Name: Isolamento de Ilhotas Humanos de pacientes parcialmente pancreatectomizado (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 10 s
Description: Aprenda o isolamento de ilhotas pancreáticas humanas de pacientes submetidos à pancreatectomia parcial. Este protocolo utiliza digestão enzimática e gradiente de densidade para obter ilhotas viáveis para estudos funcionais em diabetes.

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Queremos agradecer aos nossos muitos colegas que prestaram ajuda, conselhos e críticas de entrada em várias fases do projeto. Produção deste artigo vídeo foi apoiado com fundos do Ministério Alemão de Educação e Pesquisa (BMBF) para o Centro Alemão de Pesquisa do Diabetes (DZD, <a href="http://www.dzd-ev.de">http://www.dzd-ev.de</a> ), IMIDIA ( <a href="http://www.imidia.org">http://www . imidia.org</a> ) eo Hospital Universitário de Carl Gustav Carus, da Universidade de Tecnologia de Dresden. A pesquisa que levou a estes resultados beneficiaram de financiamento do Programa da Comunidade Europeia Quadro (FP7/2007-2013) para a Iniciativa de Medicamentos Inovadores no âmbito da convenção de subvenção n ° 115005.

1. Coleta de tecido pancreático na sala de cirurgia <ol><li> O cirurgião realiza uma ressecção parcial do pâncreas. </li><li> Depois de colocar a amostra de pâncreas em uma caixa de gelo, entregá-lo imediatamente para o patologista. </li></ol> 2. Seleção de tecidos para isolamento de ilhotas <ol><li> O patologista seleciona tecido que parece macia e saudável, mantendo o tecido danificado para fins de diagnóstico. Tecido fibrótico e espécimes oferecendo menos de 2 g de tecido utilizável são excluídos do isolamento de ilhotas. </li><li> Mergulhe o tecido pancreático em solução Euro Collins e entregar no gelo para o laboratório. </li></ol> 3. Isolamento de ilhotas humanas <ol><li> Pese o tecido pancreático, em seguida, coloque-o em um prato de 10 cm. </li><li> Coloque 150 ml RPMI mídia em um balão de 500 ml. </li><li> Em um frasco de 250 ml, preparar a solução de enzimas digestivas, combinando RPMI 130 ml de mídia com 100 mg / ml DNase e 20 ml de 5mg/ml RI Liberase. Draw 10 ml desta solução para uma seringa para injetar o tecido pancreático. </li><li> Injetar a solução de enzimas digestivas no tecido pancreático, com o objetivo de distender-lo de forma homogênea. Se este for impedido pela fibrose, a digestão, provavelmente, falhar. Em seguida, mediu o tecido em ~ 4 mm 3 peças no gelo. </li></ol> 4. Circuito digestão humana pâncreas <ol><li> Monte o circuito da digestão, como mostrado na Figura 1. O sentido do fluxo na câmara Ricordi é no fundo e sair no topo da câmara. </li><li> Adicionar a solução de enzima digestiva restantes para o balão de 500 ml até um volume total de 300 ml e coloque um termômetro. </li><li> Transferir o tecido pancreático para a câmara, insira o mesh (diâmetro dos poros: 600 mm) e três Marbles nitreto de silício (diâmetro: 15 mm), perto da câmara e começar a bomba com o fluxo fixado em 140 ml / min. </li><li> Quando a temperatura do circuito atinge 37 ° C, iniciar a cronometragem e, periodicamente, colher amostras para determinar quando parar a digestão. Coloração com ditizona (2 mg / ml) permite a visualização microscópica de ilhotas no tecido digerido 4. </li><li> Uma vez que os ilhéus são separados a partir do tecido acinar circundante, rapidamente parar a digestão, colocando a bobina de aquecimento no gelo e adicionando 200 ml de mídia lavagem a frio (900 ml RPMI 1640 com 5,5 mM de glicose e FBS 10%) para o circuito. </li><li> Recolher a solução de ilhotas em 250 ml tubos cônicos, uma vez que sai do tubo de amostra. Continue até que o circuito está vazio. </li></ol><img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/2962/2962fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. O circuito de digestão humana pâncreas O circuito digestão humana pâncreas inclui uma câmara de Ricordi contendo mesh (diâmetro dos poros: 600 mm) e três bolas de gude nitreto de silício (diâmetro: 15 mm). Saída da câmara é movida para o balão de coleta de tecido pela bomba peristáltica (140 ml / min). Setas indicam a direção do fluxo. Uma temperatura ideal para a digestão enzimática é mantida por imersão da bobina de aquecimento em banho-maria a 37 ° C. 5. Lavagem pós-digestão <ol><li> Centrifugar a 250 ml tubos cônicos contendo a solução de ilhotas a 1000 rpm, 4 ° C por 5 min. </li><li> Desprezar o sobrenadante, ressuspender o sedimento ilhota na lavagem de mídia (900 ml RPMI 1640 com 5,5 mM de glicose e FBS 10%) e distribuí-lo em frações iguais a 50 tubos de ml. (Opcional:. Distribuir em tubos cônicos adicionais para melhorar a lavagem) Centrifugar a 1000 rpm, 4 ° C por 5 min. </li><li> Elimine o sobrenadante e gentilmente afrouxar pellets por agitação manual. </li></ol> 6. Purificação em um gradiente de Ficoll <ol><li> Ressuspender o sedimento com Ficoll media a uma densidade de 1,125 g / ml, pH 7,4 e lentamente overlay alíquotas de 10 ml de Ficoll media com densidades de 1,080, 1,060 e 1,037 g / ml. </li><li> Centrifugar os gradientes de Ficoll a 2400 rpm, 4 ° C por 20 min. </li></ol> 7. Islet Recolha e Cultura <ol><li> Após a centrifugação, componentes do tecido diferentes podem ser distinguidos pela sua partição no gradiente. </li><li> Descartar a camada superior composta de gordura e tecido conjuntivo. </li><li> Cuidadosamente a colheita da primeira camada de agregados ilhota na interfase 1,037-1,060 g / ml. Esta camada contém as ilhotas mais puro isolado. Coletar fracções para isolamento eficiente. </li><li> Recolher a fracção de segundo, menos pura de agregados ilhota na interfase 1,060-1,080 g / ml. </li><li> Diluir o gradiente de Ficoll, adicionando media de lavagem (900 ml RPMI 1640 com 5,5 mM de glicose e FBS 10%) a cada tubo cônico até um volume total de 50 ml. Centrifugar a 1000 rpm, 4 ° C por 5 min. </li><li> Desprezar o sobrenadante por sucção. Tenha cuidado como o pellet pode estar solto devido ao gradiente de Ficoll. </li><li> Lave o wi pelletsª lavagem de mídia (900ml RPMI 1640 com 5,5 mM de glicose e FBS 10%) e centrifugar a 1000 rpm, 4 ° C por 5 min. Repita usando meios de cultura ilhéu </li><li> Volte a suspender as ilhotas em meios de cultura e colocá-los na incubadora com 5% de CO 2 a 37 ° C por 24-48 horas antes do processamento. </li></ol>

