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Uma proteína de fusão oncogênica quimérica contém o domínio N-terminal de baixa complexidade, LCD, de uma proteína de ligação ao RNA fundida com o domínio de ligação ao DNA, DBD, de uma proteína do fator de transcrição. Essas proteínas formam um condensado de proteína, que recruta RNA polimerase-II e impulsiona a oncogênese.
Para visualizar a montagem de condensados de proteínas por imagem de molécula única, comece com uma célula de fluxo de DNA - uma lâmina de vidro de sílica fundida equipada com portas de injeção de entrada e saída. A superfície da célula de fluxo é revestida com uma bicamada lipídica biotinilada para proteger a superfície e fabricada com uma barreira em zigue-zague.
Conecte-o a um sistema microfluídico. Introduza uma solução de estreptavidina, que se liga ao seu ligante de alta afinidade de ligação, a biotina, na camada lipídica. Injete DNA lambda de fita dupla marcado com biotina, que contém várias repetições de sequências de ligação a proteínas de fusão. A estreptavidina da bicamada lipídica se liga à biotina do DNA e liga o DNA lambda à bicamada.
Lave com um tampão adequado. A força hidrodinâmica de seu fluxo endireita as moléculas de DNA ancoradas, permitindo que elas fiquem penduradas como cortinas de DNA sobre as barreiras.
Coloque a célula de fluxo sob um microscópio de fluorescência. Injete uma solução de fluoróforos verdes de ligação ao DNA. Em seguida, injete uma solução de proteína de fusão marcada com fluoróforo magenta de ligação a proteínas por meio de seu domínio LCD e incuba.
As proteínas de fusão marcadas se ligam à sequência alvo no DNA lambda para formar condensados ao longo do comprimento do DNA. Após a excitação, os fluoróforos ligados ao DNA e às proteínas fluorescem.
Os condensados da proteína de fusão aparecem como pontos de cor magenta no DNA de fita dupla marcado com fluorescência verde.
Para obter imagens da formação de condensação do EWS-FLI1 em cortinas de DNA, abra o software de imagem e encontre e marque as posições dos nove padrões em zigue-zague sob campo claro. Em seguida, ligue o fluxo a 0,2 mililitros por minuto para corar o DNA com corante de DNA de fita dupla por 10 minutos.
Em seguida, dilua a proteína mCherry-EWS-FLI1 com o tampão de imagem a uma concentração de 100 nanomoles e 100 microlitros. Em seguida, carregue a proteína sample através da válvula com uma seringa de vidro de 100 microlitros e altere a taxa de fluxo para 0,4 mililitros por minuto.
Depois de ligar o laser de 488 nanômetros, faça uma pré-varredura de cada região para verificar o estado de distribuição do DNA e selecione a região na qual as moléculas de DNA se distribuem uniformemente. Em seguida, defina a potência do laser para 10% para o laser de 488 nanômetros e 20% para o laser de 561 nanômetros e, usando o medidor de potência, meça a potência real do laser perto do prisma.
Comece a adquirir imagens em intervalos de dois segundos com lasers de 488 e 561 nanômetros simultaneamente. Em seguida, mude a válvula do modo manual para o modo de injeção para permitir que o tampão de imagem libere a amostra de proteína na célula de fluxo após 60 segundos.
Para remover o EWS-FLI1 livre, continue lavando a célula de fluxo com o tampão de imagem por cinco minutos com apenas o laser de 561 nanômetros ligado. Em seguida, pare o fluxo e incube a 37 graus Celsius por 10 minutos.
Após 10 minutos, ligue o fluxo a 0,4 mililitros por minuto para permitir que o DNA se estenda e adquira imagens em intervalos de dois segundos entre diferentes quadros para obter dados de alto rendimento da formação de condensado EWS-FLI1.