Coloração hFTAA de depósitos amilóides: uma técnica para visualizar fibrilas amilóides usando corante à base de oligotiofeno para imagens de fluorescência em seções de tecido

0 vistas3:38 min • July 8th, 2025

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A deposição de agregados de proteínas mal dobrados - os amilóides no espaço do tecido extracelular são características de várias doenças proteopáticas. Esses amilóides são compostos de folhas beta que se alinham perpendicularmente ao eixo fibrilar, formando repetições cruzadas de folhas beta.

Para detectar os depósitos de amiloide com a coloração de ácido heptamer-formil tiofeno acético, ou hFTAA, faça uma seção de tecido fixada em formalina e embebida em parafina contendo depósitos de amilóide.

Trate as seções com xileno para desparafinizar o tecido para melhorar a acessibilidade à coloração nas etapas subsequentes. Adicione algumas gotas da solução de coloração hFTAA sobre a seção do tecido e incube para permitir que o corante penetre no tecido.

O hFTAA contém sete unidades conjugadas de tiofeno contendo enxofre e grupos carboxila terminais ligados à estrutura do tiofeno. Esses recursos fornecem flexibilidade ao corante não ligado. Durante a incubação, os grupos carboxila finais do corante se ligam aos resíduos de aminoácidos carregados positivamente que revestem o sulco hidrofóbico da folha beta por meio de interações eletrostáticas.

Consequentemente, ocorre uma mudança conformacional que reduz a flexibilidade estrutural do corante hFTAA ligado. Isso aumenta o rendimento quântico de fluorescência do corante ligado - a proporção relativa de fótons absorvidos versus emitidos. Este processo ajuda a melhorar a visualização dos amilóides.

Observe a lâmina sob um microscópio de fluorescência. A presença de manchas de fluorescência amarelo-avermelhadas indica a presença de amilóides nas seções de tecido.

Preparar a solução de oligotiofeno conjugado luminescente ressuspendendo hFTAA liofilizado em hidróxido de sódio de dois milimolares para preparar uma solução-mãe de 1 mg/ml. Transfira a solução de estoque para um frasco de vidro e armazene a quatro graus Celsius.

Se forem usadas seções fixadas em formalina e embebidas em parafina, desparafinizar em xileno durante a noite. No dia da coloração, mergulhe as seções em banhos consecutivos de etanol a 99%, etanol a 70%, dH2O e PBS, por 10 minutos, de cada vez. Em seguida, deixe as seções de tecido secarem em condições ambientais.

Enquanto o tecido seca, prepare uma solução de trabalho de hFTAA diluindo o estoque 1:10.000 em PBS. Quando o tecido estiver seco, adicione gotículas da solução de trabalho hFTAA a cada seção de tecido para cobri-la. Incube por 30 minutos em temperatura ambiente.

Enxágue a solução de coloração com 500 microlitros de PBS e, em seguida, mergulhe a lâmina no banho de PBS por 10 minutos.

Depois de deixar a seção secar em condições ambientais, monte usando meio de montagem de fluorescência. Deixe o meio de montagem assentar durante a noite.

A detecção de amilóide pode ser realizada diretamente após a montagem, ou mesmo sem montagem. No entanto, se o objetivo do experimento for coletar informações espectrais de alta qualidade, a incubação noturna é preferida.

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Última atualização: 15 agosto 2026