<ol><li>Kahn, S. E., Zraika, S., Utzschneider, K. M., Hull, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+beta+cell+lesion+in+type+2+diabetes%3A+there+has+to+be+a+primary+functional+abnormality%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetologia%22%5BJournal%5D)">The beta cell lesion in type 2 diabetes: there has to be a primary functional abnormality.</a> Diabetologia. 52, 1003-1012 (2009).</li>
<li>Deng, S., Vatamaniuk, M., Huang, X., Doliba, N., Lian, M. M., Frank, A., Velidedeoglu, E., Desai, N. M., Koeberlein, B., Wolf, B., Barker, C. F., Naji, A., Matschinsky, F. M., Markmann, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+functional+abnormalities+in+the+islets+isolated+from+type+2+diabetic+subjects%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Structural and functional abnormalities in the islets isolated from type 2 diabetic subjects.</a> Diabetes. 53, 624-632 (2004).</li>
<li>Ricordi, C., Lacy, P. E., Finke, E. H., Olack, B. J., Scharp, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+method+for+isolation+of+human+pancreatic+islets%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Automated method for isolation of human pancreatic islets.</a> Diabetes. 37, 413-420 (1988).</li>
<li>Latif, Z. A., Noel, J., Alejandro, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+of+staining+fresh+and+cultured+islets%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">A simple method of staining fresh and cultured islets.</a> Transplantation. 45, 827-830 (1988).</li>
<li>Ehehalt, F., Knoch, K., Erdmann, K., Krautz, C., Jäger, M., Steffen, A., Wegbrod, C., Meisterfeld, R., Kersting, S., Bergert, H., Kuhlisch, E., Bornstein, S., Bonifacio, E., Saeger, H. D., Solimena, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+insulin+turnover+in+islets+from+type+2+diabetic+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Islets%22%5BJournal%5D)">Impaired insulin turnover in islets from type 2 diabetic patients.</a> Islets. 2, 30-36 (2010).</li>
<li>Hardt, P. D., Brendel, M. D., Kloer, H. U., Bretzel, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Is+pancreatic+diabetes+%28type+3c+diabetes%29+underdiagnosed+and+misdiagnosed%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Care%22%5BJournal%5D)">Is pancreatic diabetes (type 3c diabetes) underdiagnosed and misdiagnosed?</a> Diabetes Care. 31, Suppl 2. S165-S169 (2008).</li>
<li>Meisterfeld, R., Ehehalt, F., Saeger, H. D., Solimena, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreatic+disorders+and+diabetes+mellitus%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Endocrinol+Diabetes%22%5BJournal%5D)">Pancreatic disorders and diabetes mellitus.</a> Exp Clin Endocrinol Diabetes. 116, Suppl 1. S7-S12 (2008).</li>
<li>Verge, C. F., Gianani, R., Kawasaki, E., Yu, L., Pietropaolo, M., Jackson, R. A., Chase, H. P., Eisenbarth, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prediction+of+type+I+diabetes+in+first-degree+relatives+using+a+combination+of+insulin%2C+GAD%2C+and+ICA512bdc%2FIA-2+autoantibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Prediction of type I diabetes in first-degree relatives using a combination of insulin, GAD, and ICA512bdc/IA-2 autoantibodies.</a> Diabetes. 45, 926-933 (1996).</li>
<li>Alberti, K. G., Zimmet, P. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Definition%2C+diagnosis+and+classification+of+diabetes+mellitus+and+its+complications.+Part+1%3A+diagnosis+and+classification+of+diabetes+mellitus+provisional+report+of+a+WHO+consultation%5BTitle%5D)+AND+%22Diabet+Med%22%5BJournal%5D)">Definition, diagnosis and classification of diabetes mellitus and its complications. Part 1: diagnosis and classification of diabetes mellitus provisional report of a WHO consultation.</a> Diabet Med. 15, 539-553 (1998).</li>
