Isolamento e Enriquecimento de Vesículas Extracelulares Derivadas da Membrana Externa de Bactérias

0 vistas3:53 min • September 26th, 2025

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Comece inoculando uma colônia de bactérias geneticamente modificadas em um meio líquido.

Essas bactérias expressam uma proteína de fusão fluorescente na membrana externa, uma camada protetora externa.

Incubar para que as bactérias liberem vesículas extracelulares (EVs), nanoestruturas ligadas à membrana envolvidas na comunicação intercelular, que incorporam a proteína fluorescente.

Transfira a cultura para uma garrafa e centrifugue em baixa velocidade para pellet as células.

Transfira o sobrenadante contendo EVs, proteínas celulares e detritos celulares. Centrifugue em alta velocidade e remova o sobrenadante contendo detritos.

Filtre o sobrenadante através de uma membrana para eliminar quaisquer bactérias e detritos restantes.

Inocular uma amostra em ágar e incubá-la. A falta de formação de colônias bacterianas confirma a ausência de bactérias.

Transfira a solução para um dispositivo de ultrafiltração com uma membrana semipermeável e centrifugue para capturar os EVs enquanto elimina proteínas menores.

Colete os EVs concentrados em um tubo para análise a jusante.

Comece inoculando colônias únicas de Escherichia coli em 250 a 1000 mililitros de Luria-Bertani, ou caldo LB, usando uma alça estéril. Em seguida, incube a cultura aeróbica em uma incubadora agitada a 300 rotações por minuto e 37 graus Celsius. Após 48 horas de incubação, clareie o meio de cultura bacteriana transferindo as culturas de células para frascos de centrífuga de polipropileno limpos de 500 mililitros para centrifugar em um rotor de ângulo fixo de grande capacidade a quatro graus Celsius e 5.000 vezes G por 15 minutos.

Transfira o sobrenadante para frascos de centrífuga limpos, despejando cuidadosamente na centrífuga a 10.000 vezes G por 15 minutos. Em seguida, transfira o sobrenadante para um dispositivo de filtro acionado por vácuo de polietersulona de 0,2 mícron de tamanho apropriado e conecte o dispositivo de filtragem a uma fonte de parede a vácuo. Se a taxa de filtragem cair significativamente, mova o material não filtrado para um novo dispositivo.

O meio filtrado pode ser armazenado a quatro graus Celsius durante a noite ou pode ser processado imediatamente. Para verificar a remoção completa das células viáveis, espalhar uma alíquota do sobrenadante filtrado em placas de ágar adequadas e assegurar a ausência de colónias após a incubação em condições óptimas para a estirpe bacteriana. Para concentrar o meio filtrado com um volume de 100 mililitros, carregue 90 mililitros de meio de cultura filtrado no reservatório do dispositivo de ultrafiltração centrífuga com um corte de peso molecular de 100 kilodaltons e centrifugue o meio no rotor da caçamba oscilante a quatro graus Celsius e 2.000 vezes G por intervalos de 15 a 30 minutos até que o volume do meio no reservatório superior tenha sido concentrado em menos de 0,5 mililitros.

Para encher o reservatório com qualquer meio de cultura filtrado restante, remova o fluxo na parte inferior do dispositivo para reequilibrar. Se a viscosidade do meio concentrado no reservatório for visivelmente aumentada, dilua o meio com PBS e reconcentre por centrifugação para reduzir qualquer vesícula não extracelular, ou proteínas EV, menor que o limite de peso molecular de 100 kilodaltons. Em seguida, transfira o meio concentrado para um tubo de ligação de baixa proteína para armazenar a quatro graus Celsius durante a noite.

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Última atualização: 1 agosto 2026