Análise de Patch-Clamp Perfurado Mediada por Anfotericina B: Uma Técnica Eletrofisiológica para Estudar Correntes Iônicas em Células da Bexiga Urinária

0 views • 4:20 min • April 30th, 2023

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A técnica de patch-clamp perfurada permite medições em tempo real das correntes iônicas associadas à atividade dos canais iônicos em células como o músculo liso detrusor, ou DSM, células da bexiga urinária.

Para começar, carregue a suspensão da célula DSM em uma câmara de vidro e incube para permitir a aderência da célula. Em seguida, adicione uma solução extracelular contendo íons tetraetilamônio e césio às células aderidas. Esses cátions bloqueiam os canais de potássio na membrana celular e inibem as correntes de potássio interferentes.

Em seguida, pegue uma pipeta de patch clamp polida - um tubo de vidro oco fino contendo um eletrodo de gravação conectado a um amplificador. Encha a pipeta com uma solução intracelular e encha-a com a mesma solução, mas contendo anfotericina B, um antibiótico perfurante da membrana.

Agora, mergulhe a ponta da pipeta na solução extracelular contendo células DSM. Depois de definir o potencial e a corrente para níveis apropriados, avance a ponta da pipeta em direção à membrana celular e monitore simultaneamente a resistência do eletrodo.

Um rápido aumento no valor da resistência indica que a ponta da pipeta atingiu a membrana celular. Agora, aplique uma sucção suave no eletrodo para formar uma vedação hermética chamada giga-vedação entre a ponta da pipeta e a membrana plasmática.

Após a formação do selo, a anfotericina se difunde lentamente na ponta e perfura a membrana, formando poros iônicos. Uma vez alcançada a perfuração ideal, os íons se movem entre as células e o eletrodo, gerando correntes proporcionais à função do canal iônico.

Pipete 0,25 a 1 mililitro de suspensão celular em uma câmara com fundo de vidro no palco de um microscópio invertido e incube-a por pelo menos 45 minutos para permitir que as células adiram. Em seguida, remova o DS do banho e substitua-o por solução E por superfusão.

Puxe vários eletrodos de remendo, polir as pontas dos eletrodos e cubra as pontas com cera dental, se necessário. Encha a ponta de um eletrodo de adesivo com a solução de pipeta sem anfotericina B, mergulhando brevemente o eletrodo na solução. O sucesso da eletrofisiologia do patch-clamp depende da qualidade da célula DSM e da solubilização da anfotericina B.

Encha o eletrodo com a mesma solução de pipeta contendo anfotericina B e monte o eletrodo em um suporte conectado a um patch clamp ampcabeça do amplificador stage. Use um micromanipulador para colocar o eletrodo logo abaixo da superfície da solução extracelular, de modo que a ponta do eletrodo fique submersa.

Em seguida, determine a resistência do eletrodo usando a função de janela de teste de membrana do software de aquisição comercial e avance o eletrodo em direção à célula de interesse. Ao tocar a superfície da célula com o eletrodo, forme um giga-selo aplicando uma pressão negativa rápida e suave ao eletrodo por meio de uma tubulação. Isso resulta em pressão negativa na ponta do eletrodo, resultando em uma giga-vedação bem-sucedida, conforme confirmado pelo Teste de Membrana.

Aguarde de 30 a 60 minutos para que a anfotericina B se difunda pela pipeta e seja inserida na membrana plasmática, formando poros principalmente seletivos para cátions monovalentes. Continue monitorando o giga-selo com a função de teste de membrana.

Quando a perfuração do patch for ideal, cancele os transientes de capacitância ajustando os mostradores para capacitância da célula e resistência em série no amplificador. Uma vez observadas as correntes catiônicas estáveis de passo de tensão, registre as correntes com o protocolo de passo de tensão de roteamento, conforme descrito no manuscrito.

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Last updated: 18 July 2026