<li>Marselli, L., Thorne, J., Ahn, Y. B., Omer, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+Expression+of+Purified+%7Bbeta%7D-Cell+Tissue+Obtained+from+Human+Pancreas+with+Laser+Capture+Microdissection%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clin.+Endocrinol.+Metab%22%5BJournal%5D)">Gene Expression of Purified {beta}-Cell Tissue Obtained from Human Pancreas with Laser Capture Microdissection.</a> Journal of Clin. Endocrinol. Metab. 93, 1046-1053 (2008).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Usando nosso protocolo, as ilhotas humanas podem ser isoladas de tecido pancreático coletados a partir de uma pancreatectomia parcial. O sucesso deste protocolo baseia-se no cuidado durante alguns pontos críticos. Para preservar a viabilidade das células beta, é essencial que a amostra seja transportada rapidamente sobre o gelo para o laboratório. Além disso, a duração da digestão do tecido deve ser otimizado empiricamente de acordo com o grau de fibrose tecidual ea atividade enzimática da mídia. Isso também é verdadeiro para o grau de força mecânica aplicada manualmente à câmara Ricordi. Assim, para obter um rendimento bom ilhéu, o protocolo é melhor executada por um cientista dedicado ou assistente técnico. Fracasso inicial é a norma, a menos que a equipe já está experiente em isolamento de ilhotas. Existem diferenças fundamentais entre o nosso protocolo de isolamento de ilhotas eo método padrão de isolamento de ilhotas humanas: 1) Apesar de usarmos tecido pancreático submetido a várias horas de isquemia durante o procedimento cirúrgico, ele é imediatamente transformado em site. Isto está em contraste com pancreata explantado de doadores em morte encefálica para o pâncreas / transplante de ilhotas, que permanecem isquêmica por várias horas durante a alocação e entrega à instalação de isolamento de ilhotas. 2) Nós colagenase injetar diretamente no tecido pancreático, enquanto que o protocolo padrão é infundir-lo para o ducto pancreático. 3) Nós separar as ilhotas utilizando um gradiente de Ficoll descontínua em vez de recolher as ilhotas de um gradiente de Ficoll contínua usando um processador de células COBE. Nos casos em que a peça cirúrgica é muito fibrótica ou escassos para isolar um número adequado de ilhotas, o tecido ainda podem ser recuperados por laser microdissecção de captura (LCM) 10. Isso permite que dados de expressão gênica a ser recuperado a partir de praticamente todas as amostras, mesmo que o isolamento das ilhotas falhar ou o rendimento é muito baixo. Infelizmente, LCM não produz células vivas para estudos funcionais e sua quantidade é normalmente insuficiente para análise proteômica. Assim, usando LCM em paralelo com nosso protocolo de digestão da colagenase para recuperar as ilhotas podem ser a maneira mais eficaz de processo de peças cirúrgicas. Ao coletar tecidos para isolamento de ilhotas de pancreatectomies parcial, é importante examinar cuidadosamente a história clínica do paciente e estado metabólico. Um paciente parcialmente pancreatectomizado poderiam ser afetados por diabetes tipo 3c, ou seja, diabetes secundário ao distúrbio do pâncreas levando a cirurgia 6. Entre os 43 pacientes participantes que se submeteram a esta cirurgia em nosso serviço em 2010, 32 eram não-diabéticas, 5 foram afetadas pelo diabetes tipo 2 e 6 apresentavam diabetes tipo 3c. Estes dados concordam com estudos anteriores que apontam para o metabolismo da glicose prejudicada e diabetes em uma fração considerável de pacientes que sofrem de câncer de pâncreas ou pancreatite crônica 6. Consideramos diabetes ser de origem primária se foi diagnosticado pelo menos um ano antes do início dos sintomas principais da cirurgia pancreática 7. Os níveis de anticorpos contra ilhotas auto-antígenos também devem ser medidos para avaliar uma origem auto-imune potencial do diabetes 8. Porque um paciente submetido a pancreatectomia poderia sofrer de diabetes não diagnosticada ou ser intolerantes à glicose, todos os pacientes não-diabéticos deve ser dado um teste de tolerância oral à glicose antes da pancreatectomia 9.

