30 de julho de 2011
O fornecimento de diabéticos tipo 2 ilhotas para pesquisa é insuficiente. Aqui nós compartilhamos nosso protocolo para isolar ilhotas de pacientes submetidos à pancreatectomia parcial. Esta abordagem representa um local único para a obtenção de ilhotas de diabéticos tipo 2 e clinicamente combinado não-diabéticos em número adequado para estudos básicos e clínicos.
Olá, sou Florian Al, do Departamento de Cirurgia da Universidade Técnica de Triton. Olá, sou Gregor Cher, também do Departamento de Cirurgia do Hospital Universitário. Em Grayston.
A pesquisa sobre a biologia e a função das pálpebras é desesperadamente necessária para avançar nossa compreensão da fisiologia das pálpebras e da patogênese do diabetes. Infelizmente, as pálpebras humanas de pacientes não diabéticos e diabéticos tipo dois são muito difíceis de obter. A sequência de vídeo a seguir mostrará um protocolo de como isolar as pálpebras humanas de pacientes com otimização pancreática parcial.
Os ilhós assim adquiridos podem funcionar como um sistema in vitro para análise funcional. A ressecção cirúrgica do tecido pancreático humano é a pré-condição para o isolamento dos ilhós humanos. Contamos com pacientes submetidos a uma ressecção parcial do pâncreas para patologias pancreáticas específicas.
Como fonte de tecido pancreático humano, o cirurgião corta o pâncreas e realiza a ressecção parcial. Depois, os pescadores pancreáticos são colocados no gelo e levados para o Departamento de Patologia. O patologista determina a quantidade de tecido pancreático mole e de aparência saudável a ser obtido.
Para o isolamento das pálpebras, são necessários pelo menos dois gramas de tecido pancreático para o isolamento. O tecido é colocado em solução ucon e transportado em gelo para o laboratório. O primeiro passo na instalação de isolamento da pálpebra é medir o peso do tecido pancreático.
A amostra é então colocada em um prato de 10 centímetros. Já preparamos um frasco de 500 mililitros com 150 mililitros de mídia RPMI e 1 frasco de 250 mililitros com 130 mililitros de mídia RPMI. Em seguida, adicionamos a solução enzimática de digestão contendo um mililitro de DNAs e 20 mililitros de colagenase ao frasco de 250 mililitros e o colocamos em uma seringa de 10 mililitros.
O tecido pancreático limpo é então distendido pela injeção do meio contendo enzima e picado em pequenos pedaços para aumentar a área de superfície e facilitar o processo de digestão. Esta etapa de picagem é crucial porque a distensão por injeção por si só não permite uma distribuição adequada da enzima dentro do tecido. Paralelamente, montamos o circuito de digestão.
Conforme mostrado nesta figura, a direção do fluxo na câmara registrada é de entrada na parte inferior e de saída na parte superior da câmara. Em seguida, estamos no meio restante contendo enzimas para o frasco de 500 mililitros até um volume de 300 mililitros e, em seguida, inserimos o termômetro. A câmara gravada contém uma malha de metal com um diâmetro pobre de 600 micrômetros e mármores de nitreto de silicone livres com um diâmetro de 15 milímetros cada.
Transferimos o tecido pancreático para a câmara, inserimos a tela, fechamos a câmara e ligamos a bomba com uma velocidade de 140 mililitros por minuto. Quando a temperatura do circuito atinge 37 graus Celsius, começamos a medir o tempo de digestão. A câmara gravada é agitada manualmente de acordo com a composição do tecido.
Para determinar o ponto de tempo ideal para interromper a digestão, coletamos amostras periódicas, manchas de tisona, os ilhós separados vermelhos sob o microscópio. Uma vez que os ilhós parecem estar separados do tecido aino, interrompemos rapidamente a digestão colocando a serpentina de aquecimento no gelo e adicionando 200 mililitros de meio de lavagem a frio ao circuito. Em seguida, coletamos a solução palpebral inserindo o tubo de amostra em falcões de 250 mililitros até que o circuito esteja vazio.
