$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Em condições patológicas, a micróglia ativada - macrófagos cerebrais especializados - ajuda a eliminar patógenos e detritos celulares. Essas microglias expressam receptores únicos que as diferenciam de outros macrófagos.
Para isolar a microglia, comece com uma cultura de células cerebrais derivadas de peixe-zebra transgênico, expressando moléculas fluorescentes específicas em diferentes tipos de células.
A cultura contém uma mistura de neurônios - expressando fluorescência vermelha, macrófagos - expressando fluorescência verde e microglia não fluorescente.
Agora, adicione um reagente bloqueador e incube a cultura com agitação intermitente. O reagente de bloqueio se liga aos locais não específicos nas células e reduz o sinal de fundo.
Em seguida, adicione anticorpos primários e incuba. Esses anticorpos se ligam a receptores específicos expressos na superfície da microglia.
Centrifugar a cultura e remover o sobrenadante contendo anticorpos não ligados. Ressuspenda o pellet celular em um meio fresco.
Em seguida, adicione anticorpos secundários conjugados com corante fluorescente e incube. Esses anticorpos se ligam aos anticorpos primários e conferem uma cor vermelha ao complexo microglia-anticorpo.
Centrifugue a cultura e remova os anticorpos não ligados. Ressuspenda o pellet em um meio fresco.
Filtre as células para remover quaisquer detritos.
Usando um classificador de células ativadas fluorescentes ou FACS, classifique a população de células da microglia com base no tamanho da célula e na fluorescência.
A microglia isolada pode ser usada para outras aplicações.
Para imunocorar a microglia, use 0,3 mililitros de Meio A mais 2% de NGS para ressuspender o pellet celular. Em seguida, divida as células entre três tubos de 1,5 mililitro: um para células não coradas para medir a autofluorescência, um para medir a ligação inespecífica de um anticorpo secundário à microglia e um terceiro como teste.
Em todos os tubos, adicione 1% de baixa endotoxina, livre de azida (LEAF) para bloquear as interações CD16 / CD32 com o domínio Fc das imunoglobulinas. Em seguida, incube as células por 10 minutos com agitação suave a cada 5 minutos.
Em seguida, ao terceiro tubo, adicione o anticorpo 4C4 e incube-o por 30 minutos com agitação suave a cada 10 minutos. Em seguida, gire os tubos a 300 x g e 4 graus Celsius por 10 minutos.
Depois de descartar o sobrenadante, lave o pellet uma vez com 0,5 mililitros de Meio A mais 2% de NGS antes de girar os tubos novamente. Ressuspenda o pellet celular com 0,5 mililitros de Meio A mais 2% de NGS, adicione 1% de LEAF e incube as células por 10 minutos com agitação suave a cada 5 minutos.
Aos tubos 2 e 3, adicione anticorpos secundários e coloque os tubos no escuro. Depois de girar os tubos e descartar o sobrenadante, use 0,5 mililitros de meio A mais 2% de NGS para lavar as amostras duas vezes e, em seguida, ressuspenda os grânulos celulares com 1 mililitro de meio A mais 2% de NGS.
Passe a suspensão celular por uma tampa de filtro de célula de 35 mícrons e transfira-a para tubos FACS frios de 5 milímetros no gelo protegido da luz. Por fim, realize a classificação FACS e a extração de RNA de acordo com o protocolo de texto.