladores nem os efeitos sobre a atividade em diferentes posições estáticas da MRO. Este tipo de preparação pode ajudar na compreensão da base da percepção sensorial e regulação do processamento neural que é importante na reabilitação e gestão da doença para seres humanos com anormalidades unidade motora (Patel et al, 2009;. Rabin et al, 2009;. Marino et al ., 2010). Os vários tipos de entrada e padrões de disparo para monitorar movimentos articulares na acessíveis preparações invertebrados podem ser usados ​​em robótica / prótese (Macmillan e Patullo, 2001). Há ainda muitas perguntas à espera de respostas nesta preparação que pode ser benéfica em um número de maneiras.

<table><tbody><tr><td>PowerLab 26T</td><td><a href="http://www.adinstruments.com/products/hardware/corporate/product/ML856/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> ADInstruments</a></td><td></td><td></td></tr><tr><td>LabChart 7</td><td><a href="http://www.adinstruments.com/products/software/research/LabChart-Software/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> ADI Instruments, Colorado Springs, CO, EUA</a></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

muscular órgãos receptores no abdômen crayfish: um exercício em laboratório student propriocepção

Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception 

O principal objetivo desse experimento é demonstrar primário informações neurônios sensoriais transporte de movimentos articulares e posições como as informações proprioceptivas para um animal. Um objetivo adicional deste experimento é o de aprender a anatomia da preparação por dissecção coloração e visualização de neurônios e estruturas sensoriais sob um microscópio de dissecação. Isto é realizado usando o equipamento neurofisiológico básico para registrar a atividade elétrica de um órgão receptor comum e técnicas de coloração. O músculo receptor de sistema de órgãos (MRO) da lagosta é análogo ao fuso muscular intrafusais em mamíferos, o que ajuda na servindo como modelo comparativo que é mais facilmente acessíveis para as gravações eletrofisiológicas. Além disso, estes são identificáveis ​​neurônios sensoriais entre as preparações. A preparação é viável em uma solução salina mínimo de horas que é favorável para os exercícios de laboratório dos alunos. A MRO é também suscetível a neuromodulação que incentiva questões intrigantes nos locais de ação moduladora e integração de sinais dinâmicos de movimentos e posição estática, juntamente com um ganho que pode ser alterado no sistema.

O objetivo principal desta experiência é entender como os neurônios sensoriais primários transmitir informações de movimentos comuns e de posições como as informações proprioceptivas para um animal. Um objetivo adicional deste relatório é apresentar a anatomia da preparação por dissecção e visualização de neurônios em um microscópio de dissecação.

Muscular órgãos receptores no abdômen Crayfish: Um Exercício em Laboratório Student Propriocepção

O objetivo principal deste experimento é demonstrar que os neurônios sensoriais primários transmitem informações sobre os movimentos e posições das articulações como propriocepção...