<table border="1"><tbody><tr><th> Nome </th><th> Companhia </th><th> Número de catálogo </th></tr><tr><th> Equipamento </th><th></th><th></th></tr><tr><td> 1 ml sorológicos pipeta (CELLSTAR) </td><td> Greiner Bio-One </td><td> 604181 </td></tr><tr><td> 10 ml sorológicos pipeta (CELLSTAR) </td><td> Greiner Bio-One </td><td> 607180 </td></tr><tr><td> 25 ml sorológicos pipeta (CELLSTAR) </td><td> Greiner Bio-One </td><td> 760180 </td></tr><tr><td> Seringa de 10 ml </td><td> BD (Becton, Dickinson and Company) </td><td> 300912 </td></tr><tr><td> Seringa 50 ml </td><td> BD (Becton, Dickinson and Company) </td><td> 300865 </td></tr><tr><td> Seringa 5 ml </td><td> BD (Becton, Dickinson and Company) </td><td> 309050 </td></tr><tr><td> 18 Agulha 1,1 G / 2 Microlance 3 </td><td> BD (Becton, Dickinson and Company) </td><td> 304622 </td></tr><tr><td> 27 GX1 / 2 Agulha </td><td> Braun </td><td> 4658300 </td></tr><tr><td> 27 GX3 / 4 Microlance Agulha 3 </td><td> BD (Becton, Dickinson and Company) </td><td> 302200 </td></tr><tr><td> 3 centímetros de cultura de células de grade prato milímetros 2x2 </td><td> Nunc </td><td> 174926 </td></tr><tr><td> 20 centímetros prato de cultura de tecidos </td><td> BD (Becton, Dickinson and Company) </td><td> 353003 </td></tr><tr><td> 6 centímetros Fácil aderência placa de Petri </td><td> BD (Becton, Dickinson and Company) </td><td> 351016 </td></tr><tr><td> 150 ml garrafa de armazenamento </td><td> Corning Incorporated </td><td> 431175 </td></tr><tr><td> 250 ml Erlenmeyers </td><td> Schott Duran </td><td> 21 217 36 </td></tr><tr><td> 500 ml Erlenmeyers </td><td> Schott Duran </td><td> 21 217 44 </td></tr><tr><td> 250 ml Screw Cap tubo de centrífuga cônico inferior </td><td> Corning Incorporated </td><td> 430776 </td></tr><tr><td> Falcon 50 ml tubo cônico </td><td> BD (Becton, Dickinson and Company) </td><td> 352070 </td></tr><tr><td> 260 ml Easyflask não-tratados </td><td> Nunc </td><td> 156800 </td></tr><tr><td> Millex GV Filtro Unidade Duropore (0,22 mm) </td><td> Millipore </td><td> SLGV033RB </td></tr><tr><td> Vacuum Bottle Top Filter (PES 70 milímetros de diâmetro Membran, 0,22 mM tamanho dos poros, tamanho 45 pescoço mm, volume de 500 mL) </td><td> Corning Incorporated </td><td> 431118 </td></tr><tr><td> Densitômetro (Densito 30px) LWE37463 </td><td> Mettler Toledo </td><td> 51324450 </td></tr><tr><td> Unidade PES rápido Filtro 0,2 mM </td><td> Nalgene </td><td> 569-0020 </td></tr><tr><td> Bobina de aquecimento </td><td> BioRep Technologies Inc </td><td> HC-02 </td></tr><tr><td> Multifuge 4 KS-R </td><td> Heraeus </td><td> 75015680 </td></tr><tr><td> Bomba Typ PD5206 </td><td> Heidolph </td><td> 523-52060-00-2 </td></tr><tr><td> Ricordi câmara (malha de metal com 600 mM de diâmetro dos poros) </td><td> BioRep Technologies Inc. </td><td> Modelo 50-U-01, 0503-001 Serial </td></tr><tr><td> Fique preparação </td><td> BioRep Technologies Inc. </td><td> 50-PS-01 </td></tr><tr><td> O-Rings </td><td> BioRep Technologies Inc. </td><td> OR-50-U-01 </td></tr><tr><td> Mármores de nitreto de silício (15 set mm de 9) </td><td> BioRep Technologies Inc. </td><td> SN-01 </td></tr><tr><td> Tubulação de silicone </td><td> Tygon </td><td> R 3603 8,0 X4, 0 mm </td></tr><tr><td> Pinça cirúrgica </td><td> Braun </td><td> BD168R </td></tr><tr><td> Tesoura cirúrgica (Aesculap) </td><td> Braun </td><td> BC273R </td></tr><tr><td> Banho de água OLS 200 </td><td> Conceder </td><td> OLS 200 </td></tr><tr><th> Reagentes </th><th></th><th></th></tr><tr><td> Colagenase - RI Liberase&gt; (100 mg) </td><td> Roche </td><td> 11815032001 </td></tr><tr><td> D (+)-Glicose </td><td> Merck </td><td> 1.08337.1000 </td></tr><tr><td> Dimetilsulfóxido (DMSO) </td><td> Merck </td><td> 1.16743.1000 </td></tr><tr><td> Diphenylthiocarbazone (DTZ) </td><td> Sigma Aldrich </td><td> D5130 </td></tr><tr><td> DNase I (100 mg) </td><td> Roche </td><td> 10104159001 </td></tr><tr><td> Dulbeccos 1xPBS </td><td> PAA Laboratories </td><td> H15-002 </td></tr><tr><td> Electrolytsolution E154 </td><td> Serumwerk </td><td> 00509 </td></tr><tr><td> De soro fetal bovino (FBS) </td><td> PAA Laboratories </td><td> A15-101 </td></tr><tr><td> Ficoll 400 </td><td> Sigma Aldrich </td><td> F9378 </td></tr><tr><td> Fetal bovino Serum (FBS) </td><td> Gibco </td><td> 10270-106 </td></tr><tr><td> 2 - (4 - (2-hidroxietil) - 1-piperazinil)-ethansulfons ‰ ure (HEPES) </td><td> Roth </td><td> 9105,3 </td></tr><tr><td> NaOH, 5 M </td><td> farmácia clínica, hospital </td><td> - </td></tr><tr><td> Penicilina estreptomicina / (100x) </td><td> PAA Laboratories </td><td> P11-010 </td></tr><tr><td> Pipettaid (EXPRESS) </td><td> BD (Becton, Dickinson and Company) </td><td> 357591 </td></tr><tr><td> Potassiumchlorid </td><td> Fluka </td><td> 60132 </td></tr><tr><td> Potassiumdihydrogenphospate anidro </td><td> JT Baker </td><td> 0241 </td></tr><tr><td> Potassiummonohydrogenphosphate </td><td> JT Baker </td><td> 3246-01 </td></tr><tr><td> Meio RPMI 1640 [-] D-Glicose [+] L-Glutamina </td><td> Gibco </td><td> 11879-020 </td></tr><tr><td> Meio RPMI 1640 [+] L-Glutamina </td><td> PAA Laboratories </td><td> E15-840 </td></tr><tr><td> Sodiumhydrogencarbonat </td><td> Merck </td><td> 1.06329.0500 </td></tr></tbody></table> Mídia e Soluções Solução ditizona <ul><li> Dissolver 100 mg DTZ em 10 ml DMSO e diluir em 40 ml de PBS </li><li> Filtro estéril a solução (0,22 mm) </li></ul> Solução da enzima <ul><li> Dissolver 100 mg Liberase RI em 20 ml de mídia RPMI 1640 (sem suplementos) </li><li> Dissolver 100 mg em 1 ml DNase RPMI 1640 mídia (sem suplementos) </li><li> Filtro estéril a solução (0,22 mm) e manter a enzima no gelo </li></ul> Lavar media (1000ml/5.5mM Glicose) <ul><li> Dissolver 100 ml FBS (inactivado pelo calor) </li><li> Adicione 450 ml RPMI 1640 (sem glicose) </li><li> Adicione 450 ml RPMI 1640 (11 mM de glicose) </li><li> Filtro estéril a solução (0,22 mm) </li></ul> Islet cultura da mídia (500ml / 5,5 mM de glicose) <ul><li> Dissolver 10 ml 1M HEPES (pH 7,4) </li><li> Adicionar 50 ml FBS </li><li> Adicionar 5 ml de penicilina / estreptomicina (100x) </li><li> Adicionar 2,75 ml uma solução de glicose M </li><li> Adicionar 432,25 ml RPMI 1640 (sem glicose) </li><li> Filtro estéril a solução (0,22 mm) </li></ul> Solução Euro Collins <ul><li> 4.083 g de potássio hydrogenphosphate </li><li> 70,0 g de glicose </li><li> 2.237 g de cloreto de potássio </li><li> 14,80 g de potássio monohydrogenphosphate </li><li> 1.680 g de hidrogenocarbonato de sódio </li><li> 40 ml solução eletrolítica (E 154) </li><li> pH 7,4 </li><li> Adicionar água destilada até 2000 ml </li><li> Filtro estéril a solução (0,22 mm) </li></ul> Ficoll Solução stock <ul><li> Adicionar 1000 ml de solução Euro Collins a 500 g Ficoll </li><li> Adicionar 8,94 g HEPES </li><li> Mexa durante a noite até Ficoll é resolvido </li><li> pH 7,4 </li><li> Medir a densidade </li></ul> Ficoll Gradients <ul><li> Calcular a quantidade de FBS, Euro Collins e solução Ficoll Solução stock de acordo com a densidade </li><li> Combinar as três soluções e medir a densidade com um densitômetro </li><li> Adicionar Euro Collins Solução ou Ficoll Solução stock até que a densidade é ajustada </li><li> Estéril solução do filtro (0,22 mm) e armazenar a 4 ° C </li></ul>

