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Os organoides intestinais recapitulam a organização cripta-vilosidade semelhante ao intestino, tendo um lúmen central composto por células mortas e detritos. O lúmen é revestido por células semelhantes a vilosidades e saliências semelhantes a criptas que abrigam células-tronco.
Diferentes células organoides produzem níveis variados de espécies reativas de oxigênio, ROS - subprodutos de atividades metabólicas, cujo acúmulo leva ao estresse oxidativo.
Para visualizar o estresse oxidativo em células variadas, comece pegando uma placa de vários poços contendo organoides 3D cultivados em uma matriz de embasamento. As células-tronco organoides expressam uma proteína de fluorescência verde ou proteína marcada com GFP que ajuda a distingui-las durante a imagem.
Suplementar os poços com hidroperóxido de terc-butilo - um indutor de ROS - e incubar. O indutor ativa a NADPH oxidase ligada à membrana e estimula a produção de ROS dentro das células. As células-tronco, sendo metabolicamente ativas, produzem mais ROS do que as células diferenciadas.
Adicione sondas fluorogênicas sensíveis a ROS. Essas sondas lipofílicas entram rapidamente nas células e reagem com ROS para produzir fluorescência vermelha. Trate os organoides com corante Hoechst que mancha seletivamente os núcleos das células vivas. Visualize os organoides usando um microscópio confocal.
As células organoides na periferia com núcleos corados mostram graus variados de fluorescência vermelha, que é alta nas células-tronco que expressam GFP e baixa nas células diferenciadas. As células mortas com níveis inerentemente altos de ROS exibem fluorescência vermelha no lúmen.
A intensidade da fluorescência vermelha se correlaciona com níveis variáveis de estresse oxidativo em diferentes tipos de células.
Para visualizar o estresse oxidativo por microscopia confocal, adicione 1 microlitro de solução estoque de N-acetilcisteína nos poços correspondentes da câmara de oito poços de microlâmina revestida com organoides.
Após uma incubação de 1 hora, adicione 1 microlitro de solução estoque de hidroperóxido de terc-butila nos poços correspondentes e incube por mais 30 minutos. Em seguida, adicione 1 microlitro da diluição de 1,25 milimolar da sonda fluorogênica por poço, seguido por 1 microlitro de 1,25 miligramas por mililitro de solução de Hoechst.
Após mais 30 minutos de incubação, remova o meio sem perturbar o BMM e adicione suavemente 250 microlitros de DMEM quente sem vermelho de fenol.
Visualize os organoides usando um microscópio confocal, equipado com uma câmara térmica e suprimento de gás que detecta a sonda fluorogênica.
Usando o controle positivo, configure a intensidade do laser e o tempo de exposição para o sinal ROS e verifique se esse sinal é menor no controle negativo. Em seguida, usando uma ocular, examine a lâmina para identificar os organoides que expressam GFP e ajuste a intensidade do laser.
Configure uma pilha z de 25 micrômetros e defina posições para obter uma imagem costurada de todo o organoide para obter uma seção dos organoides mostrando uma camada de células.