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Em tecidos inteiros, vesículas extracelulares ou EVs são liberadas pelas células no fluido intersticial. Estes incluem corpos apoptóticos, microvesículas e exossomos. Os EVs desempenham um papel importante na manutenção da comunicação célula a célula.
Para extrair EVs, comece coletando uma amostra de tecido inteiro.
Trate o tecido com um tampão de dissociação apropriado. Os componentes do tampão de dissociação desintegram a matriz extracelular presente no tecido, eventualmente soltando as células.
Transfira a suspensão para um homogeneizador e rompa mecanicamente o tecido ainda mais para dissociá-lo e liberar as células.
Em seguida, centrifugue o homogeneizado em baixa velocidade para peletizar as células e fragmentos de tecido enquanto os EVs permanecem no sobrenadante.
Levar o sobrenadante para um tubo novo. Centrifugue em alta velocidade para peletizar a maioria dos corpos apoptóticos de tamanho maior, deixando os EVs de tamanho menor no sobrenadante.
Recolha o sobrenadante contendo EV em uma seringa. Filtre os componentes para remover quaisquer corpos apoptóticos restantes e coletar a população de EV de pequeno porte.
Centrifugar o filtrado para obter os EVs no pellet. Descarte o tampão restante e ressuspenda o pellet EV em uma solução de sacarose. Esta solução cria um ambiente isotônico para que os EVs mantenham sua morfologia.
Agora, armazene a suspensão EV a quatro graus Celsius até uso posterior.
Para começar, prepare 10 mililitros de tampão de dissociação no meio Hibernate-E para cada 0,4 a 1,0 grama de tecido. Adicione tecido inteiro fresco ou congelado ao tampão em um tubo de 50 mililitros e incube em banho-maria morno a 37 graus Celsius por 20 minutos.
Depois disso, adicione inibidores de protease e fosfatase para uma concentração final de 1x no tampão de dissociação. Despeje a solução com o lenço em um homogeneizador Dounce solto. Use aproximadamente 30 movimentos lentos por amostra para dissociar suavemente o tecido.
Em seguida, transfira o tecido dissociado e a solução tampão para um tubo cônico de 50 mililitros. Centrifugue a 500 x g e a 4 graus Celsius por 5 minutos para pellet as células e os fragmentos de tecido fibroso ou coeso restantes.
Transfira os sobrenadantes para um tubo cônico limpo de 50 mililitros e centrifugue a 2.000 x g e a 4 graus Celsius por 10 minutos para pellet e descarte os grandes detritos celulares.
Transfira este sobrenadante para um tubo cônico limpo de 50 mililitros e centrifugue a 10.000 x g e a 4 graus Celsius por 40 minutos para pellet quaisquer vesículas maiores indesejadas ou pequenos corpos apoptóticos. Transvase o sobrenadante através de um filtro de 0,45 micrómetros para um tubo de ultracentrifugação limpo de 12 mililitros.
Em seguida, ultracentrifugue a amostra a 100.000 x g e a 4 graus Celsius por 2 horas para pulverizar pequenos EVs. Transvase o sobrenadante e deixe os tubos de ultracentrifugação invertidos durante 5 a 10 minutos, batendo frequentemente para remover qualquer líquido residual nas laterais dos tubos.
Em seguida, ressuspenda o pellet EV em 1,5 mililitros de tampão de sacarose 0,25 molar. Cubra os tubos com parafilme e, em seguida, transforme os EVs em solução. Agite os tubos da ultracentrífuga por 15 a 20 minutos em temperatura ambiente e depois o vórtice mais uma vez.
Centrifugue brevemente os tubos a uma velocidade inferior a 1.000 x g para recuperar a suspensão líquida na parte inferior do tubo. Se necessário, armazene a suspensão a 4 graus Celsius durante a noite.