isolamento de ilhotas humanos de pacientes parcialmente pancreatectomizado

Isolation of Human Islets from Partially Pancreatectomized Patients

Investigações sobre a patogênese da diabetes tipo 2 e ilhotas de Langerhans um mau funcionamento tem sido prejudicada pela disponibilidade limitada de ilhotas diabéticos tipo 2 de 2 doadores de órgãos. Aqui nós compartilhamos nosso protocolo para isolar ilhotas pancreáticas humanas a partir de tecido obtido a partir de diabéticos tipo 2 e não diabéticos que foram submetidos a pancreatectomia parcial devido a doenças pancreáticas diferentes (tumores pancreáticos benignos ou malignos, pancreatite crônica, e ducto biliar comum ou tumores duodenal) . Todos os pacientes envolvidos deram o seu consentimento a este estudo, que também havia sido aprovado pelo Comitê de Ética local. Os espécimes cirúrgicos foram imediatamente entregues ao patologista que selecionou tecido pancreático macia e saudável aparecendo para o isolamento de ilhotas, mantendo o tecido danificado para fins de diagnóstico. Descobrimos que para isolar mais de 1.000 ilhotas, tivemos que começar com pelo menos 2 g de tecido pancreático. Também essencial para o nosso protocolo foi visivelmente a distender o tecido ao injetar a mídia contendo enzima e, posteriormente, mediu-lo para ajudar a digestão, aumentando a área de superfície. Alargar a aplicabilidade do nosso protocolo para incluir o caso ocasional em que uma grande quantidade (&gt; 15g) de tecido pancreático humano está disponível, foi utilizado uma câmara de Ricordi (50 ml) para digerir o tecido. Durante a digestão, que balançou a câmara manualmente Ricordi 3 em uma intensidade que variou de amostra de acordo com seu nível de fibrose tecidual. A descontínua gradiente Ficoll foi então usada para separar as ilhotas do tecido acinar. Notamos que o tecido pellet deve ser pequeno o suficiente para ser homogeneamente ressuspenso em meio Ficoll com uma densidade de 1,125 g / ml. Após o isolamento, as ilhotas cultivadas que sob condições de estresse livre (sem agitação ou rotação) com 5% de CO 2 a 37 ° C durante pelo menos 48 h, a fim de facilitar a sua recuperação funcional. Aplicação generalizada do nosso protocolo e seu aperfeiçoamento futuro poderia permitir a colheita oportuna de grandes quantidades de ilhotas humanas de diabéticos e clinicamente combinado não-diabéticos, com grande avanço da diabetes tipo de pesquisa 2.

Nosso protocolo renderam uma média de ~ 500 ilhotas por grama de tecido pancreático, embora este muito variadas entre as preparações em grande parte devido a diferenças na fibrose e atividade da colagenase. Conseguimos&gt; pureza das ilhotas de 90% através da coloração pela primeira vez com Ditizona durante o processamento de tecidos, então handpicking-los 24 horas depois do isolamento. Para determinar a qualidade das ilhotas purificadas, testamos para 25 mM de glicose estimulada a secreção de insulina em condições estáticas, por 2 horas. Encontramos a secreção de insulina comparável à de ilhotas obtidas de ECIT isolamento de ilhotas e centros de transplantação. Como ilhotas isoladas de pancreata parcialmente pancreatectomizado não são destinadas para transplante de ilhotas, a avaliação da IEQ total foi de que não foi considerada um fator crítico. Importante, o nosso método nos permitiu isolar ilhotas para estudos funcionais de 25 pacientes parcial pancreatectomizado entre 2005 e 2008 5. Estas ilhas foram analisadas para glicose estimulada a secreção de insulina e expressão de proteínas específicas borrando ocidental e imuno-histoquímica. Ilhotas isoladas de pancreata parcialmente pancreatecomized também poderia ser usado para comparar genes e de perfis de proteínas de expressão, aparência ultra-estruturais e respostas funcionais de ilhotas não-diabéticos e diabéticos. Porque há mais pacientes submetidos à pancreatectomia parcial do que há doadores de órgãos, o nosso protocolo poderia permitir que amostras suficientes e dados a serem coletados para análise estatística robusta.

O fornecimento de diabéticos tipo 2 ilhotas para pesquisa é insuficiente. Aqui nós compartilhamos nosso protocolo para isolar ilhotas de pacientes submetidos à pancreatectomia parcial. Esta abordagem representa um local único para a obtenção de ilhotas de diabéticos tipo 2 e clinicamente combinado não-diabéticos em número adequado para estudos básicos e clínicos.

Isolamento de Ilhotas Humanos de pacientes parcialmente pancreatectomizado

Investigações sobre a patogênese do diabetes tipo 2 e a disfunção das ilhotas de Langerhans 1 têm sido dificultadas pela disponibilidade limitada de tipo 2...