O objetivo geral deste procedimento é demonstrar a dissecação e a realização de registros a partir de neurônios sensoriais primários, que transmitem informações sobre movimentos e posições articulares como informação proprioceptiva para um animal. Isso é realizado primeiramente pela dissecação do abdômen do camarão-de-água-doce e exposição da metade dorsal da preparação. O segundo passo do procedimento consiste em registrar a atividade elétrica de um órgão receptor articular posicionando um nervo segmentar dentro de um eletrodo de sucção.O terceiro passo do procedimento consiste em mover a articulação para diferentes posições e correlacionar o movimento com o perfil de atividade. O passo final do procedimento é examinar as estruturas anatômicas associadas ao órgão sensorial. Este procedimento demonstra uma abordagem para registrar a atividade de neurônios proprioceptivos primários e pode ser utilizado para estudar os efeitos da neuromodulação biogênica.Este método pode ajudar os instrutores a ensinar conceitos fundamentais em fisiologia sensorial, como adaptação sensorial e como os neuromoduladores alteram a percepção sensorial. Embora este método possa fornecer informações sobre a propriocepção e os invertebrados, ele também pode ser aplicado a outros organismos modelo, como mamíferos, para melhor compreender os fusos musculares intrafusais. Este procedimento aborda como isolar, estimular e registrar atividade dos órgãos receptores musculares localizados nos músculos abdominais do lagostim.O primeiro passo é dissecar o nervo do camarão-de-água-doce e os músculos abdominais que contêm o órgão receptor muscular. Selecione um camarão-de-água-doce, no qual estamos utilizando Procambarus clarkii, com comprimento corporal entre seis e dez centímetros, e coloque-o sobre gelo por dois a três minutos para anestesiá-lo. A dissecação começará com a decapitação do camarão-de-água-doce, conforme mostrado pelas linhas marcadas como A na figura.O próximo corte em B servirá para separar o tórax do abdômen, e o terceiro corte em C abrirá o abdômen. Uma vez que o camarão-de-água-doce esteja anestesiado, segure-o atrás das garras com uma das mãos. Corte rapidamente da órbita ocular até o meio da cabeça em ambos os lados e, em seguida, decapite o camarão-de-água-doce.O sangue da preparação é pegajoso ao secar, portanto limpe as ferramentas imediatamente. Após remover a cabeça do lagostim, corte entre o tórax e o abdome no lado ventral. Remova os uropódos.Se o camarão for macho, corte o estilete. Agora deve ser fácil separar o abdômen do tórax. Coloque uma lâmina da tesoura dentro do abdômen e, com a ponta da tesoura voltada para longe da preparação, corte ao longo da borda lateral.Repita no lado oposto. Pegue a extremidade traseira da pinça e empurre os músculos e o trato gastrointestinal para longe do lado dorsal da preparação. Certifique-se de não pressionar os músculos para baixo.Corte de lateral a lateral na última costela para remover o lado ventral da cauda. Mergulhe o preparo em solução salina para lagostim e coloque o recipiente em forma de charuto contendo o abdômen do lagostim sob o microscópio de dissecação. O próximo passo é montar o seu aparato de estimulação e registro.A montagem consiste em uma gaiola de Faraday, um microscópio, um iluminador de alta intensidade, um micromanipulador e o banho salino. A gaiola de Faraday é utilizada para bloquear campos elétricos externos que possam interferir na gravação elétrica. Posicione o microscópio de forma que ele sobreveja a platina do microscópio.Mova o iluminador de alta intensidade para uma posição conveniente. Insira o eletrodo de sucção no micromanipulador e posicione o micromanipulador de modo que o eletrodo de sucção tenha fácil acesso à cuba de salina. Aspire salina para dentro do eletrodo de sucção até que a salina entre em contato com o fio de prata.Posicione o outro fio próximo à ponta do eletrodo de sucção, de modo que ambos os fios entrem em contato com o banho salino. Conecte o amplificador diferencial CA CDC ao Power Lab 26T e verifique as configurações no amplificador. Conecte o estágio de cabeça à sonda de entrada do amplificador.Conecte os fios elétricos do eletrodo de sucção ao estágio principal. Os fios devem ser conectados com o vermelho na parte superior esquerda, o verde no meio e o preto na parte inferior. Agora, conecte o cabo USB do Power Lab 2016 ao computador.Certifique-se de que o amplificador e a fonte de alimentação Lab 26 T estejam conectados e ligados antes de abrir o LabChart 7 no computador; inicie o LabChart 7, o software de aquisição de dados do computador. A caixa de boas-vindas do LabChart será exibida. Feche-o. Clique em configuração. Clique em configurações de canal na parte inferior esquerda da caixa.Altere o número de canais para um, clique em OK no canto superior esquerdo do gráfico. Defina os ciclos por segundo em cerca de 2K. Ajuste as divisões no eixo Y para 500 ou 200 milivolts no lado direito do gráfico.Clique no canal um. Clique no amplificador de entrada. Selecione as seguintes configurações: entrada simples com acoplamento CA invertida para inverter o sinal, se necessário, e anti-alias.Para iniciar o registro de dados, clique em iniciar para encerrar o registro de dados. Clique em parar para aterrar eletricamente o banho colocando um fio de terra de cloreto de prata no banho e a outra extremidade em um terra comum. Se o aterramento do banho causar ruído elétrico durante a gravação, remova o aterramento do banho.O próximo passo é expor os músculos e nervos de interesse. Os músculos extensores mediais profundos ou DEM são identificados por