O procedimento de lavagem a seguir começa com a etapa de centrifugação de 1000 RPM a quatro graus Celsius por cinco minutos. Na próxima etapa, descartamos o snat Resus a solução palpebral em meio de lavagem e distribuímos em frações iguais para os falcões de 50 mililitros. A lavagem prossegue com outra etapa de centrifugação de 1000 RPM a quatro graus Celsius por cinco minutos.
Como etapa opcional, distribuímos a paleta em falcões adicionais além dos quatro originais, dependendo do tamanho da paleta. Para melhorar a lavagem, novamente, descartamos o sumidante e soltamos suavemente o palato para separação das pálpebras do tecido aíno. As diferentes densidades de tecido das duas partes permitem a aplicação de um gradiente fecal.
Primeiro, ressuspendemos o pellet em densidade média fecal 1,1 25 gramas por mililitro. O pellet deve ser suficientemente pequeno para permitir uma ressuspensão homogénea. Em seguida, sobrepomos lentamente isso com as densidades da média fecal 1,0 81,0 60 e 1,0 37 com um volume de 10 mililitros cada.
Em seguida, centrifugamos os gradientes a 2.400 RPM por 20 minutos a quatro graus Celsius. Agora você pode distinguir os diferentes componentes separados por suas densidades nas frações. Primeiro, descartamos a camada superior que consiste em gordura e tecido conjuntivo.
A fração que agora coletamos é a primeira camada de agregado palpebral em 1,037 e 1,06, que contém principalmente os ilhós isolados. Para um isolamento eficiente, é importante coletar as frações separadamente. Em seguida, coletamos a fração do agregado da segunda pálpebra na interface de 1,0 60 e 1,0 80, que contém ilhós menos puros do que a primeira camada.
Em seguida, adicionamos o meio de lavagem a um volume total de 50 mililitros para diluir o gradiente fecal e enviamos para FUT a 1000 RPM por cinco minutos. A quatro graus Celsius, descartamos o agente SUP por sucção porque o palato pode estar muito solto devido à mancha de frio. Assim, temos que repetir a etapa de lavagem com meios de cultura de pálpebras a 1000 RPM por cinco minutos a quatro graus Celsius.
Na última etapa, ressuspendemos os ilhós humanos e a cultura, mídia e cultura dos ilhós. Os ilhós coletados na incubadora a 37 graus Celsius por 24 a 48 horas. Após esta etapa de cultura, as pálpebras estão prontas para processamento posterior.
Este protocolo deve permitir que você isole as pálpebras humanas do tecido pancreático após a pancreatectomia parcial. O transporte rápido e frio dos pescadores pancreáticos para a instalação de isolamento palpebral é importante para preservar a melhor viabilidade celular. A equipe de isolamento deve ter em mente que o processo de digestão é um procedimento altamente dinâmico.
A duração do processo de digestão depende fortemente da composição do tecido. Por exemplo, o grau de fibrose e a capacidade de injeção de enzima suficiente no tecido pancreático. O ajuste individual da força mecânica dentro da câmara registrada e a duração do processo de digestão são cruciais para um bom rendimento palpebral.
Este artigo apresenta um protocolo para isolar ilhotas de pacientes submetidos a pancreatectomia parcial, abordando a escassez de ilhotas diabéticas tipo 2 para pesquisa. O método permite a obtenção de ilhotas de indivíduos tanto diabéticos tipo 2 quanto não diabéticos, facilitando estudos adicionais sobre diabetes.
Reliable access to human islets from both type 2 diabetic and non-diabetic patients is a critical bottleneck for diabetes research and translational target validation. This protocol enables the systematic isolation of viable islets from surgical specimens, supporting mechanistic studies and functional assays in disease-relevant human systems. The approach strengthens predictive confidence in early discovery and bridges a key gap in the diabetes research pipeline.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by supplying high-quality human islets for functional studies, target validation, and assay development.