Olá, sou Florian Al do Departamento de Cirurgia da Universidade Técnica em Triton. Olá, sou Gregor Cher, também do Departamento de Cirurgia do Hospital Universitário em Grayston.É urgentemente necessária pesquisa sobre a biologia e a função das pálpebras para avançar nosso entendimento da fisiologia palpebral e da patogênese do diabetes. Infelizmente, pálpebras humanas de pacientes não diabéticos e com diabetes tipo 2 são muito difíceis de obter. A seguinte sequência de vídeo mostrará um protocolo para isolar pálpebras humanas de pacientes com otimização pancreática parcial.Os ilhotas assim obtidos podem funcionar como um sistema in vitro para análise funcional. A ressecção cirúrgica do tecido pancreático humano é a condição prévia para o isolamento dos ilhotas humanos. Contamos com pacientes submetidos a uma ressecção parcial do pâncreas por patologias pancreáticas específicas.Como fonte de tecido pancreático humano, o cirurgião faz um corte no pâncreas e realiza a ressecção parcial. Em seguida, o fragmento pancreático é colocado sobre gelo e encaminhado ao Departamento de Patologia. O patologista determina a quantidade de tecido pancreático saudável e macio a ser obtido.Para o isolamento das ilhotas, são necessários pelo menos dois gramas de tecido pancreático para o isolamento. O tecido é colocado em solução UCON e transportado sobre gelo para o laboratório. O primeiro passo na instalação de isolamento das ilhotas é medir o peso do tecido pancreático.A amostra é então colocada em uma placa de 10 centímetros. Já preparamos um frasco de 500 mililitros com 150 mililitros de meio RPMI e um frasco de 250 mililitros com 130 mililitros de meio RPMI. Em seguida, adicionamos a solução enzimática de digestão contendo um mililitro de DNAs e 20 mililitros de colagenase ao frasco de 250 mililitros e aspiramos a mistura para dentro de uma seringa de 10 mililitros.O tecido pancreático limpo é então distendido pela injeção de meio contendo enzima e picado em pequenos pedaços para aumentar a área superficial e facilitar o processo de digestão. Este passo de pique é crucial porque a distensão apenas pela injeção não permite uma distribuição adequada da enzima dentro do tecido. Paralelamente, montamos o circuito de digestão.Como mostrado nesta figura, a direção do fluxo na câmara gravada é para dentro na parte inferior e para fora na parte superior da câmara. Em seguida, adicionamos o meio contendo enzima remanescente ao frasco de 500 mililitros até um volume de 300 mililitros e, então, inserimos o termômetro. A câmara gravada contém uma malha metálica com um diâmetro de poro de 600 micrômetros e esferas de nitreto de silício livres com diâmetro de 15 milímetros cada.Transferimos o tecido pancreático para a câmara, inserimos a malha, fechamos a câmara e iniciamos a bomba com uma velocidade de 140 mililitros por minuto. Assim que a temperatura do circuito atingir 37 graus Celsius, começamos a medir o tempo de digestão. A câmara registrada é agitada manualmente de acordo com a composição do tecido.Para determinar o ponto temporal ideal para interromper a digestão, coletamos amostras periódicas, coramos com tiossina e observamos os anéis separados em vermelho ao microscópio. Assim que os anéis parecerem estar separados do tecido adjacente, interrompemos rapidamente a digestão colocando a bobina de aquecimento em gelo e adicionando 200 mililitros de meio de lavagem frio ao circuito. Posteriormente, coletamos a solução das pálpebras inserindo o tubo de amostra em tubos cónicos de 250 mililitros até que o circuito esteja vazio.O seguinte procedimento de lavagem inicia com a etapa de centrifugação a 1000 RPM a quatro graus Celsius por cinco minutos. Na próxima etapa, descartamos o sobrenadante, ressuspendemos a solução do colírio no meio de lavagem e distribuímos em frações iguais para tubos cónicos de 50 mililitros. A lavagem prossegue com outra etapa de centrifugação a 1000 RPM a quatro graus Celsius por cinco minutos.Como etapa opcional, distribuímos a paleta em falcões adicionais além dos quatro originais, dependendo do tamanho da paleta. Para melhorar a lavagem, novamente descartamos o sobrenadante e soltamos suavemente a paleta para a separação das pálpebras do tecido aine. As diferentes densidades teciduais das duas partes permitem a aplicação de um gradiente fecal.Primeiro, ressuspendemos o pellet em meio fecal com densidade 1,125 gramas por mililitro. O pellet deve ser pequeno o suficiente para permitir uma ressuspensão homogênea. Em seguida, sobrepuimos lentamente este com os meios fecais de densidades 1,08, 1,060 e 1,037, com um volume de 10 mililitros cada.Em seguida, centrifugamos os gradientes a 2.400 RPM durante 20 minutos a quatro graus Celsius. Agora é possível distinguir os diferentes componentes separados por suas densidades nas frações. Primeiro, descartamos a camada superior, composta por gordura e tecido conjuntivo.A fração que coletamos agora é a primeira camada do agregado da pálpebra em 1,037 e 1,06, que contém principalmente os olhinhos isolados. Para um isolamento eficiente, é importante coletar as frações separadamente. Em seguida, coletamos a fração do segundo agregado da pálpebra na interface de 1,060 e 1,080, que contém olhinhos menos puros do que a primeira camada.Em seguida, adicionamos o meio de lavagem até um volume total de 50 mililitros para diluir o gradiente fecal e enviamos ao FUT a 1000 RPM por cinco minutos. A quatro graus Celsius, descartamos o sobrenadante por sucção, pois o pellet pode estar muito solto devido à temperatura fria. Assim, temos que repetir a etapa de lavagem com meio de cultura para células a 1000 RPM por cinco minutos a quatro graus Celsius.No último passo, ressuspendemos os fragmentos oculares humanos e a cultura dos fragmentos, meios e culturas. Os fragmentos oculares coletados são incubados a 37 graus Celsius por 24 a 48 horas. Após esta etapa de cultura, as pálpebras estão prontas para processamento adicional.Este protocolo deve permitir que você isole pálpebras humanas a partir de tecido pancreático após pancreatectomia parcial. O transporte rápido e sob refrigeração do tecido pancreático até a instalação de isolamento das pálpebras é importante para preservar a melhor viabilidade celular. A equipe de isolamento deve ter em mente que o processo de digestão é um procedimento altamente dinâmico.A duração do processo de digestão depende fortemente da composição do tecido. Por exemplo, do grau de fibrose e da capacidade de injeção adequada de enzima no tecido pancreático. O ajuste individual da força mecânica dentro da câmara registrada e o tempo do processo de digestão são cruciais para um bom rendimento de ilhota.

