Coloração TTC de fatias de tecido cerebral de rato: um procedimento de coloração para diferenciar tecido viável e necrótico em fatias de tecido após lesão de isquemia-reperfusão

0 vistas3:40 min • July 8th, 2025

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Durante a isquemia cerebral, o fluxo sanguíneo prejudicado para o cérebro reduz o suprimento de oxigênio e nutrientes para o tecido, causando danos cerebrais. Após uma breve isquemia, à medida que o fluxo sanguíneo para o cérebro é restaurado, a reperfusão com aumento do suprimento de oxigênio resulta em superprodução de espécies de íons reativos, levando a danos oxidativos nos tecidos, conhecidos como lesão de isquemia-reperfusão.

Para avaliar o dano cerebral após lesão de isquemia-reperfusão em um modelo de rato, primeiro colha o cérebro do rato. Enxágüe em um tampão gelado para remover detritos e sangue. Corte o cérebro para obter fatias coronais das espessuras desejadas. Transfira cuidadosamente as fatias para uma bandeja contendo tampão - com as superfícies anteriores voltadas para cima - para coloração subsequente.

Adicione uma solução de cloreto de trifenil tetrazólio quente, TTC, um corante redox solúvel em água, sobre as fatias de cérebro. Incube em condições escuras, pois o TTC é sensível à luz. O TTC entra nas células dentro da seção do tecido.

Em células vivas, a enzima succinato desidrogenase mitocondrial ativa na presença de cofatores reduz o TTC, incolor quando oxidado, em formazan vermelho insolúvel em água, corando as células viáveis de vermelho profundo. No entanto, as células necróticas não têm atividade de desidrogenase; assim, o TTC permanece na forma oxidada, corando as células de branco.

Após a incubação, transfira as fatias do cérebro para uma bandeja de imagem. Separe os hemisférios no plano sagital. Imagine as fatias do cérebro.

O tecido saudável parece vermelho, enquanto o tecido danificado parece branco, diferenciando o tecido necrótico do tecido viável e permitindo estimar a extensão do dano tecidual.

Depois de remover o cérebro, incluindo o tronco cerebral, do crânio, coloque o cérebro, com o lado ventral para cima, na matriz cerebral. Dependendo do peso dos animais, escolha o tamanho correto da matriz de aço inoxidável cerebral. Usando lâminas, restrinja as partes frontal e caudal do cérebro. Em seguida, coloque as lâminas parcialmente nos canais entre a primeira e a última lâminas.

Quando todas as lâminas estiverem inseridas e dispostas em paralelo, pressione todas as lâminas para baixo com a palma da mão ao mesmo tempo para cortar o cérebro em fatias coronais de 2 milímetros. Em seguida, segure as lâminas firmemente ao longo dos lados com dois dedos e remova-as junto com o cérebro fatiado da matriz. Disponha as fatias de cérebro uma a uma em uma bandeja, garantindo que a superfície anterior de cada fatia esteja sempre voltada para cima.

Em seguida, despeje a solução morna de cloreto de trifenil tetrazólio a 1% e PBS nas fatias do cérebro e incube por 8 minutos a 37 graus Celsius no escuro. Após a incubação, transfira as fatias do cérebro para uma bandeja de plástico azul para capturar imagens. Organize as fatias do cérebro em ordem sequencial da parte frontal para a caudal e use um bisturi para separar os hemisférios no plano sagital.

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Última atualização: 15 agosto 2026