Isolamento de Microglia por Classificação de Células Acopladas por Imunocoloração: Um Método de Imunocoloração para Isolar Microglia de Células Cerebrais de Peixe-Zebra Usando Classificação de Células Ativadas por Fluorescência

0 views • 3:50 min • April 30th, 2023

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Em condições patológicas, a micróglia ativada - macrófagos cerebrais especializados - ajuda a eliminar patógenos e detritos celulares. Essas microglias expressam receptores únicos que as diferenciam de outros macrófagos.

Para isolar a microglia, comece com uma cultura de células cerebrais derivadas de peixe-zebra transgênico, expressando moléculas fluorescentes específicas em diferentes tipos de células.

A cultura contém uma mistura de neurônios - expressando fluorescência vermelha, macrófagos - expressando fluorescência verde e microglia não fluorescente.

Agora, adicione um reagente bloqueador e incube a cultura com agitação intermitente. O reagente de bloqueio se liga aos locais não específicos nas células e reduz o sinal de fundo.

Em seguida, adicione anticorpos primários e incuba. Esses anticorpos se ligam a receptores específicos expressos na superfície da microglia.

Centrifugar a cultura e remover o sobrenadante contendo anticorpos não ligados. Ressuspenda o pellet celular em um meio fresco.

Em seguida, adicione anticorpos secundários conjugados com corante fluorescente e incube. Esses anticorpos se ligam aos anticorpos primários e conferem uma cor vermelha ao complexo microglia-anticorpo.

Centrifugue a cultura e remova os anticorpos não ligados. Ressuspenda o pellet em um meio fresco.

Filtre as células para remover quaisquer detritos.

Usando um classificador de células ativadas fluorescentes ou FACS, classifique a população de células da microglia com base no tamanho da célula e na fluorescência.

A microglia isolada pode ser usada para outras aplicações.

Para imunocorar a microglia, use 0,3 mililitros de Meio A mais 2% de NGS para ressuspender o pellet celular. Em seguida, divida as células entre três tubos de 1,5 mililitro: um para células não coradas para medir a autofluorescência, um para medir a ligação inespecífica de um anticorpo secundário à microglia e um terceiro como teste.

Em todos os tubos, adicione 1% de baixa endotoxina, livre de azida (LEAF) para bloquear as interações CD16 / CD32 com o domínio Fc das imunoglobulinas. Em seguida, incube as células por 10 minutos com agitação suave a cada 5 minutos.

Em seguida, ao terceiro tubo, adicione o anticorpo 4C4 e incube-o por 30 minutos com agitação suave a cada 10 minutos. Em seguida, gire os tubos a 300 x g e 4 graus Celsius por 10 minutos.

Depois de descartar o sobrenadante, lave o pellet uma vez com 0,5 mililitros de Meio A mais 2% de NGS antes de girar os tubos novamente. Ressuspenda o pellet celular com 0,5 mililitros de Meio A mais 2% de NGS, adicione 1% de LEAF e incube as células por 10 minutos com agitação suave a cada 5 minutos.

Aos tubos 2 e 3, adicione anticorpos secundários e coloque os tubos no escuro. Depois de girar os tubos e descartar o sobrenadante, use 0,5 mililitros de meio A mais 2% de NGS para lavar as amostras duas vezes e, em seguida, ressuspenda os grânulos celulares com 1 mililitro de meio A mais 2% de NGS.

Passe a suspensão celular por uma tampa de filtro de célula de 35 mícrons e transfira-a para tubos FACS frios de 5 milímetros no gelo protegido da luz. Por fim, realize a classificação FACS e a extração de RNA de acordo com o protocolo de texto.

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Last updated: 18 July 2026