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Alcançar alta qualidade e quantidade adequada de ilhotas humanas é um dos pré-requisitos importantes para o transplante de ilhotas bem sucedido. Neste vídeo, descrevemos passo a passo os procedimentos para o isolamento de ilhotas pancreáticas humanas (parte I: a digestão e coleta de tecido pancreático), utilizando um método modificado automatizado.

Isolamento Islet humana Pancreatic: Parte I: Digestão e Coleta de tecido pancreático

Alcançar alta qualidade e quantidade adequada de ilhotas humanas é um dos pré-requisitos importantes para o transplante de ilhotas bem sucedido. Neste vídeo, descrevemos passo a passo os procedimentos para o isolamento de ilhotas pancreáticas humanas (parte II: purificação e cultura de ilhotas humanas) utilizando um método modificado automatizado.

Isolamento Islet humana Pancreatic: Parte II: Purificação e Cultura de Ilhotas Humanos

As ilhotas pancreáticas, também chamadas de ilhotas de Langerhans, são um aglomerado de células endócrinas que produzem hormônios para a regulação da glicose e outras funções biológicas importantes. Este protocolo explica um método para isolar ilhotas pancreáticas pela primeira vez perfundindo colagenase via ampola de Vater para digerir o tecido pancreático exócrino e uma centrifugação simplificada com gradiente de densidade para purificar as ilhotas de camundongos.

Isolamento de ilhotas pancreáticas por meio de perfusão de colagenase: um método enzimático para isolar células de ilhotas pancreáticas

Microdissecção a laser é uma técnica que permite a recuperação de células selecionadas a partir de pequenas quantidades de parênquima. Aqui descrevemos um protocolo de aquisição ilhotas pancreáticas humanas a partir de espécimes cirúrgicos para serem utilizados para estudos de transcriptomic. Nosso protocolo melhora a autofluorescência intrínseca das células beta humanas, facilitando assim a sua coleção.

Protocolo melhorado para microdissecção a laser de ilhotas pancreáticas humanas a partir de espécimes cirúrgicos

Nós descrevemos um protocolo aqui para isolar ilhotas intactas de ratos recém-nascidos. Pâncreas foi parcialmente digerido com colagenase, seguido por lavagem e colheita manual. 20 - 80 agrupamentos de ilhéus podem ser obtidos por pâncreas de ratinhos recém-nascidos, que são adequados para vários estudos da ilhota.

Isolamento eficaz de ilhotas funcionais a partir de ratinho neonato Pâncreas

Este protocolo da isolação da ilhotas descreveu uma rota nova da injeção do colagenase para digerir o tecido exócrina e um procedimento simplificado do inclinação para purificar os ilhotas dos ratos. Envolve a digestão enzimática, separação de gradiente/purificação, e Islet mão-picking. O isolamento bem-sucedido pode produzir 250 – 350 de alta qualidade e ilhotas totalmente funcionais por mouse.

Um protocolo de alta eficiência simples para isolamento de Islet pancreático de camundongos

Aqui, nós apresentamos um protocolo para gerar de alta qualidade, dados do transcriptoma em grande escala das únicas pilhas das ilhotas pancreatic humanas isoladas usando uma tecnologia de sequenciamento microfluídico do RNA da único-pilha da gota-baseada.

Sequenciamento de RNA de célula única e análise de ilhotas pancreáticas humanas

Aqui, fornecemos detalhes sobre a realização da secreção de insulina estimulada por glicose (GSIS) via perfusão através da vasculatura de camundongos com um pâncreas intacto como uma técnica adicional para avaliar a função pancreática endócrina com redução de possíveis fatores de confusão.

Secreção de insulina estimulada por glicose via perfusão através da vasculatura de camundongos com pâncreas intacto

Este estudo desenvolveu um método simplificado para extrair eficientemente ilhéus primários funcionais e células acinares do pâncreas do camundongo, oferecendo uma ferramenta valiosa para estudar a comunicação intercelular na patogênese do Diabetes Induzido por Pancreatite Aguda.

Um método simples e rápido para isolamento simultâneo de ilhotas primárias e células acinares pancreáticas primárias de camundongos

Este protocolo descreve um método padronizado para colheita cirúrgica, digestão enzimática e purificação por gradiente de densidade de ilhéus pancreáticos de rato Lewis, permitindo preparações de alto rendimento e alta pureza para uso direto em transplantes ou estudos in vitro .

Isolamento e purificação de ilhotas pancreáticas a partir de ratos Lewis usando digestão enzimática e separação por gradiente de densidade

Aprenda o isolamento de ilhotas pancreáticas humanas de pacientes submetidos à pancreatectomia parcial. Este protocolo utiliza digestão enzimática e gradiente de densidade para obter ilhotas viáveis para estudos funcionais em diabetes.

Isolamento de Ilhotas Humanos de pacientes parcialmente pancreatectomizado

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