suas fibras em forma de hélice torcida, e os músculos extensores laterais profundos ou DEL possuem fibras lineares. Esta figura mostra uma fotografia dos músculos DEM e DEL drenados alinhados com um desenho esquemático dos músculos.Observe o preparo ao microscópio e localize os músculos DEM e DEL. Neste momento, não é possível ver os órgãos receptores musculares propriamente ditos, pois estão localizados sob os músculos visíveis. Fixe dois alfinetes na região médio-sagital na parte distal do abdômen, entre os músculos DEM, nas primeira e segunda costelas.Olhe pelo microscópio para encontrar o nervo que transporta os axônios sensoriais dos órgãos receptores musculares. Procure o segmento com o nervo mais acessível. O nervo é branco e pode ser visto usando uma pipeta para pulverizar salina sobre a preparação ou soprando levemente sobre ela.Isso faz com que o nervo se mova e, assim, facilita sua identificação. Após localizar o nervo, use o micromanipulador para posicionar o eletrodo de sucção diretamente sobre o nervo. Puxe suavemente a seringa para introduzir o nervo no interior do eletrodo.É possível observar o nervo sendo sugado para dentro do eletrodo através do microscópio. Para iniciar o experimento, clique em iniciar no software de registro de dados. Use pinças para mover suavemente a cauda do lagostim para cima e para baixo em um ângulo de 180 graus.Use o marcador de comentário no software para anotar o ângulo de estimulação a ser utilizado durante a análise posterior dos dados. Repita o experimento em um ângulo de 45 graus, registrando a alteração do ângulo com o marcador de comentário do software. Repita o procedimento em um ângulo de 90 graus.Observe a diferença na resposta do nervo sensorial em cada ângulo. Quando terminar a gravação, você poderá visualizar diretamente os órgãos receptores musculares. Esta figura mostra as localizações relativas dos órgãos receptores musculares identificados como SA e RA para adaptação rápida e adaptação lenta, e os músculos D-E-M-D-E-L e SEM.A fotografia à direita foi corada com azul de metileno. Para observar os órgãos receptores musculares na sua preparação, primeiro cora a preparação com azul de metileno. Derrame a solução salina de camarão-da-água-doce fora do recipiente em forma de charuto e substitua-a pela solução de azul de metileno, agitando suavemente o recipiente por alguns minutos.Em seguida, despeje o azul de metileno excedente no recipiente de resíduos e adicione soro fisiológico fresco sobre a preparação. Recoloque o recipiente sob o microscópio para dissecar o músculo sobrejacente. Para expor os órgãos receptores musculares.Corte o segmento ao longo da costela lateral ao plano médio sagital, colocando uma lâmina da tesoura sob o músculo e puxando para cima enquanto corta ao longo do músculo. Após cortar os músculos DEL um e dois, afaste esses músculos para trás e observe uma fina camada muscular chamada músculo extensor medial superficial ou SEM. Os órgãos receptores musculares são as duas últimas fibras mediais dispostas paralelamente ao músculo em hélice.Seja muito cuidadoso com este passo para não danificar os órgãos receptores musculares. Existem dois tipos distintos de receptores de distensão no sistema mecanorreceptor do camarão-da-água-doce. As unidades sensoriais fásicas são inervadas por axônios motores rápidos, e as unidades sensoriais tônicas são inervadas por axônios motores lentos, conforme mostrado nesta figura.Quando um receptor t&ocirc;nico &eacute; estimulado pelo estiramento, ele se adapta lentamente ao est&iacute;mulo e mant&eacute;m um padr&atilde;o cont&iacute;nuo de disparos de potenciais de a&ccedil;&atilde;o. Em contraste, quando um receptor af&aacute;sico &eacute; estimulado pelo estiramento, ele se adapta rapidamente ao est&iacute;mulo e dispara apenas um padr&atilde;o breve de potenciais de a&ccedil;&atilde;o. Este registro mostra a resposta nervosa quando o segmento abdominal que o cont&eacute;m foi flexionado.Primeiro, o segmento foi dobrado em um ângulo de 45 graus e relaxado. A próxima gravação mostra a resposta à flexão e relaxamento de 90 graus. Isso demonstra que o órgão receptor muscular rápido apresenta atividade aumentada diante de um alongamento maior da fibra do ORM.Esta próxima gravação mostra a atividade do órgão receptor muscular provocada pela flexão da cauda e sua manutenção em uma posição de 45 graus. Observe a acomodação da atividade neural demonstrada pela diminuição da frequência de disparos. Uma boa extensão deste experimento seria examinar se neuromoduladores alteraram a frequência de disparos, registrar o processo de acomodação da resposta sensorial medindo a frequência de disparos em diversos momentos enquanto se mantém uma posição estática determinada e inserir os dados em uma tabela como a mostrada aqui seguindo este procedimento.Outros métodos, como examinar os efeitos de neuro-hormônios como topamina, serotonina e prolactina, podem ser testados para responder perguntas adicionais, como os mecanismos celulares de compostos sobre neurônios sensoriais primários. Após o desenvolvimento deste preparo, pesquisadores descreveram o local de iniciação do potencial de ação em neurônios e abriram caminho para que pesquisadores na área de neurofisiologia explorem a transdução mecânica e a propriocepção dos membros, não apenas em invertebrados, mas também em vertebrados. Este é um excelente preparo para o ensino de muitos fundamentos da neurofisiologia.

muscle-receptor-organs-crayfish-abdomen-student-laboratory-exercise

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

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